ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Оксидативный стресс при хронической обструктивной болезни легких: патогенетические и клинические аспекты

А.В. Будневский, С.Н. Авдеев, А.Я. Кравченко, К.В. Вострикова

1) ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России; 2) ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет)
Аннотация. В статье представлен обзор литературы, посвященный изучению влияния оксидативного стресса (ОС) на патогенез и течение хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ). Из проанализированных работ следует, что в патогенезе такого мультифакторного заболевания, как ХОБЛ, ОС играет существенную роль, поддерживая хроническое воспаление, вызывая клеточное старение и нарушение аутофагии активных форм кислорода. В последние годы активно изучаются биомаркеры, которые могут быть использованы для оценки тяжести течения и прогрессирования ХОБЛ, что позволит разработать эффективную антиоксидантную терапию. На основании анализа имеющихся исследований можно считать перспективным определение уровней 8-изопростана, оксида азота, мелатонина в качестве диагностических маркеров оксидативного и нитрозивного стресса при ХОБЛ.

Ключевые слова

хроническая обструктивная болезнь легких
оксидативный стресс
8-изопростан
оксид азота
мелатонин
антиоксидантная терапия

ВВЕДЕНИЕ

Согласно данным Всемирной организации здравоохранения, хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) является 3-й лидирующей причиной смерти в мире. Ежегодно от нее умирает около 3 млн человек. В России, по данным Росстата, доля ХОБЛ в структуре заболеваемости составляет 14,1%, а в структуре смертности – 26% [1–4].

С учетом увеличения распространенности курения в странах с низким и средним уровнем дохода в сочетании с постарением населения в странах с высоким доходом смертность от ХОБЛ и ассоциированных с ней состояний к 2060 г. может достичь 5,4 млн ежегодно [4].

Один из важных механизмов патогенеза ХОБЛ – оксидативный стресс (ОС). Хотя утечка электронов из электрон-транспортной цепи и образование активных форм кислорода (АФК) являются естественными процессами в митохондриях, существуют различные факторы, как внутри-, так и внеклеточные, которые могут усиливать этот процесс и значительно нарушать баланс между оксидантами и антиоксидантами [5].

Легкие могут подвергаться ОС как из-за внешних (курения и загрязнения воздуха), так и внутренних факторов – АФК, высвобождаемых воспалительными клетками, особенно нейтрофилами и макрофагами в легких [6]. ОС обладает повреждающим действием на все структурные компоненты легких и приводит к необратимым изменениям легочной паренхимы, дыхательных путей, сосудов легких [7].

Наиболее изученными механизмами влияния ОС на организм больных ХОБЛ считаются избыточное образование АФК и реактивных форм азота (РФА) и снижение активности ферментов антиоксидантной системы. ОС при ХОБЛ выступает одним из факторов, поддерживающих хроническое воспаление, клеточное старение и нарушающих аутофагию АФК, что вызывает снижение репарации ДНК, усиление аутоиммунных реакций, увеличение выделения слизи и ослабление противовоспалительного ответа [8].

Установлено, что у больных с ХОБЛ в сыворотке крови происходит интенсификация свободно-радикального окисления в виде повышения содержания АФК на 30,1%, малонового диальдегида (МДА) на 125% и снижения активности супероксиддисмутазы (СОД) на 43,2% по сравнению с контрольной группой [9]. Описана прямая корреляция значений АФК с уровнем фибриногена в крови, что в конечном итоге способствует развитию эндотелиальной дисфункции и тромбоэмболических осложнений.

В одном из исследований у госпитализированных пациентов с ХОБЛ было обнаружено повышение уровня МДА, белковых продуктов повышенного окисления и общего оксидантного статуса. В то же время активность СОД была значительно ниже как во время госпитализации, так и при выписке [10].

В другом исследовании при ухудшении состояния пациентов с ХОБЛ наблюдалось увеличение уровня МДА и снижение активности каталазы (КАТ) и уровня глутатиона (ГЛТ) [11]. Индекс Тиффно (отношение объема форсированного выдоха за 1-ю секунду к форсированной жизненной емкости легких – ОФВ1/ФЖЕЛ) у пациентов положительно коррелировал с активностью КАТ и СОД и отрицательно – с уровнем МАД: это подтверждает наличие оксидантно-антиоксидантного дисбаланса у пациентов с ХОБЛ и подчеркивает важность глутатионпероксидазы в поддержании функции легких.

Отмечена значительная разница в параметрах ОС на разных стадиях развития ХОБЛ. Уровни СОД, КАТ и глутатионпероксидазы были ниже у пациентов с легкой, средней степенью тяжести заболевания по сравнению с пациентами, у которых имелась наиболее тяжелая форма ХОБЛ [12]. Полученные результаты свидетельствуют, что степень выраженности ОС у пациентов с ХОБЛ пропорциональна тяжести заболевания.

При ОС у пациентов, страдающих ХОБЛ, часто выявляется повышение уровней сурфактантного белка D (СБ-D) и насыщенных липидами пенистых макрофагов. Однако их роль в патогенезе ХОБЛ пока находится в стадии изучения. Результаты исследования Hsieh M.H. et al. подтвердили наличие повышенных уровней CБ-D в жидкости бронхоальвеолярного лаважа и сыворотках крови мышей, которые подвергались воздействию озона и сигаретного дыма [13]. Установлено, что мыши с нокаутом CБ-D характеризуются повышенным содержанием липидов и наличием воспалительных процессов в дыхательных путях, такими же, как у хронических курильщиков и пациентов с ХОБЛ. В том же исследовании была продемонстрирована большая роль СБ-D в борьбе с ОС и нарушениями обмена липидов, вызванными воздействием озона и табачного дыма. Эти результаты могут открыть новые перспективы применения СБ-D в лечении пациентов с ХОБЛ [13].

Одним из механизмов адаптации клеток к действию ОС служит активация аутофагии АФК, которая уменьшает циркуляцию поврежденных макромолекул и дисфункциональных клеточных органелл. В последние годы активно изучается роль аутофагии в патогенезе ХОБЛ как реакции на ОС [14]. Одной из особых форм аутофагии является митофагия – селективное удаление или деградация митохондрий. Различные формы клеточного стресса, такие как ОС, гипоксия и патогенные инфекции, могут влиять на аутофагию, вызывая образование свободных радикалов и активных форм кислорода, которые, в свою очередь, стимулируют антиоксидантный ответ [15].

ОС активирует различные сигнальные пути киназ, которые влияют на модификацию хроматина (ацетилирование/деацетилирование гистонов и метилирование/деметилирование гистонов) при наличии воспаления, старения и развития резистентности к стероидам. Эти изменения в метилировании хроматина отмечены в легких пациентов с ХОБЛ [16]. Снижение уровня и активности гистонов деацетилазы 2 ассоциировано с наличием резистентности к стероидам при возникновении ОС, что имеет критическое значение, так как модификации гистонов связаны с повреждением и восстановлением ДНК, а также с эпигенетической нестабильностью и преждевременным старением легких [16].

Обнаружено, что при ХОБЛ снижается активность ферментов, таких как паркин- и PTEN-индуцированная предполагаемая киназа 1, которые выполняют важную функцию в процессе митофагии (удаление дисфункциональных митохондрий). Это явление напрямую сопряжено с дефектами в механизмах регуляции качества митохондрий, которые приводят к ускоренному старению клеток при ХОБЛ [17].

В работе Sotgia S. et al. оценивалась концентрация в крови общей и редуцированной формы низкомолекулярного тиолового антиоксиданта глутатиона у пациентов с ХОБЛ в сравнении со здоровыми людьми. Согласно полученным результатам, у больных уровень тиола глутатиона оказался значительно ниже, чем в контрольной группе [18].

В последние годы были изучены механизмы, вызывающие поражение легких под действием озона. Особое внимание уделено путям, которые вызывают хроническое повреждение и гибель клеток дыхательного эпителия, разрушение альвеол и ремоделирование тканей, связанное с развитием хронического воспаления и бронхиальной гиперреактивностью [19]. Первоначально оксидантное повреждение может быть следствием прямого воздействия на целостность мембран и органелл эпителиальных клеток в дыхательных путях, что влечет за собой стрессовую реакцию и высвобождение АФК из митохондрий, а также повреждение ДНК и протеазы. Митохондриальные антиоксиданты и митохондриальная ДНК активируют инфламмасому NLRP3 и ДНК-сенсоры – циклическую GMP-AMP-синтазу (cGAS) и стимулятор генов интерферона (STING). Это ускоряет пути клеточной гибели, включая активацию каспаз, а также приводит к воспалению, усиливающему разрушение, ремоделирование и фиброз альвеолярных перегородок. Соответственно ингибиторы митохондриальных антиоксидантов, инфламмасомы NLRP3, ДНК-сенсоров и интерлейкина 1 (ИЛ-1) потенциально могут применяться в терапии хронических заболеваний дыхательных путей, связанных с ОС [19].

Определена роль гамма-рецептора, активируемого пролифератором пероксисом (PPARγ), и его эндогенного лиганда при ОС у пациентов с ХОБЛ [20]. Методом иммуноферментного анализа (ИФА) был установлен уровень сывороточного лиганда 15-дезокси-дельта-простагландина J2-15 (15d-PGJ2). С помощью вестерн-блоттинга оценивалась экспрессия индикаторов ОС, а посредством иммуногистохимического анализа – активность ядерного рецептора PPARγ в легких. Были исследованы связи между показателями сывороточного 15d-PGJ2, активностью PPARγ и уровнем ОС, а также наличием ХОБЛ. Как показали результаты, у пациентов с ХОБЛ повышение ОС было ассоциировано с уменьшением уровней сывороточного 15d-PGJ2 и легочного PPARγ. Более того, выявлена обратная связь между уровнями сывороточного 15d-PGJ2 и ОС у пациентов с ХОБЛ.

Приведенные данные свидетельствуют о том, что ОС имеет существенное значение в патогенезе ХОБЛ. Соответственно необходимость исследования диагностических маркеров ОС относится к актуальным проблемам современной медицины. В качестве такового в последнее время активно изучается изопростан.

8-ИЗОПРОСТАН В ДИАГНОСТИКЕ ХОБЛ

8-изопростагландин F2α является результатом окисления липидов и широко используется как индикатор ОС. Его содержание может быть измерено в различных биоматериалах, таких как моча, плазма крови, выдыхаемый воздух, околоплодные воды, слюна, а также в тканях. Повышенные уровни 8-изопростана наблюдаются у пациентов с различными заболеваниями легких, включая бронхиальную астму, ХОБЛ и муковисцидоз. Для определения 8-изопростана применяются такие методики, как ИФА, газовая хроматографическая масс-спектрометрия (ГХ- МС) и жидкостная хроматографическая масс-спектрометрия (ЖХ-МС) [21].

Имеются данные, что 8-изопростан, лейкотриен В4 (LTB4) и простагландин Е2 (PGE2) могут быть вовлечены в воспалительные процессы в дыхательных путях у пациентов с ХОБЛ, связанные с обострением [22].

В 2005 г. была впервые изучена экскреция с мочой 8-изопростана в качестве маркера ОС in vivo и продукции LTB4 нейтрофилами у пациентов с ХОБЛ и здоровых людей [23]. Результаты этого исследования указывают на то, что усиление ОС у пациентов с ХОБЛ сопровождается повышенной способностью нейтрофилов синтезировать хемотаксический фактор LTB4. Это, в свою очередь, может способствовать активации и накоплению нейтрофилов в дыхательных путях пациентов с ХОБЛ.

Разработан специфический и чувствительный метод радиоиммунного анализа (РИА) для измерения 8-изопростана в конденсате выдыхаемого воздуха (КВВ). Полученные с помощью этой методики данные дают ценную информацию для понимания клинической фармакологии антиоксидантов и могут быть полезны для мониторинга эффектов медикаментозной терапии [24].

При ХОБЛ обнаружено повышенное содержание 8-изопростана в КВВ. Тем не менее связь между значениями 8-изопростана и параметрами, которые имеют известную прогностическую значимость при ХОБЛ, остается во многом неизвестной. Концентрации 8-изопростана были достоверно повышены в КВВ пациентов с ХОБЛ независимо от нарушения функции легких. Уровни этого маркера коррелировали с выраженностью эмфиземы легких, а также с одышкой по шкале mMRC. Следовательно, показатели 8-изопростана в крови могут отражать выраженность эмфиземы легких у пациентов с ХОБЛ [25, 26], а его определение может быть информативным при оценке тяжести симптомов и функционального статуса пациентов с ХОБЛ.

Содержание 8-изопростана в дыхательных путях также увеличивалось у курильщиков, курильщиков с ХОБЛ и бывших курильщиков. Окисленные липиды в эпителиальных клетках выраженно влияют на экспрессию трансмембранного гликопротеина (СD1b) альвеолярными макрофагами, полученными из моноцитов крови человека (MDM), вызывая токсические реакции в клетках эпителия бронхов и снижая фагоцитарную способность MDM. При этом сами модифицированные частицы липидов могут выступать в качестве аутоантигена, презентируемого на макрофагах, и способствовать прогрессированию заболевания даже после прекращения курения [27].

Установлено, что концентрации 8-изопростана и LTB4 в КВВ, а также уровни С-реактивного белка (СРБ), 8-изопростана, LTB4, ИЛ-8 в сыворотке крови значительно выше у пациентов с ХОБЛ. Уровни СРБ, 8-изопростана и LTB4 в сыворотке крови, а также концентрация ИЛ-8 в КВВ отрицательно коррелировали со значением ОФВ1 [28].

Другие авторы также подтверждают тот факт, что при ХОБЛ имеет место возрастание концентрации перекиси водорода и 8-изопростана в выдыхаемом воздухе. Эти оксиданты, изменяя уровень кальция и активируя фосфокиназу, вызывают сокращение гладкой мускулатуры бронхов. Исследование сигналов Ca2+, связанных с активацией фосфокиназы, может помочь разработке новых подходов к лечению ХОБЛ [29].

Также существуют отдельные сообщения о том, что антиоксидантная терапия у пациентов с ХОБЛ способствует уменьшению изопростана в моче, коррелирующему с тяжестью заболевания [30].

ОКСИД АЗОТА КАК БИОМАРКЕР оксидативного СТРЕССА

Оксид азота (NO) служит маркером воспаления дыхательных путей. Один из удобных, легкодоступных и неинвазивных методов оценки активного воспаления дыхательных путей, вызванного в основном Th2, – определение фракционного выдыхаемого NO (FeNO) [31].

NO производится различными клетками дыхательных путей с помощью NO-синтазы (NOS). Существует три изоформы этого фермента: нейрональная NOS (nNOS), индуцируемая NOS (iNOS) и эндотелиальная (eNOS) [32]. Выработка NO часто увеличивается при воспалительных заболеваниях дыхательных путей, включая обострения ХОБЛ [33]. Нитрозивный стресс принимает участие в патогенезе хронического воспалительного процесса в дыхательных путях, который наблюдается при ХОБЛ. Для оценки выраженности нитрозивного стресса определяют содержание NO в выдыхаемом воздухе. Было выявлено постоянное присутствие нитрозивного стресса в дыхательных путях при ХОБЛ, а также увеличении выраженности данного процесса в случае обострений [34].

По имеющимся данным [35], уровни FeNO в выдыхаемом воздухе значительно выше у пациентов с ХОБЛ степени GOLD 3–4 относительно больных со степенью GOLD 1–2. Также обнаружена слабая отрицательная корреляция между уровнями ОФВ1 и выдыхаемым NO. Определение уровня FeNO может быть использовано в качестве неинвазивной процедуры для мониторинга активности и прогрессирования заболевания у пациента с ХОБЛ.

Результаты исследования Zhou A. et al. подтверждают важность оценки уровня FeNO как прогностического маркера и индикатора эффективности лечения при обострении ХОБЛ [36]. Это позволяет более точно определить тяжесть заболевания и прогнозировать результаты лечения, что может быть полезно при планировании и разработке индивидуального подхода к лечению больных ХОБЛ. Однако для оценки значимости определения FeNO в персонализированном лечении таких пациентов необходимы дальнейшие исследования [37].

ХОБЛ, ОКСИДАТИВНЫЙ СТРЕСС И МЕЛАТОНИН

Известно, что мелатонин не только участвует в регуляции циркадного ритма, но и обладает способностью восстанавливать структурно-функциональную организацию поврежденных тканей легких посредством ряда механизмов, включая регуляцию сигнальных молекул, оксидантного статуса, липидного гомеостаза, поддержку оптимального мембранного потенциала митохондрий [38]. Интеграция эффектов мелатонина с никотиновым рецептором альфа-7 и арилуглеводородным рецептором в регуляции митохондриальной функции предлагается в качестве основы для понимания его роли при широком спектре различных заболеваний легких [38]. Механизм антиоксидантного действия этого гормона обусловлен его способностью связывать свободные радикалы и экзогенные канцерогены [39]. Одновременно через активацию ряда ферментов мелатонин может усиливать образование глутатиона, а также повышать активность СОД и КАТ. За счет этого баланс между антиоксидантными и прооксидантными ферментами в итоге смещается в сторону антиоксидантов [40].

Показано, что мелатонин обладает значительно большей активностью в отношении нейтрализации агрессивного гидроксил-радикала по сравнению с такими антиоксидантами, как глутатион и маннитол [41]. Кроме того, при нейтрализации пероксильных радикалов он оказывается в 2 раза активнее витамина Е [42].

Защитное действие мелатонина на поврежденную легочную ткань продемонстрировано как in vitro, так и in vivo [43]. Его эффект заключается в ослаблении воспалительного процесса в легких. Он активирует внутриклеточный антиоксидант тиоредоксин-1, подавляя путь тиоредоксин-взаимодействующий белок / цитозольный белок (TXNIP/NLRP1), ингибирует нарушенную митофагию, опосредованную активацией инфламмасомы. Также отмечается повышение экспрессии PTEN индуцированной киназы 1 (PINK-1), белка-регулятора аутофагии, ассоциированного с микротрубочками (LC3B-II). Наконец, мелатонин улучшает общий антиоксидантный статус легких при ХОБЛ за счет восстановления транскрипционного фактора (NRF-2-HO-1).

В исследовании, проведенном Morvaridzadeh M. et al., подтверждена взаимосвязь между приемом мелатонина и значительным увеличением общей антиоксидантной способности организма. Отмечено значительное возрастание уровня глутатиона, СОД, глутатионпероксидазы, глутатионредуктазы и снижение МДА в группе пациентов с ХОБЛ [44].

Добавим, что экзогенный мелатонин способствует уменьшению интенсивности ОС и уменьшению выраженности одышки при ХОБЛ, он также ингибирует фосфорилирование киназы ERK и экспрессию Sp1, снижает уровень 8-изопростана в 1,6 раза [39].

Таким образом, определение уровня этого гормона в сыворотке крови и слюне может служить одним из индикаторов ОС.

ВОЗМОЖНОСТИ АНТИОКСИДАНТНОЙ ТЕРАПИИ ПРИ ХОБЛ

Новая концепция и алгоритм ведения пациентов с ХОБЛ в блоке «фенотип-специфическая терапия» включают применение муколитических препаратов с антиоксидантными свойствами, таких как N-ацетилцистеин, карбоцистеин и эрдостеин [45].

Назначение N-ацетилцистеина 600–1200 мг/ сут., эрдостеина 600 мг/сут. и карбоцистеина 1500 мг/ сут. обосновано у больных c частыми обострениями при бронхитическом фенотипе ХОБЛ, особенно если не проводится терапия топическими глюкокортикостероидами. При их назначении может снижаться число обострений, однако обычно улучшения легочной функции у пациентов с ХОБЛ не наблюдается [46–49].

Одновременно ведется поиск более эффективных антиоксидантов, таких как миметики СОД, ингибиторы никотинамидадениндинуклеотидфосфат-оксидазы (НАДФН-оксидазы), митохондриально-направленные антиоксиданты (МАТ) и активаторы ядерного фактора, родственного эритроидному фактору 2 (NRF2), которые могут в перспективе применяться в лечении рассматриваемого заболевания [50].

При ХОБЛ также может быть использована терапия, воздействующая на системные и местные окислительно-восстановительные процессы [51]. Некоторые малые молекулы, такие как антиоксиданты на основе тиола (например, фудостеин, эрдостеин, карбоцистеин и N-ацетил-L-цистеин), способны повышать уровень этого вещества в легких. Кроме того, синтетические молекулы, включая ингибиторы/блокаторы карбонилирования белков и перекисного окисления липидов, каталитические антиоксиданты (миметики СОД) и агенты для спин-улавливания, могут эффективно регулировать ОС, вызванный длительным курением, и связанные с ним клеточные изменения.

В последние годы разработаны антиоксидантные соединения, способные проникать через липидный биослой митохондрий и направлять свое воздействие на митохондриальные АФК. Эти соединения, известные как митохондриально-направленные антиоксиданты (МТА), открывают новые и более эффективные подходы к снижению АФК. Исследования показали, что МТА обладают более сильными защитными свойствами по сравнению с обычными клеточными антиоксидантами. Они не только снижают уровень апоптоза, но и обеспечивают бóльшую защиту митохондриальной ДНК, что делает их перспективными для лечения хронических заболеваний легких, включая ХОБЛ [52].

Список литературы

1. Российское респираторное общество. Федеральные клинические рекомендации: Хроническая обструктивная болезнь легких. Пересмотр: 2023 г. Доступ: https://spulmo.ru/upload/kr/HOBL_2023_draft.pdf?ysclid=lrq75428cz630397288 (дата обращения – 10.06.2024). (Russian Respiratory Society. Federal clinical guidelines: Chronic obstructive pulmonary disease. Revision: 2023. URL: https://spulmo.ru/upload/kr/HOBL_2023_draft.pdf?ysclid=lrq75428cz630397288 (date of access – 10.06.2024)).

2. Заболеваемость населения Российской Федерации по основным классам болезней. Росстат, официальная статистика, здравоохранение. Доступ: https://rosstat.gov.ru/folder/13721 (дата обращения – 10.06.2024). (Morbidity rate of the population of the Russian Federation by main classes of diseases. Federal State Statistics Service (Russia), official statistics, healthcare. URL: https://rosstat.gov.ru/folder/13721 (date of access – 10.06.2024) (In Russ.)).

3. World Health Organization. Chronic obstructive pulmonary disease (COPD). URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/chronic-obstructive-pulmonary-disease-(copd) (date of access – 10.06.2024).

4. Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease (GOLD). Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of COPD. URL: https://goldcopd.org/wp-content/uploads/2024/01/GOLD-2024_v1.2-11Jan24_WMV-1.pdf (date of access – 10.06.2024).

5. Białas A.J., Sitarek P., Miłkowska-Dymanowska J. et al. The role of mitochondria and oxidative/antioxidative imbalance in pathobiology of chronic obstructive pulmonary disease. Oxid Med Cell Longev. 2016; 2016: 7808576.

https://doi.org/10.1155/2016/7808576. PMID: 28105251. PMCID: PMC5220474.

6. Barnes P.J. Inflammatory mechanisms in patients with chronic obstructive disease. J Allergy Clin Immunol. 2016; 138 (1): 16–27.

https://doi.org/10.1016/j.jaci.2016.05.011. PMID: 27373322.

7. Polverino F., Сelli B.R., Owen C.A. COPD as an endothelial disorder: endothelial injury linking lesions in the lungs and other organs. Pulm Circ. 2018; 8(1): 2045894018758528.

https://doi.org/10.1177/2045894018758528. PMID: 29468936. PMCID: PMC5826015.

8. Bernardo I., Bozinovski S., Vlahos R. Targeting oxidant-dependent mechanisms for the treatment of COPD and its comorbidities. Pharmacol Ther. 2015; 155: 60–79.

https://doi.org/10.1016/j.pharmthera.2015.08.005. PMID: 26297673.

9. Saburova A.M., Nasyrdzhonova H.R., Sharipova H.E., Kurbanova M.B. Features of free radical oxidation and metabolic activity of vascular endothelium in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Avicenna’s Bulletin. 2019; 21(1): 38–42.

https://doi.org/10.25005/2074-0581-2019-21-1-38-42.

10. Stanojkovic I., Kotur-Stevuljevic J., Milenkovic B. et al. Pulmonary function, oxidative stress and inflammatory markers in severe COPD exacerbation. Respir Med. 2011; 105: S31–S37.

https://doi.org/10.1016/S0954-6111(11)70008-7. PMID: 22015083.

11. Arja C., Surapaneni K.M., Raya P. et al. Oxidative stress and antioxidant enzyme activity in South Indian male smokers with chronic obstructive pulmonary disease. Respirology. 2013; 18(7): 1069–75.

https://doi.org/10.1111/resp.12118. PMID: 23683270.

12. Singh S., Verma S.K., Kumar S. et al. Evaluation of oxidative stress and antioxidant status in chronic obstructive pulmonary disease. Scand J Immunol. 2017; 85(2): 130–37.

https://doi.org/10.1111/sji.12498. PMID: 28256060.

13. Hsieh M.H., Chen P.C., Hsu H.Y. et al. Surfactant protein D inhibits lipid-laden foamy macrophages and lung inflammation in chronic obstructive pulmonary disease. Cell Mol Immunol. 2023; 20(1): 38–50.

https://doi.org/10.1038/s41423-022-00946-2. PMID: 36376488. PMCID: PMC9794778.

14. Zhao X., Zhang Q., Zheng R. The interplay between oxidative stress and autophagy in chronic obstructive pulmonary disease. Front Physiol. 2022; 13: 1004275.

https://doi.org/10.3389/fphys.2022.1004275. PMID: 36225291. PMCID: PMC9548529.

15. Albano G.D., Montalbano A.M., Gagliardo R., Profita M. Autophagy/mitophagy in airway diseases: Impact of oxidative stress on epithelial cells. Biomolecules. 2023; 13(8): 1217.

https://doi.org/10.3390/biom13081217. PMID: 37627282. PMCID: PMC10452925.

16. Sundar I.K., Yao H., Rahman I. Oxidative stress and chromatin remodeling in chronic obstructive pulmonary disease and smoking-related diseases. Antioxid Redox Signal. 2013; 18(15): 1956–71.

https://doi.org/10.1089/ars.2012.4863. PMID: 22978694. PMCID: PMC3624634.

17. Antune M.A., Lopes-Pacheco M., Rocco P.R. Oxidative stress-derived mitochondrial dysfunction in chronic obstructive pulmonary disease: A concise review. Oxid Med Cell Longev. 2021; 2021: 6644002.

https://doi.org/10.1155/2021/6644002. PMID: 37448755. PMCID: PMC10337713.

18. Sotgia S., Paliogiannis P., Sotgiu E. et al. Systematic review and meta-analysis of the blood glutathione redox state in chronic obstructive pulmonary disease. Antioxidants. 2020; 9(11): 1146.

https://doi.org/10.3390/antiox9111146. PMID: 33218130. PMCID: PMC7698942.

19. Wiegman C.H., Li F., Ryffel B. et al. Oxidative stress in ozone-induced chronic lung inflammation and emphysema: A facet of chronic obstructive pulmonary disease. Front Immunol. 2020; 11: 1957.

https://doi.org/10.3389/fimmu.2020.01957. PMID: 32983127. PMCID: PMC7492639.

20. Ma S.X., Xie G.F., Fang P. et al. Low 15d-PGJ2 status is associated with oxidative stress in chronic obstructive pulmonary disease patients. Inflamm Res. 2023; 72(2): 171–80.

https://doi.org/10.1007/s00011-022-01637-4. PMID: 36371490.

21. Ma L., Sun D., Xiu G. et al. Quantification of plasma 8-isoprostane by high-performance liquid chromatography with tandem mass spectrometry in a case-control study of lung cancer. Int J Environ Res Public Health. 2022; 19(19): 12488.

https://doi.org/10.3390/ijerph191912488. PMID: 36231826. PMCID: PMC9566031.

22. Drozdovszky O., Barta I., Antus B. Sputum eicosanoid profiling in exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease. Respiration. 2014; 87(5): 408–15.

https://doi.org/10.1159/000358099. PMID: 24714447.

23. Santus P., Sola A., Carlucci P. et al. Lipid peroxidation and 5-lipoxygenase activity in chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 2005; 171(8): 838–43.

https://doi.org/10.1164/rccm.200404-558OC. PMID: 15579728.

24. Montuschi P., Barnes P.J., Ciabattoni G. Measurement of 8-isoprostane in exhaled breath condensate. Methods Mol Biol. 2010; 594: 73–84.

https://doi.org/10.1007/978-1-60761-411-1_5. PMID: 20072910.

25. Makris D., Paraskakis E., Korakas P. et al. Exhaled breath condensate 8-isoprostane, clinical parameters, radiological indices and airway inflammation in COPD. Respiration. 2008; 75(2): 138–44.

https://doi.org/10.1159/000106377. PMID: 17641539.

26. Inonu H., Doruk S., Sahin S. et al. Oxidative stress levels in exhaled breath condensate associated with COPD and smoking. Respir Care. 2012; 57(3): 413–19.

https://doi.org/10.4187/respcare.01302. PMID: 21968597.

27. Ween M.P., White J.B., Tran H.B. et al. The role of oxidised self-lipids and alveolar macrophage CD1b expression in COPD. Sci Rep. 2021; 11(1): 4106.

https://doi.org/10.1038/s41598-021-82481-0. PMID: 33602992. PMCID: PMC7892841.

28. Kazmierczak M., Ciebiada M., Pekala-Wojciechowska A. et al. Evaluation of markers of inflammation and oxidative stress in COPD patients with or without cardiovascular comorbidities. Heart Lung Circ. 2015; 24(8): 817–23.

https://doi.org/10.1016/j.hlc.2015.01.019. PMID: 25797323.

29. Kume H., Yamada R., Sato Y., Togawa R. Airway smooth muscle regulated by oxidative stress in COPD. Antioxidants. 2023; 12(1): 142.

https://doi.org/10.3390/antiox12010142. PMID: 36671004. PMCID: PMC9854973.

30. Santus P., Sola A., Carlucci P. et al. Lipid peroxidation and 5-lipoxygenase activity in chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 2005; 171(8): 838–43.

https://doi.org/10.1164/rccm.200404-558OC. PMID: 15579728.

31. Promsrisuk T., Kongsui R., Sriraksa N. et al. Fractional exhaled nitric oxide is correlated with pulmonary function in patients with stable chronic obstructive pulmonary disease. Naresuan Phayao Journal. 2021; 14(2): 39–50.

32. Brindicci C., Ito K., Torre O. et al. Effects of aminoguanidine, an inhibitor of inducible nitric oxide synthase, on nitric oxide production and its metabolites in healthy control subjects, healthy smokers, and COPD patients. Chest. 2009; 135(2): 353–67.

https://doi.org/10.1378/chest.08-0964. PMID: 18719059.

33. Liu J., Sandrini A., Thurston M.C. et al. Nitric oxide and exhaled breath nitrite/nitrates in chronic obstructive pulmonary disease patients. Respiration. 2007; 74(6): 617–23.

https://doi.org/10.1159/000106379. PMID: 17643055.

34. Lazar Z., Kelemen A., Galffy G. et al. Central and peripheral airway nitric oxide in patients with stable and exacerbated chronic obstructive pulmonary disease. J Breath Res. 2018; 12(3): 036017.

https://doi.org/10.1088/1752-7163/aac10a. PMID: 29813036.

35. See J., Bayot R. Correlation of fractional exhaled nitric oxide level with severity of COPD. Chest. 2017; 152(4): A804.

https://doi.org/10.1016/j.chest.2017.08.835.

36. Zhou A., Zhou Z., Deng D. et al. The value of FENO measurement for predicting treatment response in patients with acute exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 2020; 15: 2257–66.

https://doi.org/10.2147/COPD.S263673. PMID: 33061343. PMCID: PMC7522317.

37. Liu X., Zhang H., Wang Y. et al. Fractional exhaled nitric oxide is associated with the severity of stable COPD. COPD. 2020; 17(2): 121–27.

https://doi.org/10.1080/15412555.2019.1704231. PMID: 32116037.

38. Mazzoccoli G., Kvetnoy I., Mironova E. et al. The melatonergic pathway and its interactions in modulating respiratory system disorders. Biomed Pharmacother. 2021; 137: 111397.

https://doi.org/10.1016/j.biopha.2021.111397. PMID: 33761613.

39. Будневский А.В., Цветикова Л.Н., Овсянников Е.С., Гончаренко О.В. Мелатонин: роль в развитии хронической обструктивной болезни легких. Пульмонология. 2016; 26(3): 372–378. (Budnevsky A.V., Tsvetikova L.N., Ovsyannikov E.S., Goncharenko O.V. Melatonin: role in the development of chronic obstructive pulmonary disease. Pulmonologiya = Pulmonology. 2016; 26(3): 372–378 (In Russ.)).

https://doi.org/10.18093/0869-0189-2016-26-3-372-378. EDN: WTIIMP.

40. Арушанян Э.Б. Защитная роль мелатонина при нарушениях мозгового кровообращения. РМЖ. 2010; 18(8): 495–499. (Arushanyan E.B. The protective role of melatonin in disorders of cerebral circulation. Russkiy meditsinskiy zhurnal = Russian Medical Journal. 2010; 18(8): 495–499 (In Russ.)). EDN: PIQCAX.

41. Веснушкин Г.М., Плотникова Н.А., Семенченко А.В., Анисимов В.Н. Мелатонин угнетает канцерогенез легких, индуцируемый уретаном у мышей. Вопросы онкологии. 2006; 52(2): 164–168. (Vesnushkin G.M., Plotnikova N.A., Semenchenko A.V., Anisimov V.N. Melatonin inhibits lung carcinogenesis induced by urethane in mice. Voprosy onkologii = Issues of Oncology. 2006; 52(2): 164–168 (In Russ.)). EDN: KVXSFR.

42. Анисимов В.Н. Мелатонин: роль в организме, применение в клинике. Система. 2007; 40. (Anisimov V.N. Melatonin: Role in the body, application in the clinic. Sistema = System. 2007; 40 (In Russ.)).

43. Mahalanobish S., Dutta S., Saha S., Sil P.C. Melatonin induced suppression of ER stress and mitochondrial dysfunction inhibited NLRP3 inflammasome activation in COPD mice. Food Chem Toxicol. 2020; 144: 111588.

https://doi.org/10.1016/j.fct.2020.111588. PMID: 32738376.

44. Morvaridzadeh M., Nachvak S.M., Agah S. et al. Effect of soy products and isoflavones on oxidative stress parameters: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Food Research International. 2020; 137: 109578.

https://doi.org/10.1016/j.foodres.2020.109578. PMID: 33233189.

45. Авдеев С.Н., Лещенко И.В., Айсанов З.Р. Новая концепция и алгоритм ведения пациентов с хронической обструктивной болезнью легких. Пульмонология. 2023; 33(5): 587–594. (Avdeev S.N., Leshchenko I.V., Aisanov Z.R. A new concept and algorithm for the management of patients with chronic obstructive pulmonary disease. Pulmonologiya = Pulmonology. 2023; 33(5): 587–594 (In Russ.)).

https://doi.org/10.18093/0869-0189-2023-33-5-587-594. EDN: XWOLJE.

46. Cazzola M., Calzetta L., Page C. et al. Influence of N-acetylcysteine on chronic bronchitis or COPD exacerbations: A meta-analysis. Eur Respir Rev. 2015; 24(137): 451–61.

https://doi.org/10.1183/16000617.00002215. PMID: 26324807. PMCID: PMC9487680.

47. Poole P., Black P.N., Cates C.J. Mucolytic agents for chronic bronchitis or chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2012; (8): CD001287.

https://doi.org/10.1002/14651858.cd001287.pub4. PMID: 22895919.

48. Zeng Z., Yang D., Huang X., Xiao Z. Effect of carbocisteine on patients with COPD: A systematic review and meta-analysis. Int J Chron Obstruct Pulmon. Dis. 2017; 12: 2277–83.

https://doi.org/10.2147/COPD.S140603. PMID: 28814855. PMCID: PMC5546781.

49. Dal Negro R., Wedzicha J., Iversen M. et al. Effect of erdosteine on the rate and duration of COPD exacerbations: The RESTORE study. Eur Respir J. 2017; 50(4): 1700711.

https://doi.org/10.1183/13993003.00711-2017. PMID: 29025888. PMCID: PMC5678897.

50. Calverley P.M., Page C., Dal Negro R.W. et al. Effect of erdosteine on COPD exacerbations in COPD patients with moderate airflow limitation. Int J Chron Obstruct Pulmon Dis. 2019; 14: 2733–44.

https://doi.org/10.2147/copd.s221852. PMID: 31819405. PMCID: PMC6896911.

51. Barnes P.J. Oxidative stress in chronic obstructive pulmonary disease. Antioxidants. 2022; 11(5): 965.

https://doi.org/10.3390/antiox11050965. PMID: 35624831. PMCID: PMC9138026.

52. Fairley L.H., Das S., Dharwal V. et al. Mitochondria-targeted antioxidants as a therapeutic strategy for chronic obstructive pulmonary disease. Antioxidants. 2023; 12(4): 973.

https://doi.org/10.3390/antiox12040973. PMID: 37107348. PMCID: PMC10135688.

Об авторах / Для корреспонденции

Андрей Валериевич Будневский, д. м. н., профессор, заслуженный изобретатель РФ, проректор по научно-инновационной деятельности, заведующий кафедрой факультетской терапии ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России. Адрес: 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
E-mail: avbudnevski@vrngmu.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-1171-2746
Сергей Николаевич Авдеев, д. м. н., профессор, академик РАН, заведующий кафедрой пульмонологии института клинической медицины им. Н.В. Склифосовского ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова» Минздрава России (Сеченовский университет), директор Национального медицинского исследовательского центра по профилю «Пульмонология», главный внештатный специалист-пульмонолог Минздрава России. Адрес: 119991, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2.
E-mail: serg_avdeev@list.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5999-2150
Андрей Яковлевич Кравченко, д. м. н., профессор кафедры факультетской терапии ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России. Адрес: 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
E-mail: k.f.fer@vrngmu.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-0297-1735
Карина Валерьевна Вострикова, ассистент кафедры факультетской терапии ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России. Адрес: 394036, г. Воронеж,
ул. Студенческая, д. 10.
E-mail: prudnikova.2012@inbox.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2103-5328

Также по теме