ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Алкогольное поражение сердца

Пирожков С.В., Панченко Л.Ф.

ФГБУ Национальный научный центр наркологии Минздрава РФ, 119002 Москва, Малый Могильцевский пер., 2
В обзоре обсуждаются современные представления о патогенезе алкогольной кардиомиопатии. Отмечается, что алкогольная кардиомиопатия имеет признаки дилатационной кардиомиопатии и проявляется увеличением объема левого желудочка, его гипертрофией, уменьшением сократительной способности, а в условиях декомпенсации — снижением сердечного выброса. Рассматриваются механизмы патогенного влияния алкоголя на кардиомиоциты, обусловливающие активацию апоптоза, дисфункцию внутриклеточных органелл, нарушения в системе миофиламентов, расстройство внутриклеточного гомеостаза кальция. Обсуждается роль метаболита этанола ацетальдегида, продуктов минорного пути метаболизма катехоламинов, изменений в эндоканнабиноидной системе и активации процессов перекисного окисления липидов в повреждении миокарда. Описан патогенез алкогольной кардиомиопатии, в основе которого лежат пролиферация микропероксисом и дисбаланс между ацилоксидазой и каталазой, приводящие к накоплению перекиси водорода внутри кардиомиоцитов.

Ключевые слова

алкоголизм
кардиомиопатия
патогенез

Алкоголизм — одна из основных причин неишемической болезни сердца. Клинически выявляемая патология сердца отмечается у 23—40% больных хроническим алкоголизмом [1] и часто служит причиной смерти. Например, в структуре причин смерти от последствий употребления алкоголя в Волгоградской области в 2008 г. удельный вес алкогольной кардиомиопатии (АКМП) составил 73,3%, а острого отравления алкоголем — только 8,6% [2]. В целом признаки алкогольного поражения сердца выявляют у 10—35% лиц, умерших внезапной смертью.

АКМП имеет признаки дилатационной кардиомиопатии (КМП) и проявляется, прежде всего, увеличением объема левого желудочка (ЛЖ), его гипертрофией, уменьшением сократительной способности, а в условиях декомпенсации — и снижением сердечного выброса [3]. Кроме того, у больных алкоголизмом часто наблюдают нарушения ритма сердца: синусовую тахикардию, наджелудочковую и желудочковую экстрасистолию, пароксизмальные желудочковые и наджелудочковые тахикардии, атриовентрикулярные и синоатриальные блокады.

Диагноз АКМП ставится на основании следующих признаков: 1) алкогольный анамнез, клинические и лабораторные маркеры алкоголизма (полиневропатия, энцефалопатия, телеангиэктазии, контрактура Дюпюитрена, повышенная активность γ-глутамилтранспептидазы, макроцитоз эритроцитов, активность аспартатаминотрансферазы выше активности аланинаминотрансферазы и др.); 2) клиническая картина КМП (признаки сердечной недостаточности); 3) структурно-функциональные изменения сердца, а именно расширение ЛЖ (в большинстве случаев — всех полостей сердца) и снижение систолической функции ЛЖ; 4) отсутствие другой явной причины, приводящей к сердечной недостаточности (например, ишемическая болезнь сердца, клапанные пороки, легочное сердце и т.д.).

Макроскопически АКМП напоминает конгестивную КМП с дилатацией желудочков, но с более интенсивным диффузным интерстициальным фиброзом миокарда. Микроскопические изменения при АКМП включают сочетание дистрофии (гидропической и жировой), атрофии и гипертрофии кардиомиоцитов (КМЦ), встречаются очажки лизиса КМЦ и склероза. Поврежденные участки миокарда чередуются с неизмененными. При электронной микроскопии биоптатов сердца находят характерное для АКМП кистозное расширение саркоплазматической сети и Т-системы КМЦ [4].

АКМП часто сочетается с алкогольной болезнью печени. Так, в одном из исследований цирроз печени был диагностирован у 13 из 30 пациентов с АКМП и только у 2 из 30 больных алкоголизмом без признаков АКМП [5].

В основе АКМП могут лежать следующие процессы:

  • апоптоз КМЦ;
  • дисфункция внутриклеточных органелл в клетках миокарда;
  • нарушения в системе миофиламентов;
  • нарушение внутриклеточного гомеостаза кальция;
  • нарушение нейрогуморальной регуляции КМЦ.

Усиление апоптоза в КМЦ под действием алкоголя наблюдали в эксперименте in vitro. Непосредственно апоптоз вызывали заменой плазмосодержащей среды, в которой культивировали КМЦ, на бесплазменную. Добавление этанола в высоких концентрациях (500 и 1000 мг/дл) приводило к усилению фрагментации ДНК, повышению концентрации проапоптотического белка bax и значительному возрастанию активности каспазы-3 [6].

Острая алкогольная интоксикация сопровождается выбросом норадреналина из окончаний симпатической части вегетативной нервной системы. Норадреналин в высоких концентрациях дает кардиотоксический эффект. In vitro при инкубации КМЦ в присутствии 10 мМ норадреналина обнаружили усиление фрагментации ДНК и увеличение доли апоптозных клеток с гипоплоидией [7]. Проапоптозный эффект норадреналина устранялся антагонистом β-адренорецепторов пропранололом, но не празозином, антагонистом α-адренорецепторов. Такой же эффект, как и норадреналин, оказывали агонист β-адренорецепторов изопротеренол и активатор аденилатциклазы форсколин. Таким образом, норадреналин индуцирует апоптоз КМЦ опосредованно, активируя β-адренергическую рецепторную систему и активность протеинкиназы А. Реализация этого эффекта обусловливает необходимость открытия вольтаж-зависимых кальциевых каналов и внутриклеточного тока Са2+.

Дисфункция органелл при АКМП проявляется набуханием митохондрий, дезорганизацией крист [8], нарушением акцепторного контроля дыхания и функции кальциевого насоса [9, 10]. Кроме того, при хроническом воздействии алкоголя в КМЦ возникают метаболические изменения, описываемые термином «стресс-эндоплазматический ретикулум — стресс-ЭР», который сопровождается накоплением в клетке белков с аномальной конформацией (неправильной упаковкой). Последнее получило название «реакция на белки с аномальной конформацией». Аномальные белки, накапливаясь в КМЦ, включают механизм запрограммированной гибели клеток — апоптоз. В настоящее время стресс-ЭР рассматривают как важное звено в патогенезе нейродегенеративных заболеваний, некоторых форм сахарного диабета и поражения миокарда при ишемии/реперфузии [11]. В эксперименте показано усиление экспрессии двух трансмембранных белков, опосредующих реакции стресса-ЭР и являющихся его маркерами — eIF2α, IRE-1α, при хроническом употреблении алкоголя [12]. При этом также усиливался синтез проапоптозного белка gadd153, служащего конечным звеном «реакции нарушенной упаковки белков». Известно, что инициация синтеза gadd153 в данной реакции зависит от еще одного «сенсора» стресса-ЭР — метаболического пути PERK/eIF-2α [13].

Изменения структуры и функции белков миофибрилл влияют на многие аспекты процесса сокращения, включая циклическое образование межмолекулярных мостиков и генерацию силы. Потребление алкоголя в течение 2 мес вызывает сдвиг соотношения тяжелых цепей β-миозина и α-миозина в миокарде крыс в пользу β-цепей [14]. Это сопровождается снижением АТФазной активности миозина и миофибрилл. Считается, что подобный сдвиг в соотношении изоформ миозина способствует уменьшению скорости сокращения и потребления АТФ, позволяя сердцу экономить энергию. Однако в конечном счете такие изменения снижают адаптивные способности сердца и ослабляют его насосную функцию.

Важная роль в повреждении мембран клеточных органелл, инактивации кальциевых насосов, инициации апоптоза при различных патологических процессах в миокарде отводится свободно-радикальному перекисному окислению липидов (СПОЛ). Ему приписывают существенную роль и в развитии АКМП. Показано, что употребление раствора этанола в качестве единственного источника жидкости в течение 6 нед сопровождается увеличением на 26% содержания диеновых конъюгатов в ткани ЛЖ сердца крыс [15]. Причем этот эффект не проявляется, если одновременно с алкоголем животные получали дозы α-токоферола или антиоксиданта цианидола. Используя аналогичную модель, другие исследователи не обнаружили активации СПОЛ в миокарде, но выявили снижение уровня тиольных групп белков в цитозоле и клеточных мембранах [16]. При этом в сердце алкоголизированных животных возрастала активность Cu,Zn-супероксиддисмутазы и глутатион-S-трансферазы, что в целом свидетельствовало о наличии компенсированного окислительного стресса. Прооксидантное действие этанола на сердце находит подтверждение и в снижении содержания восстановленного глутатиона в клетках миокарда как при однократном, так и хроническом его употреблении [17, 18]. Кардиотоксические эффекты этанола устраняются, если одновременно с этанолом животным дополнительно вводят природный антиоксидант витамин Е [19]. Образование свободных радикалов (предположительно липидов с радикальным центром на атоме углерода) продемонстрировано методом электронного парамагнитного резонанса в ткани сердца хронически алкоголизированных крыс, которым дополнительно вводили дозу этанола в сочетании со «спиновой ловушкой» [20]. Подобные радикалы генерируются в экстрактах сердца in vitro после добавления в систему этанола или ацетальдегида [21]. Кроме того, в ткани сердца, как и в печени, употребление алкоголя приводит к усиленной трансформации ксантиндегидрогеназы в ксантиноксидазу [22], т. е. форму фермента, генерирующую перекись водорода.

Прооксидантные эффекты этанола при его длительном употреблении объясняют индукцией синтеза особой изоформы CYP2E1 цитохрома Р450, генерирующей повышенные количества активных форм кислорода (АФК) [23]. Накопление в клетке АФК, таких как супероксид-анион, гидроксильный радикал, перекись водорода, наряду с ослаблением антиоксидантной защиты приводит к химической модификации и деградации углеводных, белковых и липидных молекул, а также нуклеиновых кислот [24]. Показана связь между экспрессией CYP2E1, окислительным стрессом и усилением апоптоза в КМЦ собак, которые в течение 6 мес подвергались воздействию алкоголя [25]. Апоптоз клеток сердца сопровождался повышенной экспрессией проапоптозных белков bad и calpain-1.

В результате серии исследований, проведенных в ННЦ наркологии, предложена следующая схема изменений в ткани сердца, приводящих к АКМП. На первом этапе хроническая алкоголизация вызывает качественные сдвиги липидного состава мембран КМЦ, которые проявляются уменьшением относительного содержания диеновых жирных кислот в составе фосфолипидов и повышением — триеновых, тетраеновых и гексаеновых жирных кислот [26]. В результате этого возрастает индекс переокисляемости фосфолипидов сердца, который отражает способность липидов вступать в реакции СПОЛ. Наряду с изменениями состава липидов мембран под влиянием длительного употребления этанола в КМЦ происходит увеличение числа и размеров микропероксисом, а также индукция активности фермента, генерирующего перекись — ацил-КоА-оксидазы [27]. Это обусловливает возрастание скорости генерации перекиси водорода, чему способствует повышение доступности субстрата данного фермента, благодаря мобилизации липидов из жировых депо и накоплению их в клетках сердца. Снижение активности каталазы в этих условиях приводит к выходу избытка перекиси водорода из микропероксисом в цитоплазму и последующей активации процессов СПОЛ в мембранах КМЦ. Правомерность этого механизма в патогенезе АКМП подтверждает моделирование повреждения сердца на крысах, получавших алкогольный рацион и одновременно инъекции ингибитора каталазы аминотриазола [28]. Морфологические изменения в сердце у крыс экспериментальной группы были аналогичны тем, что наблюдают при АКМП у больных алкоголизмом.

Хроническая алкогольная интоксикация характеризуется генерализованным повышением активности симпатико-адреналовой системы. При этом наблюдается увеличение биосинтеза, высвобождения, обратного захвата, скорости метаболизма катехоламинов и повышение их содержания в крови [29]. Непосредственное участие катехоламинов в патогенезе заболеваний сердца, возникающих при стрессе, гипоксии, ишемической болезни сердца и артериальной гипертензии, свидетельствует о том, что они могут вносить вклад в патогенез повреждения миокарда и у больных алкоголизмом. Основной путь катаболизма катехоламинов связан с их дезаминированием в реакции с моноаминоксидазой (МАО). Однако существует и альтернативый метаболический путь — хиноидное окисление. Оно включает на первом этапе превращение катехоламина в катехол-О-хинон и затем его дальнейшее преобразование через стадию лейкоформы в аминохром или (нор)адренохром [30]. Скорость этого процесса резко возрастает в присутствии системы генерации гидроксильного радикала, т. е. в присутствии Fe2+ и перекиси водорода. Известно также, что адреналин легко окисляется в адренохром супероксид-анионом, на чем основан один из методов определения активности супероксиддисмутазы. Таким образом, АФК являются неферментативными факторами окисления катехоламинов по хиноидному пути. Некоторые ферменты, каталитическая активность которых связана с генерацией АФК или использованием их в качестве кофактора, ускоряют окисление катехоламинов до О-хинонов. Окисление адреналина до адренохрома легко идет в присутствии фермента ксантиноксидазы и ее субстрата (ксантина, гипоксантина и др.), благодаря генерации в ходе реакции супероксид-аниона, а также в присутствии цитохромоксидазы и цитохрома С. Если в инкубационную среду, содержащую активированные полиморфноядерные лейкоциты, добавить адреналин в физиологических концентрациях (<10 мкМ), то более 80% окисления адреналина идет по пути адренохрома и менее 20% приходится на продукты реакций МАО и катехол-О-метилтрансферазы [31]. Образующиеся хиноны легко вступают в реакции присоединения с нуклеофильными группами белков, вызывая их модификацию и денатурацию [32].

Катехоламины не только окисляются супероксид-анионом, но и сами способны восстанавливать кислород до супероксид-аниона. В присутствии следов металлов с переходной валентностью, например Fe2+ или Cu2+, формируется тройной комплекс катехоламин-Fe-О2, в котором происходит обмен электрона между молекулой катехоламина и кислородом [33]. Таким образом, сами катехоламины при соответствующих условиях (наличие следов свободного железа или меди, недостаточная активность МАО) могут служит прооксидантами и инициировать свободно-радикальные процессы в клетках.

Образование семихиноновых радикалов в процессе аутоокисления катехоламинов, генерация с их участием АФК, а также накопление адренохрома лежат в основе кардиотоксичности адреналина и норадреналина. Катехоламины принято рассматривать в качестве главных факторов повреждения сердца при стрессе или кокаиновой интоксикации, однако в ряде опытов на изолированном сердце зачастую не удается наблюдать выраженных некротических изменений миокарда при перфузии адреналином или его аналогом изопротеренолом. В то же время перфузия изолированного сердца в течение 15 мин средой, содержащей 50 мг/л окисленного изопротеренола, вызывает полную утрату способности к сокращению. Аналогично, перфузия изолированного сердца в течение 30 мин средой, содержащей 25 или 50 мг/л адренохрома, вызывает повреждение клеток миокарда: набухание митохондрий и саркоплазматического ретикулума, распад миофиламентов, появление контрактурных полос [34]. Добавление адренохрома к препаратам сарколеммы сердечной мышцы приводит к дозозависимому ингибированию Na+,К+-АТФазы, начиная с концентрации 5 мкг/мл [35]. Пятидесятипроцентное ингибирование фермента достигается при концентрации адренохрома 50 мкг/мл. Таким образом, усиленное образование АФК в миокарде на фоне избытка катехоламинов создает благоприятный фон для активации процессов СПОЛ и повреждения КМЦ.

Возникает вопрос, в какой период алкогольной интоксикации миокард наиболее подвержен действию патогенных факторов. Исследования показали, что наибольшее повреждение миокарда развивается в период максимального повышения концентрации в ткани катехоламинов, а именно на пике развития алкогольного абстинентного синдрома. В эксперименте наибольшая интенсивность дезинтеграции КМЦ (по повышению активности креатинфосфокиназы в плазме крови и пер­фузате сердца) отмечается на 2—3-и сутки отмены этанола после длительного периода его употребления [36]. На 1—2-е сутки безалкогольного содержания в ткани миокарда максимально повышены уровни адреналина и пони­жено содержание норадреналина; на 3-и сутки — максимально снижена плотность содержащих катехоламин нервных волокон в ткани миокарда и макси­мально увеличена площадь содержащих катехоламин структур, расположенных диф­фузно (вне волокон). Таким образом, максимумы деструктивного процес­са в сердечной мышце и экстранейронального накопления в ней катехоламинов совпадают.

Злоупотребление алкоголем приводит к значительному повышению в крови концентрации ацетальдегида (от 10 до 100 мкг/л) [37]. Это вещество в 10—30 раз токсичнее этанола [38], оказывает выраженное угнетающее действие на функцию центральной нервной системы и является сильным симпатомиметиком [39]. Показано, что ацетальдегид служит непосредственным источником АФК при окислении в реакциях, катализируемых альдегидоксидазой и ксантиноксидазой [40, 41]. При этом образуется супероксид-анион. Потребление алкоголя трансгенными мышами, в геном которых введен ген высокоактивной алкогольдегидрогеназы, быстро превращающей этанол в ацетальдегид, вызывает резкую активацию СПОЛ и накопление белковых карбонильных соединений в ткани сердца [42]. Кроме того, при алкоголизации трансгенных мышей ускоренными темпами развиваются сократительная дисфункция и гипертрофия миокарда.

СПОЛ считают важным механизмом, опосредующим снижение электромеханического сопряжения и угнетение выхода Са2+ из цистерн эндоплазматического ретикулума в КМЦ под действием ацетальдегида [40, 43]. В то же время ацетальдегид вступает в реакции присоединения с белковыми молекулами и пептидами с образованием устойчивых «аддуктов», что может приводить к истощению внутриклеточного пула восстановленного глутатиона, инактивации белков или их ускоренной деградации [44]. Наряду с окислительным стрессом ацетальдегид способен запускать процесс апоптоза КМЦ посредством включения «сигнала стресса», в частности фосфорилирования фактора транскрипции c-Jun [44]. Этот фактор является также одним из регулирующих звеньев в процессе гипертрофии миокарда.

Развитие АКМП может быть связано с изменениями в эндоканнабиноидной системе (ЭКС). ЭКС включает СВ-рецепторы (также опосредующие эффекты марихуаны), эндоканнабиноидные вещества и ферменты, участвующие в биосинтезе и деградации этих веществ. Основными эндогенными каннабиноидами — лигандами СВ-рецепторов — являются арахидоноилэтаноламид и 2-арахидоноилглицерол. ЭКС обнаружена как в ткани мозга, так и в периферических тканях, включая печень и миокард [45]. Как экзогенные каннабиноиды (например, тетрагидроканнабинолы в составе марихуаны и гашиша), так и эндогенные, оказывают свой эффект посредством стимуляции СВ1-рецепторов, способствуя, при длительном применении, артериальной гипотензии и брадикардии [45].

Активация СВ1-рецепторов вызывает снижение сократительной функции сердца [46], опосредованное, предположительно, ингибированием кальциевых каналов L-типа [47] и/или снижением концентрации сАМФ в КМЦ [48]. Кроме того, стимуляция СВ1-рецепторов эндогенным каннабиноидом анандамидом или синтетическими лигандами в клетках эндотелия [49], миокарда [50] и в макрофагах [51] сопровождается усиленной генерацией АФК и апоптозом. ЭКС приписывают важную роль в снижении сократительной способности и β-адренергической гипочувствительности сердца при экспериментальном циррозе печени [46]. В то же время хроническое употребление алкоголя способствует усиленному синтезу эндогенных каннабиноидов, по крайней мере, в мозге [52] и звездчатых макрофагах печени [53]. Таким образом, в патогенезе АКМП существенную роль может играть активация каннабиноидной системы, особенно при сопутствующей алкогольной болезни печени на стадии цирроза. Однако эта проблема требует дальнейшего изучения.

В заключение следует отметить, что патофизиология АКМП сложна и затрагивает многие аспекты функции КМЦ. Момент интеграции начальных изменений митохондрий, саркоплазматического ретикулума, сократимых белков и кальциевого гомеостаза в устойчивую дисфункцию КМЦ, описываемую термином АКМП, зависит от степени, длительности и постоянства злоупотребления алкоголем.

Авторы данного обзора ставили своей целью осветить только некоторые молекулярные механизмы токсического действия алкоголя на миокард. Вопросы диагностики, классификации и вариантов клинических проявлений АКМП остались за пределами рассмотрения и ждут участия специалистов в обсуждении этих проблем.

Работа выполнена при поддержке гранта РГНФ 07-06-00719а.

Список литературы

  1. Piano M.R. Alcoholic сardiomyopathy. Chest 2002;121:1638—1650.
  2. Анализ бытовых отравлений, в том числе алкоголем, населения Волгоградской области в 2008 году. http:// www. rpnvolgograd.ru.
  3. Richardson P.J., Patel V.B., Preedy V.R. Alcohol and the myocardium. Novartis Found Symp 1998;216:35—45.
  4. Кактурский Л.В. Клиническая морфология алкогольной кардиомиопатии. Арх патол 2009;5:21—22.
  5. Estruch R., Fernández-Solá J., Sacanella E. et al. Relationship between cardiomyopathy and liver disease in chronic alcoholism. Hepatology 1995;22:532—538.
  6. Chen D.B., Wang L., Wang P.H. Insulin-like growth factor I retards apoptotic signaling induced by ethanol in cardiomyocytes. Life Sci 2000;67:1683—1693.
  7. Communal C., Singh K., Pimentel D.R. et al. Norepinephrine stimulates apoptosis in adult rat ventricular myocytes by activation of the beta-adrenergic pathway. Circulation 1998;98:1329—1334.
  8. Tsiplenkova V.G., Vikhert A.M., Cherpachenko N.M. Ultrastructural and histochemical observations in human and experimental alcoholic cardiomyopathy. J Am Coll Cardiol 1986;8:27A—32A.
  9. Sarma J.S., Ikeda S., Fischer R. et al. Biochemical and contractile properties of heart muscle after prolonged alcohol administration. J Mol Cell Cardiol 1976;8:951—972.
  10. Bing R.J., Tillmanns H., Fauvel J.M. et al. Effect of prolonged alcohol administration on calcium transport in heart muscle of the dog. Circ Res 1974;35:33—38.
  11. Ozcan U., Yilmaz E., Ozcan L. et al. Chemical chaperones reduce ER stress and restore glucose homeostasis in a mouse model of type 2 diabetes. Science 2006;313:1137—1140.
  12. Li S.-Y., Ren J. Cardiac overexpression of alcohol dehydrogenase exacerbates chronic ethanol ingestion-induced myocardial dysfunction and hypertrophy: role of insulin signaling and ER stress. J Mol Cell Cardiol 2008;44:992—1001.
  13. Ron D., Walter P. Signal integration in the endoplasmic reticulum unfolded protein response. Nat Rev Mol Cell Biol 2007;8:519—529.
  14. Meehan J., Piano M.R., Solaro R.J. et al. Heavy long-term ethanol consumption induces an α- to β-myosin heavy chain isoforms transition in rat. Basic Res Cardiol 1999;94:481—488.
  15. Edes J., Toszegi A., Csanady M. et al. Myocardial lipid peroxidation after chronic alcohol ingestion and the effects of different antioxidants. Cardiovasc Res 1986;20:542—548.
  16. Ribiere C., Hininger I., Rouach H. et al. Effects of chronic ethanol administration on free radical defence in rat myocardium. Biochem Pharmacol 1992;44:495—500.
  17. Guerri C., Grisolia S. Changes in glutathione in acute and chronic alcohol intoxication. Pharmacol Biochem Behav 1980;13:53—61.
  18. Kannan M., Wang L., Kang Y.J. Myocardial oxidative stress and toxicity induced by acute ethanol exposure in mice. Exp Biol Med 2004;229:553—559.
  19. Redetzki J.E., Griswold K.E., Nopajaroonsri C. et al. Amelioration of cardiotoxic effects of alcohol by vitamin E. J Toxicol Clin Toxicol 1983;20:319—331.
  20. Reinke L.A., Lai E.K., Du Bose C.M. et al. Reactive free radical generation in vivo in heart and liver of ethanol-fed rats: Correlation with radical formation in vitro. Proc Natl Acad Sci USA 1987;84:9223—9227.
  21. Reinke L.A., Lai E.K., McCay P.B. Administration of ethanol or acetaldehyde to rats results in the generation of free radicals in liver, heart, and other organs. In: Kuriyama K., Takada A., Ishii H. (еds.) Biomedical and social aspects of alcohol and alcoholism. Amsterdam-New York-Oxford: Elsevier Science 1988:663—670.
  22. Oei H.H.H., Zoganas C., McCord J.M. et al. Role of acetaldehyde and xanthine oxidase in ethanol-induced oxidative stress. Res Commun Chem Pathol Pharmacol 1986;51:195—203.
  23. Esktröm G., Ingelman-Sundberg M. Rat liver microsomal NADPH-supported oxidase activity and lipid peroxidation dependent on ethanol-inducible cytochrome P450. Biochem Pharmacol 1989;38:1313—1319.
  24. Amici A., Levine R.L., Tsai L. Conversion of amino acid residues in proteins and amino acid homopolymers to carbonyl derivatives by metal catalyzed oxidative reactions. J Biol Chem 1989;264:3341—3346.
  25. Jing L., Jin C.M., Li S.S. et al. Chronic alcohol intake-induced oxidative stress and apoptosis: role of CYP2E1 and calpain-1 in alcoholic cardiomyopathy. Mol Cell Biochem 2012;359:283—292.
  26. Pirozhkov S.V., Escelson C.D., Watson R.R. et al. Effect of chronic consumption of ethanol and vitamin E on fatty acid composition and lipid peroxidation in rat heart tissue. Alcohol 1992;9:329—334.
  27. Panchenko L.F., Pirozhkov S.V., Popova S.V. et al. Effect of chronic ethanol treatment on peroxisomal acyl-CoA oxidase activity and lipid peroxidation in rat liver and heart. Experientia 1987;43:580—581.
  28. Antonenkov V.D., Pirozhkov S.V., Popova S.V. et al. Effect of chronic ethanol, catalase inhibitor 3-amino-1,2,4- triazole and clofibrate treatment on lipid peroxidation in rat myocardium. Int J Biochem 1989;21:1313—1318.
  29. Анохина И.П. Этиология и патогенез алкоголизма. В кн: Алкоголизм. Руководство для врачей. Под ред. Н.Н. Иванца, М.А. Винниковой. М: МИА 2011:65—77.
  30. Graham D.G., Tiffany S.M., Bell W.R. et al. Autoxidation versus covalent binding of quinones as the mechanism of toxicity of dopamine, 6-hydroxydopamine, and related compounds toward C1300 neuroblastoma cells in vitro. Mol Pharmacol 1978;14:644—653.
  31. Matthews S.B., Henderson A.H., Campbell A.K. The adrenochrome pathway: the major route for adrenalin catabolism by polymorphonuclear leucocytes. J Mol Cell Cardiol 1985;17:339—348.
  32. Bindoli A., Rigrobello M.P., Deeble D.J. Biochemical and toxicological properties of the oxidation products of cathecholamines. Free Radicals Biol Med 1992;1:391—405.
  33. Bandy B., Davison A.J. Interactions between metals, ligands, and oxygen in the autoxidation of 6-hydroxydopamine: mechanisms by which metal chelation enhances inhibition by superoxide dismutase. Arch Biochem Biophys 1987;259:305—315.
  34. Yates J.C., Beamish R.E., Dhalla N.S. Ventricular disfunction and necrosis produced by adrenochrome metabolite of epinephrine: relation to pathogenesis of cathecholamine cardiomyopathy. Am Heart J 1981;102:210—221.
  35. Takeo S., Fliegel L., Beamish R.E. et al. Effect of adrenochrome on rat heart sarcolemmal ATPase activities. Biochem Pharmacol 1980;29:559—564.
  36. Нужный В.П., Тезиков Е.Б., Забирова И.Г. и др. Повреждение миокарда и симпатико-адреналовая система при синдроме отмены этанола у крыс. Вопр мед хим 1989;4:16—20.
  37. Lindros K.O. Human blood acetaldehyde levels: with improved methods, a clearer picture emerges. Alcohol Clin Exp Res 1983;7:70—75.
  38. Akabane J. Pharmacological aspects of manifestation of the acute after-effects of alcoholic beverages: A role of acetaldehyde in alcoholism. Med J Shinshu Univ 1960;5:113—125.
  39. Mizoi Y., Ijiri J., Tatsuno Y. et al. Relationship between facial flushing and blood acetaldehyde levels after alcohol intake. Pharmacol Biochem Behav 1979;10:303—311.
  40. Zhang X., Li S.Y., Brown R.A. et al. Ethanol and acetaldehyde in alcoholic cardiomyopathy: from bad to ugly en route to oxidative stress. Alcohol 2004;32:175—186.
  41. McDonough K.H. The role of alcohol in the oxidant-antioxidant balance in heart. Front Biosci 1999;4:D601—D606.
  42. Hintz K.K., Relling D.P., Saari J.T. et al. Cardiac overexpression of alcohol dehydrogenase exacerbates cardiac contractile dysfunction, lipid peroxidation, and protein damage after chronic ethanol ingestion. Alcohol Clin Exp Res 2003;27:1090—1098.
  43. Ren J., Brown R.A. Influence of chronic alcohol ingestion on acetaldehyde-induced depression of rat cardiac contractile function. Alcohol Alcsm 2000;35:554—560.
  44. Ren J. Acetaldehyde and alcoholic cardiomyopathy: lessons from the ADH and ALDH2 transgenic models. Novartis Found Symp 2007;285:69—76.
  45. Malinowska B., Lupinski S., Godlewski G. et al. Role of endocannabinoids in cardiovascular shock. J Physiol Pharmacol 2008;59:91—107.
  46. Gaskari S.A., Liu H., Moezi L. et al. Role of endocannabinoids in thepathogenesis of cirrhotic cardiomyopathy in bile duct-ligated rats. Br J Pharmacol 2005;146:315—323.
  47. Gebremedhin D., Lange A.R., Campbell W.B. et al. Cannabinoid CB1 receptor of cat cerebral arterial muscle functions to inhibit L-type Ca2+ channel current. Am J Physiol 1999;276:H2085—2093.
  48. Howlett A.C. Cannabinoid receptor signaling. Handb Exp Pharmacol 2005:53—79.
  49. Rajesh M., Mukhopadhyay B., Hasko G. et al. Cannabinoid-1 receptor activation induces reactive oxygen species-dependent and -independent mitogen-activated protein kinase activation and cell death in human coronary artery endothelial cells. Br J Pharmacol 2010;160:688—700.
  50. Mukhopadhyay P., Rajesh M., Batkai S. et al. CB1 cannabinoid receptors promote oxidative stress and cell death in murine models of doxorubicin-induced cardiomyopathy and in human cardiomyocytes. Cardiovasc Res 2010;85:773—784.
  51. Han K.H., Lim S., Ryu J. et al. CB1 and CB2 cannabinoid receptors differentially regulate the production of reactive oxygen species by macrophages. Cardiovasc Res 2009;84:378—386.
  52. Basavarajappa B.S., Saito M., Cooper T.B. et al. Stimulation of cannabinoid receptor agonist 2-arachidonylglycerol by chronic ethanol and its modulation by specific neuromodulators in cerebellar granule neurons. Biochim Biophys Acta 2000;1535:78—86.
  53. Jeong W.I., Osei-Hyiaman D., Park O. et al. Paracrine activation of hepatic CB1 receptors by stellate cell-derived endocannabinoids mediates alcoholic fatty liver. Cell Metab 2008;7:227—235.

Об авторах / Для корреспонденции

ФГБУ Национальный научный центр наркологии Минздрава РФ, Москва
Лаборатория биохимии
Пирожков С.В. - д.м.н., проф., вед.н.с.
Панченко Л.Ф. - д.м.н., проф., акад. РАМН, зав. лабораторией.
E-mail: arnheim-domain@yandex.ru

Также по теме