ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Динамические изменения цитокинов при COVID-19 и в пост-ковидном периоде

К.Н. Мусабай, Е.А. Виноградова, М.У. Дусмагамбетов, М.С. Бекбосынова, А.Т. Тауекелова, С.С. Кожахметов, А.Р. Кушугулова

1) Некоммерческое акционерное общество «Медицинский университет Астана», г. Астана, Республика Казахстан; 2) Автономная организация образования «Назарбаев Университет», г. Астана, Республика Казахстан; 3) Heart center, г. Астана, Республика Казахстан
Аннотация. Цитокины играют ключевую роль в патогенезе COVID-19 и его осложнений. Течение этой инфекции характеризуется гиперактивным иммунным ответом, известным как «цитокиновый шторм», который может приводить к значительным повреждениям тканей и органов.
Цель – изучить динамику уровней интерлейкинов (ИЛ) у больных COVID-19 с основным акцентом на иммунных ответах во время острой инфекции и их ассоциации с тяжестью заболевания и постковидными последствиями.
Материал и методы. С помощью мультиплексного анализа изучены уровни ИЛ у 294 пациентов с различными степенями тяжести COVID-19.
Результаты. Установлено, что в острой фазе COVID-19 уровни ИЛ-1α, ИЛ-1β и ИЛ-2 были увеличены, причем уровень ИЛ-1β заметно снижался в тяжелых случаях. Содержание ИЛ-7 оказалось повышенным у пациентов с тяжелыми случаями заболевания, в то время как ИЛ-8 оставался снижен во время острой фазы. Изменения концентрации ИЛ-10 были различными в группах пациентов с разной тяжестью COVID-19. Уровни ИЛ-2 положительно коррелировали с артериальной гипертензией, а уровни ИЛ-7 продемонстрировали отрицательную корреляцию с этим заболеванием. Уровни ИЛ-10 и ИЛ-8 коррелировали отрицательно с наличием штамма омикрон, но положительно – со штаммом дельта. Также концентрации этих цитокинов положительно коррелировали с тяжелыми случаями COVID-19 и отрицательно – с легкими.
Заключение. Повышенные уровни противовоспалительных ИЛ в острой фазе COVID-19 могут свидетельствовать об усиленном воспалительном ответе, тогда как изменения уровней антивоспалительных ИЛ могут указывать на реализацию регуляторных механизмов, направленных на смягчение воспаления. В период после COVID-19 у пациентов могут развиваться осложнения, такие как артериальная гипертензия и сахарный диабет 2-го типа, каждое из которых связаны с уникальными цитокиновыми профилями. Понимание динамики ИЛ расширяет представления о патогенезе COVID-19 и может улучшить разработку точных медицинских вмешательств для улучшения исходов у пациентов.

Ключевые слова

COVID-19
постковид
интерлейкины
«цитокиновый шторм»

ВВЕДЕНИЕ

Патогенез COVID-19 связан с диспропорцио­наль­ным ответом иммунной системы. Интерлей­кины (ИЛ) играют ключевую роль в развитии «цитокинового шторма», способствуя чрезмерной воспалительной реакции и повреждению тканей [1]. Термин «цитокиновый шторм» относится к избыточному выделению цитокинов, вызванному активацией клеток иммунной системы в ответ на вирусное вторжение [2]. Это явление обостряет течение COVID-19 и приводит к серьезным осложнениям, которые развиваются у пациентов, перенесших как тяжелую, так и бессимптомную форму инфекции; оно сопровождается широким спектром симптомов и состояний, включая сердечно-сосудистые патологии, неврологические и психические расстройства, когнитивные нарушения, патологии со стороны эндокринной системы и т. д.

Ключевыми цитокинами являются ИЛ-6, ИЛ-2R, ИЛ-1β и фактор некроза опухоли-альфа (ФНО-α) [3]. Уровень ИЛ в сыворотке крови значительно выше у тяжелобольных пациентов с COVID-19 по сравнению теми, кто имеют мягкую форму заболевания [4, 5].

Согласно исследованиям, вирус SARS-CoV-2 способен активировать и зрелый ИЛ-1β, что, в свою очередь, может вызвать активацию других противовоспалительных цитокинов в организме [6, 7]. Семейство ИЛ-1, включая ИЛ-1α, ИЛ-1β и ИЛ-18, регулирует иммунные и воспалительные ответы как в инфекционных, так и неинфекционных условиях. Фермент каспаза-1 превращает про-интерлейкин-1β в ИЛ-1β и про-интерлейкин-18 в ИЛ-18 в начале воспалительной реакции [8]. Данные предыдущих исследований позволяют предположить, что уровни ИЛ-2 помогают в оценке прогноза повреждения легких при гриппе типа A [9]. У людей с высоким артериальным давлением, а также с высокими уровнями ИЛ-6 и COVID-19 очень высок риск развития тяжелой дыхательной недостаточности [10]. В работе Adamo S. et al. у пациентов с тяжелым течением COVID-19 наблюдалась потеря незрелых Т-клеток и выявлялись значительно повышенные уровни сывороточного ИЛ-7 по сравнению со здоровыми лицами из контрольной группы и пациентами с легкими симптомами [11]. В другом исследовании была продемонстрирована связь ИЛ-8 с такими осложнениями, как острая почечная недостаточность и респираторная недостаточность, отмечалось снижение отношения PaO2/FiO2 [12]. Также было показано, что пациенты с COVID-19, находящиеся в отделении интенсивной терапии, имеют значительно более высокие сывороточные уровни ИЛ-10 [13–15]. Большое количество исследований в области COVID-19 и постковидных синдромов вносят вклад в изучение составляющих звеньев патогенеза инфекции, вызванной SARS- CoV-2, и ее осложнений. Настоящее исследование фокусируется на изучении уровней ИЛ при COVID-19 в острой фазе и их динамических изменениях в постковидный период.

Цель – изучить динамику уровней ИЛ при COVID-19 с основным акцентом на иммунных ответах во время острой инфекции и их ассоциации с тяжестью заболевания и последствиями постковида.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В исследование были включены 294 человека в возрасте 18 лет и старше с подтвержденным COVID- 19, а также 40 контрольных пациентов с отрицательным тестом на SARS-CoV-2, не имевших на момент обследования заболеваний в острой форме. Исследование одобрил локальный этический комитет (референсный номер 01-91/2021 от 22.04.2021) АО «Национальный научный центр сердечно-сосудистой хирургии», все участники предоставили письменное информированное согласие на участие в нем. Все методы проводились в соответствии с руководящими принципами и нормами системы здравоохранения Республики Казахстан.

Данные из электронных медицинских записей, включая демографические данные, клинические особенности, сопутствующие заболевания, инструментальные результаты, показатели жизненно важных функций и лабораторные результаты, были собраны обученным медицинским персоналом больницы (табл.).

10-1.jpg (192 KB)

Степень тяжести заболевания определялась в соответствии с клиническим протоколом диагностики и лечения COVID-19 у взрослых, утвержденным Минздравом Республики Казахстан 28.01.2022 (протокол № 156) и основанным на рекомендациях Всемирной организации здравоохранения по клиническому ведению пациентов с COVID- 19 и определению его степени тяжести. Тяжесть COVID-19 оценивается на основе клинических симптомов, воспалительных маркеров, функции дыхания, уровня насыщения крови кислородом, результатов рентгенологического обследования, наличия сопутствующих заболеваний, возраста и результатов лабораторных анализов.

Сбор образцов

Профессиональные медицинские работники собрали 1185 сывороточных образцов от пациентов с COVID-19. Образцы для изучения иммунологических параметров были получены на следующих этапах: T0 – 1–3 дня с момента начала заболевания; T1 – 15-й день наблюдения (острая фаза); T2 – 1 мес. наблюдения; T3 – 3 мес. наблюдения; T4 – 6 мес. наблюдения; T5 – 9 мес. наблюдения.

Определение цитокинового профиля

Цитокины/хемокины анализировались в сыворотке крови с использованием набора Milliplex HCYTMAG60PMX41BK (Bedford, MA, США) в соответствии с рекомендациями производителя на системе BioRad Bio-Plex 200 (Hercules, CA, США) в лабораториях ЧУ National Laboratory Astana автономной организации образования «Назарбаев Университет». Сыворотка крови была получена путем центрифугирования в течение 10 мин. при 4000 об./мин. Полученные аликвоты сыворотки хранились при температуре -80 °C для последующего анализа. Согласно протоколу анализа, 25 мкл сыворотки крови были смешаны с антителами, связанными с магнитными бусинами, в планшете на 96 ячеек и инкубировались на ночь при 4 °C с постоянным перемешиванием. Инкубация осуществлялась при комнатной температуре на орбитальной мешалке со скоростью вращения 500–600 об./мин. После инкубации образцы промывали дважды, далее они инкубировались в течение часа при комнатной температуре с биотинилированным детектирующим антителом, далее добавляли стрептавидин-PE на 30 мин. с перемешиванием. Затем планшеты снова промывали, в ячейки добавляли раствор для считывания на приборе Bio-Plex 200.

Статистическая обработка результатов

Все статистические расчеты выполнялись в Python 3 с использованием библиотек NumPy 1.21.5, SciPy 1.7.0, statsmodels 0.13.5 и scikit-posthocs 0.7.0. Визуализация проводилась с использованием библиотек matplotlib 3.7.1, seaborn 0.11.2, и SankeyFlow 0.3.8. Анализ важности признаков осуществлялся с использованием библиотеки scikit-learn 1.2.2.

Все корреляционные тесты и тесты на сравнение групп проводились с применением поправки Бенджамини – Хохберга (FDR) при уровне значимости ≤ 0,05. Корреляционный анализ выполнялся с помощью коэффициента Спирмена для непрерывных переменных, точечно-бисериального коэффициента для смешанных бинарных и непрерывных пар переменных и коэффициента φ для бинарных переменных. Все отрицательные корреляции показаны синим цветом, положительные – красным. Для сравнения 3 или более групп использовался критерий Краскела – Уоллиса с апостериорным сравнением по методу Данна с поправкой на множественное сравнение (FDR).

Анализ важности признаков основывался на расчете среднего уменьшения неоднородности (MDI), где большее значение MDI указывает на более высокую важность. MDI рассчитывался во время поэлементной перекрестной проверки (leave-one-out) посредством алгоритма случайного леса с параметрами по умолчанию (число деревьев = 100, опция balanced для взвешивания классов). Во время перекрестной проверки предварительный или внутренний отбор признаков не проводился.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Динамические изменения профилей ИЛ от острого COVID-19 до пост-COVID по сравнению со здоровой группой

Цитокины играют значительную роль в вирусных инфекциях, регулируя сигнальные пути в клетках. Среди них ИЛ, подкласс цитокинов, сложно модулируют иммунные ответы и механизмы защиты организма хозяина [16].

Наши результаты показали, что уровни ИЛ-1β были ниже у группы пациентов с тяжелой степенью COVID-19 в острой фазе заболевания. Через месяц в группе с умеренными симптомами наблюдалось значительное увеличение, в то время как в группе с легкими симптомами – снижение этого маркера. Интересно, что через 6 мес. после инфекции уровень ИЛ-1β значительно уменьшился во всех группах исследования (т. е. с COVID- 19 различной тяжести), за исключением группы пациентов с чрезвычайно тяжелой степенью, где наблюдалось явное его увеличение. Исследования демонстрируют, что путь ИЛ-1/ИЛ-6 значительно увеличен у пациентов с тяжелыми инфекциями и острым респираторным дистресс-синдромом [17]. Это указывает на то, что блокировка ИЛ-1 способна помочь предотвратить респираторную недостаточность при COVID-19 [18]. Кроме того, Jamilloux Y. et al. обнаружили ИЛ-1β и ИЛ-1Ra в крови и жидкости легких у пациентов с COVID-19-ассоциированной пневмонией [19]. Что касается антагониста ИЛ-1RA, то мы выявили его повышенные уровни во всех группах в острой фазе COVID-19 по сравнению с контрольной (здоровой) группой, но это повышение не достигло статистической значимости. Значительное увеличение ИЛ-1RA отмечалось только через 6 мес., особенно выраженное в группах пациентов с умеренными и тяжелыми симптомами COVID-19. Уровни ИЛ-2 были значительно увеличены у всех групп пациентов во время острой фазы заболевания по сравнению с контрольной группой. В исследовании с участием 60 пациентов с COVID-19 было установлено, что повышенный уровень ИЛ-2 в сыворотке крови коррелирует с продолжительным течением заболевания [5], аналогичные результаты были получены в другом исследовании с 69 пациентами, где высокий уровень ИЛ-2R также ассоциировался с длительной формой болезни [20]. Однако в группе с легкой степенью тяжестью имелась противоположная тенденция – уровень ИЛ-2 при длительном течении болезни снизился. Содержание ИЛ-6 оказалось повышенным через месяц, особенно в группах пациентов со средней и тяжелой степенью тяжести COVID-19. Мы обнаружили, что уровни ИЛ-7 были выше в тяжелых и крайне тяжелых случаях во время острой фазы заболевания по сравнению со группой здоровых лиц. Chi Y. et al. в свою очередь установили, что концентрации ИЛ-7 были выше у тяжелых пациентов по сравнению с другими группами, что указывает на потенциальное использование уровней этого цитокина в качестве биомаркера для измерения тяжести течения COVID-19 [21]. Интересно, что в нашем исследовании через 9 мес. уровень ИЛ-7 снизился при легких случаях болезни, но увеличился при тяжелых. С другой стороны, уровни ИЛ-8 были ниже во всех группах на ранней стадии COVID-19 по сравнению со здоровыми лицами. И даже через 9 мес. концентрация ИЛ-8 не достигла нормального уровня, но еще через месяц она начала медленно повышаться. Это наблюдение дает основания предположить длительное нарушение регуляции уровня ИЛ-8 у пациентов с COVID-19 и, возможно, наличие стойкого воспаления или продолжающихся процессов восстановления тканей после острой фазы заболевания.

В ряде исследований повышенные концентрации ИЛ-6, ИЛ-8 и ИЛ-10 были ассоциированы со степенью тяжести заболевания COVID-19 [4, 22]. В нашей работе в острой фазе уровни ИЛ-10 были снижены в группах легкой и средней степени тяжести, тогда как в группах тяжелой и крайне тяжелой степенью болезни наблюдалось его повышение по сравнению со здоровой группой. Более того, отмечалась тенденция к снижению содержания ИЛ-10 в течение 9 мес. после инфицирования (рис. 1).

12-1.jpg (166 KB)

Корреляционный анализ выявил положительную связь между уровнями ИЛ-2 и гипертонией, в то время как между уровнем ИЛ-7 и тем же состоянием наблюдалась отрицательная корреляция. Кроме того, уровень ИЛ-10 продемонстрировал отрицательную корреляцию с наличием штамма вируса омикрон и положительную со штаммом дельта, при этом аналогичные тенденции наблюдались и для содержания ИЛ-8. Кроме того, уровни как ИЛ-10, так и ИЛ-8 имели положительную корреляцию с тяжелым и крайне тяжелым течением COVID-19 и отрицательную – с легким (рис. 2).

13-1.jpg (197 KB)

Корреляционный анализ позволил установить несколько заметных связей между гематологическими параметрами и тяжестью COVID-19. Так, уровни базофилов и эозинофилов, а также прокальцитонина положительно коррелировали со средней, тяжелой и крайне тяжелой степенью заболевания. Кроме того, содержание гемоглобина положительно коррелировало только с крайне тяжелым течением инфекции, что позволяет предположить его потенциальную значимость в качестве маркера тяжелой формы заболевания. Патогенез COVID-19 сочетает в себе так называемую анемическую гипоксию (низкую концентрацию гемоглобина) с гипоксической гипоксией (низкое насыщение гемоглобина) [23]. Количество лимфоцитов в нашем исследовании прогрессивно возрастало от умеренной до крайне тяжелой формы заболевания. С другой стороны, уровни сегментоядерных нейтрофилов, нейтрофилов и аланинаминотрансферазы показали отрицательную корреляцию с тяжестью заболевания (рис. 3А).

14-1.jpg (151 KB)

При анализе тепловой карты преимущественно наблюдались отрицательные корреляции уровней ИЛ-5, ИЛ-12 и ИЛ-1β в группах пациентов с легкой и умеренной степенью COVID-19, что указывает на потенциальное снижение концентрации этих цитокинов при менее тяжелых формах заболевания. Напротив, уровни ИЛ-8, ИЛ-10 и ИЛ-12 (p70) продемонстрировали положительную корреляцию со степенью тяжести COVID-19 в группах пациентов с легкой и умеренной тяжестью заболевания, что говорит об их потенциальной активации или повышенной экспрессии при более легких формах этой инфекции (рис. 3B).

Анализ важности признаков перестановки показал, что ИЛ-15 и ИЛ-8 обладают наибольшей диагностической значимостью среди исследованных ИЛ. Кроме того, высокие уровни значимости продемонстрировали ИЛ-5, ИЛ-6, ИЛ-7, ИЛ-17A, ИЛ-1α и ИЛ-10, что подтверждает результаты, полученные с помощью анализа Milliplex (рис. 4).

15-1.jpg (156 KB)

Инфекция, вызванная SARS-CoV-2, инициирует активацию транскрипционных факторов NF-κB и STAT3, которые индуцируют процесс, известный как ИЛ-6 усилитель (ИЛ-6 Amp) [24]. Этот процесс приводит к усиленной активации NF-κB и последующей гиперпродукции провоспалительных цитокинов и хемокинов. Таким образом, образуется порочный круг, способствующий развитию и поддержанию гипервоспалительного состояния, которое связано с тяжелым течением COVID-19. В свою очередь, ИЛ-6 Amp привлекает иммунные клетки, такие как Т-лимфоциты и макрофаги, что усиливает положительную обратную связь уровня этого маркера с тяжестью заболевания.

Отметим, что увеличение смертности от COVID- 19 с возрастом может быть ассоциировано с усилением активации ИЛ-6 Amp, поскольку ИЛ-6 – важный показатель клеточного старения [25]. Кроме того, к характерным особенностям COVID-19 относят снижение природных механизмов защиты от вирусов и неправильную воспалительную реакцию, свидетельством которой служат низкий уровень интерферонов I и III типа и высокое содержание хемокинов и ИЛ-6 [26]. Такой сниженный или задержанный ответ интерферона I препятствует эффективному устранению вируса и вызывает излишне сильную воспалительную реакцию, ухудшая прогноз для пациента [27] (рис. 5).

16-1.jpg (315 KB)

Таким образом, наши результаты проливают свет на сложное взаимодействие ИЛ в патогенезе и прогрессировании COVID-19. Выдающееся значение ИЛ-1β и корреляция его уровня с тяжестью заболевания наряду с разнообразными реакциями, в которые вовлечены ИЛ-10, ИЛ-7 и ИЛ-8, демонстрируют многогранный характер регуляции цитокинов при коронавирусной инфекции.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Настоящее исследование подчеркивает динамические изменения маркеров воспаления, наблюдаемые на протяжении всего периода лечения COVID-19 и на этапе после выздоровления. Во время острой фазы выработка ИЛ (ИЛ-1α, ИЛ-1β и ИЛ-2) отражает раннюю иммунную активацию, при этом уровень ИЛ-1β заметно снижается в тяжелых случаях. Через 6 мес. после заражения SARS-CoV-2 концентрации ИЛ-1β снизились при всех степенях тяжести инфекции, за исключением когорты пациентов с крайне тяжелой формой COVID-19, что свидетельствует о выраженной динамике изменения уровня цитокинов в зависимости от тяжести заболевания. Более того, в тяжелых случаях заболевания во время острой фазы уровни ИЛ-7 были повышены, что свидетельствовало об усилении иммунного ответа, в то время как уровни ИЛ-8 оставались постоянно нарушенными, потенциально указывая на устойчивое воспаление. Примечательно также, что ИЛ-10 демонстрировал различные уровни экспрессии в группах пациентов с различной тяжестью COVID-19; это подчеркивает сложность регуляции цитокинов при прогрессировании инфекции. Кроме того, уровни ИЛ-10 и ИЛ-8 коррелировали отрицательно с наличием штамма омикрон, но положительно – со штаммом дельта. Уровень ИЛ-2 положительно коррелировал с гипертонией, тогда как ИЛ-7 показал отрицательную корреляцию с этим состоянием. Наконец, концентрации ИЛ-10 и ИЛ-8 продемонстрировали дифференциальную корреляцию с наличием у пациентов штаммов омикрон и дельта, а также с тяжестью заболевания COVID-19. В соответствии с анализом важности признаков перестановки ИЛ-15 и ИЛ-8 оказались наиболее диагностически значимыми ИЛ среди исследованных, что подтверждает наши результаты. Полученные нами результаты могут иметь большое значение для рекомендации целенаправленных мер по смягчению долгосрочных последствий и осложнений, связанных с COVID-19.

Список литературы

1. Pasrija R., Naime M. The deregulated immune reaction and cytokines release storm (CRS) in COVID-19 disease. Int Immunopharmacol. 2021; 90: 107225.

https://doi.org/10.1016/j.intimp.2020.107225. PMID: 33302033. PMCID: PMC7691139.

2. Mehta P., McAuley D.F., Brown M. et al. COVID-19: Consider cytokine storm syndromes and immunosuppression. Lancet. 2020; 395(10229): 1033–34.

https://doi.org/10.1016/s0140-6736(20)30628-0. PMID: 32192578. PMCID: PMC7270045.

3. Tanveer A., Akhtar B., Sharif A. et al. Pathogenic role of cytokines in COVID-19, its association with contributing co-morbidities and possible therapeutic regimens. Inflammopharmacology. 2022; 30(5): 1503–16.

https://doi.org/10.1007/s10787-022-01040-9. PMID: 35948809. PMCID: PMC9365214.

4. Bekbossynova M., Tauekelova A., Sailybayeva A. et al. Unraveling acute and post-COVID cytokine patterns to anticipate future challenges. J Clin Med. 2023; 12(16): 5224.

https://doi.org/10.3390/jcm12165224. PMID: 37629267. PMCID: PMC10455949.

5. Mussabay K., Kozhakhmetov S., Dusmagambetov M. et al. Gut microbiome and cytokine profiles in post-COVID syndrome. Viruses. 2024; 16(5): 722.

https://doi.org/10.3390/v16050722. PMID: 38793604. PMCID: PMC11126011.

6. Siu K., Yuen K., Castano Rodriguez C. et al. Severe acute respiratory syndrome Coronavirus ORF3a protein activates the NLRP3 inflammasome by promoting TRAF3 dependent ubiquitination of ASC. FASEB J. 2019; 33(8): 8865–77.

https://doi.org/10.1096/fj.201802418r. PMID: 31034780. PMCID: PMC6662968.

7. DeDiego M.L., Nieto-Torres J.L., Regla-Nava J.A. et al. Inhibition of NF-κB-mediated inflammation in severe acute respiratory syndrome coronavirus-infected mice increases survival. J Virol. 2014; 88(2): 913–24.

https://doi.org/10.1128/jvi.02576-13. PMID: 24198408. PMCID: PMC3911641.

8. Dinarello C.A., van der Meer J.W.M. Treating inflammation by blocking interleukin-1 in humans. Semin Immunol. 2013; 25(6): 469–84.

https://doi.org/10.1016/j.smim.2013.10.008. PMID: 24275598. PMCID: PMC3953875.

9. McKinstry K.K., Alam F., Flores-Malavet V. et al. Memory CD4 T cell-derived IL-2 synergizes with viral infection to exacerbate lung inflammation. PLoS Pathog. 2019; 15(8): e1007989.

https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1007989. PMID: 31412088. PMCID: PMC6693742.

10. Zheng Y.-Y., Ma Y.-T., Zhang J.-Y., Xie X. COVID-19 and the cardiovascular system. Nat Rev Cardiol. 2020; 17(5): 259–60.

https://doi.org/10.1038/s41569-020-0360-5. PMID: 32139904. PMCID: PMC7095524.

11. Adamo S., Chevrier S., Cervia C. et al. Profound dysregulation of T cell homeostasis and function in patients with severe COVID-19. Allergy. 2021; 76(9): 2866–81.

https://doi.org/10.1111/all.14866. PMID: 33884644. PMCID: PMC8251365.

12. Bulow Anderberg S., Luther T., Berglund M. et al. Increased levels of plasma cytokines and correlations to organ failure and 30-day mortality in critically ill Covid-19 patients. Cytokine. 2021; 138: 155389.

https://doi.org/10.1016/j.cyto.2020.155389. PMID: 33348065. PMCID: PMC7833204.

13. Huang C., Wang Y., Li X. et al. Clinical features of patients infected with 2019 novel coronavirus in Wuhan, China. Lancet. 2020; 395: 497–506.

https://doi.org/10.1016/s0140-6736(20)30183-5. PMID: 31986264. PMCID: PMC7159299.

14. Diao B., Wang C., Tan Y. et al. Reduction and functional exhaustion of t cells in patients with coronavirus disease 2019 (COVID-19). Front Immunol. 2020; 11: 827.

https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.00827. PMID: 32425950. PMCID: PMC7205903.

15. Zhao Y., Qin L., Zhang P. et al. Longitudinal COVID-19 profiling associates IL-1RA and IL-10 with disease severity and RANTES with mild disease. JCI Insight. 2020; 5(13): 139834.

https://doi.org/10.1172/jci.insight.139834. PMID: 32501293. PMCID: PMC7406242.

16. Fields J.K., Günther S., Sundberg E.J. Structural basis of IL-1 family cytokine signaling. Front Immunol. 2019; 10: 1412.

https://doi.org/10.3389/fimmu.2019.01412. PMID: 31281320. PMCID: PMC6596353.

17. Herold T., Jurinovic V., Arnreich C. et al. Elevated levels of IL-6 and CRP predict the need for mechanical ventilation in COVID-19. J Allergy Clin Immun. 2020; 146(1): 128–136.e4.

https://doi.org/10.1016/j.jaci.2020.05.008. PMID: 32425269. PMCID: PMC7233239.

18. van de Veerdonk F.L., Netea M.G. Blocking IL-1 to prevent respiratory failure in COVID-19. Crit Care. 2020; 24(1): 445.

https://doi.org/10.1186/s13054-020-03166-0. PMID: 32682440. PMCID: PMC7411343.

19. Jamilloux Y., Henry T., Belot A. et al. Should we stimulate or suppress immune responses in COVID-19? Cytokine and anti-cytokine interventions. Autoimmun Rev. 2020; 19(7): 102567.

https://doi.org/10.1016/j.autrev.2020.102567. PMID: 32376392. PMCID: PMC7196557.

20. Ma A., Zhang L., Ye X. et al. High levels of circulating IL-8 and soluble IL-2R are associated with prolonged illness in patients with severe COVID-19. Front Immunol. 2021; 12: 626235.

https://doi.org/10.3389/fimmu.2021.626235. PMID: 33584733. PMCID: PMC7878368.

21. Chi Y., Ge Y., Wu B. et al. Serum cytokine and chemokine profile in relation to the severity of coronavirus disease 2019 in China. J Infect Dis. 2020; 222(5): 746–54.

https://doi.org/10.1093/infdis/jiaa363. PMID: 32563194. PMCID: PMC7337752.

22. Chang Y., Bai M., You Q. Associations between serum interleukins (IL-1β, IL-2, IL-4, IL-6, IL-8, and IL-10) and disease severity of COVID-19: A systematic review and meta-analysis. Biomed Res Int. 2022; 2022: 2755246.

https://doi.org/10.1155/2022/2755246. PMID: 35540724. PMCID: PMC9079324.

23. Pittman R.N. Regulation of tissue oxygenation. San Rafael (CA): Morgan & Claypool Life Sciences; 2011. URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK54104/ (date of access – 28.08.2024).

24. Murakami M., Kamimura D., Hirano T. Pleiotropy and specificity: Insights from the interleukin 6 family of cytokines. Immunity. 2019; 50(4): 812–31.

https://doi.org/10.1016/j.immuni.2019.03.027. PMID: 30995501.

25. Hirano T., Murakami M. COVID-19: A new virus, but a familiar receptor and cytokine release syndrome. Immunity. 2020; 52(5): 731–33.

https://doi.org/10.1016/j.immuni.2020.04.003. PMID: 32325025. PMCID: PMC7175868.

26. Blanco-Melo D., Nilsson-Payant B.E., Liu W.C. et al. Imbalanced host response to SARS-CoV-2 drives development of COVID-19. Cell. 2020; 181(5): 1036–45.e9.

https://doi.org/10.1016/j.cell.2020.04.026. PMID: 32416070. PMCID: PMC7227586.

27. Yang L., Xie X., Tu Z. et al. The signal pathways and treatment of cytokine storm in COVID-19. Signal Transduct Target Ther. 2021; 6: 255.

https://doi.org/10.1038/s41392-021-00679-0. PMID: 34234112. PMCID: PMC8261820.

Об авторах / Для корреспонденции

Каракоз Нуржановна Мусабай, магистр биологических наук, старший преподаватель кафедры микробиологии и вирусологии им. Ш.И. Сарбасова некоммерческого акционерного общества «Медицинский университет Астана». Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, ул. Сарыарка, д. 33.
E-mail: mussabay.k@amu.kz
ORCID: https://orcid.org/0000-0001-7440-4014
Елизавета Александровна Виноградова, магистр, старший научный сотрудник Лаборатории микробиома Центра наук о жизни ЧУ National Laboratory Astana автономной организации образования «Назарбаев Университет». Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, пр. Кабанбай батыра, д. 53.
E-mail: st.paulmississippi@gmail.com
ORCID: https://orcid.org/0009-0003-1845-2726
Марат Утеуович Дусмагамбетов, д. м. н., профессор, заведующий кафедры микробиологии и вирусологии им. Ш.И. Сарбасова некоммерческого акционерного общества «Медицинский университет Астана». Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, ул. Сарыарка, д. 33.
E-mail: dusmagambetov.m@amu.kz
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2395-6032
Махаббат Сансызбаевна Бекбосынова, д. м. н., врач-кардиолог высшей категории, заместитель председателя правления University Medical Center, Heart center. Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, пр. Туран, д. 38.
E-mail: cardiacsurgeryres@gmail.com
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2834-617X
Айнур Толепбергеновна Тауекелова, заведующая амбулаторной службой, врач-кардиолог Heart center. Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, пр. Туран, д. 38.
E-mail: tauekelovaajnura@gmail.com
Самат Серикович Кожахметов, к. биол. н., ассоциированный профессор, старший научный сотрудник Лаборатории микробиома Центра наук о жизни ЧУ National Laboratory Astana автономной организации образования «Назарбаев Университет». Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, пр. Кабанбай батыра, д. 53.
E-mail: skozhakhmetov@nu.edu.kz
ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9668-0327
Алмагуль Рахимберлиевна Кушугулова, д. м. н., профессор, руководитель Лаборатории микробиома Центра наук о жизни ЧУ National Laboratory Astana автономной организации образования «Назарбаев Университет». Адрес: 010000, Республика Казахстан, г. Астана, пр. Кабанбай батыра, д. 53.
E-mail: akushugulova@nu.edu.kz
ORCID: https://orcid.org/0000-0001-9479-0899

Также по теме