ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Функциональные резервы сердца в условиях алиментарного дефицита магния

Спасов А.А., Харитонова М.В., Иежица И.Н., Желтова А.А., Тюренков И.Н., Гурова Н.А. 

ГБОУ ВПО Волгоградский государственный медицинский университет Минздравсоцразвития РФ, 400131 Волгоград, пл. Павших Борцов, 1
Целью исследования являлась оценка функциональных резервов миокарда у животных с дефицитом магния при проведении нагрузочных тестов. Дефицит магния моделировали с помощью магнийдефицитной диеты в течение 10 нед. После снижения уровня магния в эритроцитах на 54% с помощью многоканальной системы обработки сигналов (ВЕАТ) у животных регистрировали левожелудочковое давление, скорость сокращения и скорость расслабления миокарда, частоту сердечных сокращений, систолическое и диастолическое артериальное давление, интенсивность функционирования структур. Затем проводили нагрузку объемом, дозированную стимуляцию адренорецепторов сердца, максимальную изометрическую нагрузку путем пережатия восходящей части дуги аорты. У животных с дефицитом магния отмечался меньший прирост левожелудочкового давления, скорости сокращения и расслабления миокарда в условиях всех функциональных тестов, а также систолического артериального давления при нагрузке объемом и адреналином. Выявленное снижение реактивности миокарда в условиях нагрузки объемом, адреналином и изометрической нагрузки может лежать в основе генеза сердечной недостаточности при дефиците магния.

Ключевые слова

дефицит магния
адреналин
изометрическая нагрузка
преднагрузка

В последнее время среди нарушений электролитного баланса дефицит магния становится все более распространенным. По данным разных авторов, дефицит магния встречается у 15—33% населения [1, 2]. У больных с сердечно-сосудистыми заболеваниями распространенность данной патологии минерального обмена колеблется еще в более широких пределах (от 10 до 70%), особенно при лечении петлевыми диуретиками и сердечными гликозидами [3—7]. Кроме того, дефицит магния часто встречается при алкоголизме, сахарном диабете, ожирении, пролапсе митрального клапана [8—11]. Влияние дефицита магния на аритмогенный порог достаточно изучено [12—14], в то время как кардиодинамические эффекты магния, по мнению различных авторов, неоднозначны [14—17]. Кроме того, в литературе отсутствуют данные об изменении функциональных резервов миокарда в условиях алиментарного магниевого дефицита.

Целью исследования являлась оценка функциональных резервов миокарда у животных с дефицитом магния при проведении нагрузочных тестов.

Материал и методы

Эксперименты выполнены на 39 крысах-самцах массой 200—240 г. Животных содержали в условиях вивария согласно правилам лабораторной практики при проведении доклинических исследований в РФ (ГОСТ Р 50258-92, ГОСТ З 51000.3-96 и 51000.4-96), с соблюдением международных рекомендаций Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых при экспериментальных исследованиях (1997). Эксперименты были одобрены комитетом по этической экспертизе исследований Волгоградского ГМУ. Интактная группа животных составляла контроль (n=21). У 18 крыс вызывали магнийдефицитное состояние, для моделирования которого использовали специальную магнийдефицитную диету. В состав диеты входили казеин (20%), крахмал (70%), DL-метионин (0,3%), холина битартрат (0,2%), кукурузное масло (5%), поливитаминная смесь (1%) и полиминеральная смесь, не содержащая магний (3,5%), аналогичная полиминеральной смеси AIN-76 фирмы MP Biomedicals (США).

Весь рацион готовили на деионизированной воде, эту же воду в ходе эксперимента использовали в качестве питьевой для животных, находящихся на диете. Интактные животные получали полноценную диету, содержащую 0,84 г MgO на 1 кг рациона, что соответствовало 0,5 г элементарного магния на 1 кг рациона.

Скорость и глубину развития гипомагниемии контролировали, определяя содержание магния в эритроцитах животных по цветной реакции с титановым желтым [18]. При снижении концентрации магния менее 1,4 ммоль/л в эритроцитах считали, что у животных развилась гипомагниемия средней тяжести. На 71-й день диеты проводили регистрацию основных показателей кардио- и гемодинамики. Животных предварительно наркотизировали (этаминал натрия 40 мг/кг, внутрибрюшинно), в условиях искусственной вентиляции легких выполняли торакотомию и перикардотомию. Для измерения внутрижелудочкового давления и его первой производной (+dp/dt и –dp/dt), частоты сердечных сокращений (ЧСС) через верхушку сердца в полость левого желудочка вводили катетер — иглу, соединенную с датчиком (Элема, Швеция). Для измерения систолического и диастолического артериального давления (АД) катетеризировали общую сонную артерию, катетер также соединяли с датчиком. Данные показатели записывали и обрабатывали с помощью универсальной компьютерной многоканальной системы обработки сигналов в реальном времени ВЕАТ (Москва, 2000). Интенсивность функционирования структур получали расчетным способом по формуле [19, 20]:

Формула

где m — масса левого желудочка + 2/3 массы межжелудочковой перегородки в миллиграммах, ИФС — интенсивность функционирования структур.

Коэффициент массы сердца рассчитывали как отношение массы сердца к массе тела.

После периода стабилизации регистрируемых показателей (10 мин) поочередно проводили функциональные пробы: нагрузка объемом, дозированная стимуляция адренорецепторов сердца, максимальная изометрическая нагрузка. В качестве нагрузки объемом использовали быстрое внутривенное введение (в течение 1 с) изотонического раствора хлорида натрия 0,3 мл на 100 г массы животного [20]. Дозированную стимуляцию адренорецепторов сердца осуществляли путем введения адреналина внутривенно в разведении 10–6 г/л из расчета 0,1 мл/100 г массы тела. Максимальную изометрическую нагрузку (пережатие восходящей части дуги аорты) обеспечивали в течение 20 с [19, 20]. Используемые функциональные пробы позволяли выявить ино- и хронотропные резервы сердца.

Статистическую обработку данных проводили с помощью программы Statistica 6.0. Для сравнения средних значений показателей использовали критерий Манна—Уитни. Различия считали статистически значимыми при p<0,05.

Результаты

У крыс, находящихся на магнийдефицитной диете, к концу 10-й недели наблюдалось достоверное снижение уровня магния в эритроцитах в среднем на 54% (с 2,01±0,09 до 0,92±0,07 ммоль/л) в сравнении с группой интактных крыс (p<0,05). Снижение концентрации магния в эритроцитах сопровождалось изменением внешнего вида животных (потускнение шерстного покрова, гиперемия открытых участков тела — ушных раковин, хвоста и лап). Полученные данные подтверждают ранее полученные результаты работ других авторов в условиях дефицита магния [7].

У животных с дефицитом магния до проведения нагрузочных тестов отмечалась тенденция к росту левожелудочкового давления на 13,5% (с 94±3,2 до 107,7±4,0 мм рт.ст.), скорости сокращения — на 10% (с 2489,7±125,2 до 2740,8±174,3 мм рт.ст. в секунду), скорости расслабления — на 6,7% (с 1804,3±61,76 до 1925±49,7 мм рт.ст. в секунду) по сравнению с контрольной группой. Систолическое АД достоверно превышало на 17% (100±6 и 85±3 мм рт.ст.), а диастолическое — на 27% (79±4 и 62±4 мм рт.ст.), аналогичные показатели у интактных животных, ЧСС превышала контрольные значения на 9% (р<0,05). Коэффициенты массы сердца у контрольных и магнийдефицитных животных статически значимо не различались (0,40±0,03 и 0,39±0,03 соответственно).

В условиях алиментарного дефицита магния у животных наблюдались следующие изменения кардиогемодинамики при проведении нагрузочных тестов.

Нагрузка объемом, имитирующая увеличение преднагрузки (рис. 1), у животных с дефицитом магния по сравнению с животными контрольной группы привела к значительно меньшему увеличению левожелудочкового давления, максимальных скоростей сокращения и расслабления. Максимальный прирост левожелудочкового давления в группе животных, получавших безмагниевую диету, отмечался на 30-й секунде и был достоверно в 2,6 раза ниже, чем в группе контрольных животных. Степень прироста скорости сокращения миокарда на 30-й секунде в группе животных с дефицитом магния была в 1,7 раза меньше (p<0,05), чем в группе интактных животных, а прирост скорости расслабления был ниже в 2,6 раза. У животных, получавших магнийдефицитную диету, в отличие от контрольной группы, при нагрузке объемом не отмечено выраженного подъема АД (см. рис. 1), что, очевидно, обусловлено отсутствием увеличения сердечного выброса, несмотря на увеличение ЧСС, которое наблюдается в норме [20]. У животных с дефицитом магния прирост интенсивности функционирования структур был в 3,1 раза ниже, чем в группе контроля (p<0,05).

Рисунок 1.

В ответ на введение адреналина (рис. 2) прирост левожелудочкового давления, максимальной скорости сокращения и расслабления миокарда у животных с дефицитом магния был, соответственно, в 2,3, 2,25 и 2,6 раза меньше, чем в группе контроля.

Рисунок 2.

Систолическое АД возрастало в группе животных с дефицитом магния также достоверно меньше, чем в группе интактных животных (см. рис. 2). Интенсивность функционирования структур миокарда была значительно ниже в группе магнийдефицитных животных. Так, на 60-й секунде после введения адреналина интенсивность функционирования структур была в 2,8 раза ниже, чем в группе контроля.

В условиях максимальной изометрической нагрузки у животных с алиментарным дефицитом магния прирост левожелудочкового давления, скорости сокращения и расслабления миокарда был в 1,7, 2 и 2,12 раза меньше, чем в группе контроля (см. таблицу). Во время этой пробы интенсивность функционирования структур миокарда у магнийдефицитных животных возрастала только на 92,6%, тогда как у контрольных животных — на 172,3%, т.е. в 1,9 раза меньше.

Таблица. Показатели кардио- и гемодинамики крыс с дефицитом магния при пережатии восходящей части дуги аорты (М±м)

Примечание. * — p<0,05 при сравнении с контрольной группой (интактные животные). ЛЖД — левожелудочковое давление; ИФС — интенсивность функционирования структур; dp/dt — первая производная внутрижелудочкового давления; ЧСС — частота сердечных сокращений.

Обсуждение

Таким образом, перед функциональными пробами у животных с дефицитом магния по сравнению с интактной группой АД имело тенденцию к повышению. Эти результаты согласуются с данными, полученными другими исследователями. Так, T.M. Paravicini и соавт. показали, что у животных с генетически обусловленной гипомагниемией наблюдается более высокое систолическое АД [22]. В основе данного явления может лежать активация симпатико-адреналовой и ренин-ангиотензин-альдостероновой систем [23], о чем также свидетельствует более высокая ЧСС у магнийдефицитных животных по сравнению с таковой в интактной группе.

При нагрузке объемом, введении адреналина и в условиях максимальной изометрической нагрузки (пережатие аорты) у животных с дефицитом магния отмечался меньший прирост левожелудочкового давления, скорости сокращения и расслабления миокарда, интенсивности функционирования структур миокарда.

Описанные изменения кардиогемодинамики свидетельствуют о снижении функциональных резервов сердца у магнийдефицитных животных. При этом можно предположить, что дефицит магния способствует формированию латентной сердечной недостаточности, проявления которой можно наблюдать в условиях нагрузочных тестов.

Как известно, дефицит магния приводит к развитию системной иммуновоспалительной реакции. Происходят повышение тромбогенного потенциала сосудистой стенки, усиление экспрессии молекул межклеточной адгезии и стимуляция пролиферации гладких мышечных клеток [24]. По данным литературы, низкий уровень внеклеточного магния стимулирует синтез молекул адгезии — маркера воспаления, который взаимодействует с интегрином VLA-4 (very late activation antigen-4), экспрессируемым моноцитами и лимфоцитами. Местная же адгезия лейкоцитов к стенкам капилляров является одним из ключевых этапов воспаления и иммунного ответа. После адгезии лейкоциты пенетрируют сосудистую стенку под действием цитокинов, вырабатываемых эндотелием. При дефиците магния отмечается повышение концентраций факторов роста интерлейкина-1 и интерлейкина-6, задействованных в формировании реакции острой фазы воспаления [25]. Наблюдается также увеличение диаметра и проницаемости сосудистой стенки, что облегчает хемотаксис лейкоцитов и может служить пусковым механизмом воспалительно-дистрофических изменений во многих органах и тканях, в том числе в миокарде [26—28].

Кроме того, полученные результаты могут объясняться важной метаболической ролью магния. Он входит в состав кофакторов ферментов, регулирующих энергетический обмен и содержание макроэргических соединений в клетках. Так, магний участвует в активации АТФаз, регулирует активность ряда ионных каналов, а также участвует в процессах синтеза нуклеиновых кислот, транскрипции и трансляции благодаря способности образовывать устойчивые трехкомпонентные комплексы с нуклеотидами [29—31]. В анаэробном цикле превращения глюкозы в пируват 7 ферментов являются магнийзависимыми [32]. Кроме того, дефицит магния сопровождается изменением соотношения Ca2+/Mg2+, что также влияет на сократимость миокарда.

Ишемия миокарда сопровождается потерей кардиомиоцитами как магния, так и АТФ [33]. Учитывая, что дефицит магния связан с ростом риска развития ишемии сердечной мышцы [34], можно предположить, что именно данное патологическое состояние в той или иной степени развивается у магнийдефицитных животных в условиях нагрузочных тестов.

У животных с дефицитом магния адреналин не приводил к столь выраженному увеличению левожелудочкового давления, сократимости и расслабления, систолического и диастолического АД, как у интактных животных. По мнению L.T. Williams и соавт., M.S. Skorodin и соавт., W.J. Mroczek и соавт., магний необходим для активации аденилатциклазы и синтеза цАМФ. цАМФ обеспечивает фосфорилирование протеинкиназы, что в кардиомиоцитах приводит к открытию кальциевых каналов и повышению сократительной активности. Иначе говоря, магний необходим для реализации инотропного эффекта адреналина [17, 35, 36].

Заключение

Таким образом, у крыс, находящихся на безмагниевой диете в течение 10 нед, отмечается выраженное снижение уровня магния в эритроцитах (с 2,01 до 0,9 ммоль/л). У животных с алиментарным дефицитом магния в сравнении с группой контроля в ответ на нагрузочные пробы (нагрузка объемом, на адренореактивность и при максимальной изометрической нагрузке) в значительно меньшей степени увеличиваются скорости сокращения и расслабления сердца, внутрижелудочковое давление, интенсивность функционирования структур миокарда. Выявленное снижение реактивности миокарда в условиях изометрической нагрузки, а также нагрузки объемом, адреналином может лежать в основе генеза сердечной недостаточности при дефиците магния. Можно предположить, что сердечная недостаточность при алкоголизме, метаболическом синдроме, пролапсе митрального клапана является в том числе следствием магниевого дефицита, часто сопровождающего данные заболевания.

Работа выполнена при поддержке гранта президента РФ для молодых кандидатов наук 2010 года (проект МК-4935.2010.7 «Дефицит магния и его коррекция в патогенезе заболеваний сердечно-сосудистой системы»)

Список литературы

1. Fox C.H., Ramsoomair D., Mahoney M.C. et al. An investigation of hypomagnesemia among ambulatory urban African Americans. J Fam Pract 1999;48:636—639.

2. Schimatschek H.F. Prevalence of hypomagnesemia in an unselected German population of 16,000 individuals. Magnes Res 2001;14:283—290.

3. Gromova O.A., Avdeenko T.V., Burtsev E.M. et al. Magnesium deficiency in children with minimal brain dysfunction. Klin Farmakol Ter 1998;7:52—53. Russian: (ГромоваО.А., АвдеенкоТ.В., БурцевЕ.М. и др. Дефицит магния у детей с минимальной мозговой дисфункцией и его коррекция Магне B6. Клин фармакол и тер 1998;7:52—53).

4. Deshmukh C.T., Rane S.A., Gurav M.N. Hypomagnesaemia in paediatric population in an intensive care unit. J Postgrad Med 2000;46:179—180.

5. Hayes J.P., Ryan M.F., Brazil N. et al. Serum hypomagnesaemia in an elderly day-hospital population. Ir Med J 1989;82:117—119.

6. Abbott R.D., Ando F., Masaki K.H. et al. Dietary magnesium intake and the future risk of coronary heart disease (the Honolulu Heart Program). Am J Cardiol 2003;15:665—669.

7. Seelig M.S. Magnesium deficiency in the pathogenesis of disease. Early roots of cardiovascular, skeletal and renal abnormalities. L.V. Avioli (ed). — New York, N.Y.: Publ. Plenum Medical Book Co., 1980; 345.

8. Elisaf M., Merkouropoulos M., Tsianos E.V., Siamopoulos K.C. Pathogenic mechanisms of hypomagnesemia in alcoholic patients. J Trace Elem Med Biol 1995;9:210—214.

9. Huerta M.G., Roemmich J.N., Kington M.L. et al. Magnesium deficiency is associated with insulin resistance in obese children. Diabetes Care 2005;28:1175—1181.

10. Bobkowski W., Nowak A., Durlach J. The importance of magnesium status in the pathophysiology of mitral valve prolapse. Magnes Res 2005;18:35—52.

11. Iezhitsa I.N. Potassium and magnesium depletions in congestive heart failure — pathophysiology, consequences and replenishment. Clin Calcium 2005;15:123—133.

12. Spasov A.A., Iezhitsa I.N., Zhuravleva N.V. et al. Comparative study of the antiarrhythmic activity of L-, D-and DL-stereoisomers of potassium magnesium aspartate. Eksp Klin Farmakol 2007;1:17—21. Russian: (СпасовА.А., Иежица И.Н., Журавлева Н.В. и др. Сравнительное изучение противоаритмической активности L-, D- и DL-стереоизомеров калия магния аспарагината. Экспер клин фармакол 2007;1:17—21).

13. Spasov A.A., Iezhitsa I.N., Zhuravleva N.V. et al. Comparative study of the antiarrhythmic activity of magnesium aspartate L-, D- and DL-aspartate stereoisomers. Kardiologiia 2006;7:62—65. Russian: (Спасов А.А.,Иежица И.Н., Журавлева Н.В. и др. Сравнительная оценка противоаритмической активности L-, D- и DL-стереоизомеров магния аспарагината. Кардиология 2006;7;62—65).

14. Spasov A.A., Iezhitsa I.N., Kharitonova M.V., Gurova N.A. Arrhythmogenic threshold of the myocardium under conditions of magnesium deficiency. Bull Exp Biol Med 2008;1:63—65. Russian: (Спасов А.А., Иежица И.Н,Харитонова М.В., Гурова Н.А. Аритмогенный порог миокарда в условиях дефицита магния. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2008;7:69—71).

15 . Critelli G., Ferro G., Peschle C. et al. Myocardial contractility after injection or prolonged infusion of magnesium sulfate. Acta Cardiol 1977;32:65—73.

16. James M.F.M., Cork R.C., Dennett J.E. Cardiovascular effects of magnesium sulfate in the baboon. Magnes 1987;6:314—324.

17. Mroczek W.J., Lee W.R., Davidov M.E. Effect of magnesium sulfate on cardiovascular hemodynamics. Angiology 1977;28:720—724.

18. Men’shikov VV. Laboratory methods of clinic testings. Moscow: Meditsina, 1987. Russian: (Меньшиков В.В. Лабораторные методы исследования в клинике. М: Медицина 1987).

19. Spasov A.A., Iezhitsa I.N., Tiurenkov I.N. et al. Comparative evaluation of the effects of carnitine stereoisomers and racemate on the cardio- and hemodynamics of rats on a carnitine-deficient diet. Vestn Ros Akad Med Nauk 2006;7:20—27. Russian: (СпасовА.А., ИежицаИ.Н., ТюренковИ.Н. и др. Сравнительная оценка влияния стереоизомеров и рацемата карнитина на показатели кардио- и гемодинамики у крыс в условиях карнитиндефицитной диеты. Вестн РАМН 2006;7:20—27).

20. Meerson F.Z. Adaptation, stress and prophylaxis. Berlin: Springer Verlag, 1984; [English Edition]. (Меерсон Ф.З. Адаптация, стресс и профилактика. М: Наука 1981;151).

21. Tiurenkov I.N., Perfilova V.N. Volume loading as a means of evaluating the functional potential of the heart. Eksp Klin. Farmakol 2005;4:60—62. Russian: (Тюренков И.Н., Перфилова В.Н. Применение нагрузки объемом для оценки функциональных резервов сердца. Экспери и клин фармакол 2005;4:60—62.).

22. Paravicini T.M., Yogi A., Mazur A., Touyz R.M. Dysregulation of vascular TRPM7 and annexin-1 is associated with endothelial dysfunction in inherited hypomagnesemia. Hypertension 2009;53:423—429.

23. Resnick L.M., Bardicef O., Altura B.T. et al. Serum ionized magnesium: relation to blood pressure and racial factors. Am J Hypertens 1997;10:1420—1424.

24. Maier J.A. Low magnesium and atherosclerosis: an evidence-based link. Mol Aspects Med 2003;1—3:137—146.

25. Bernardini D., Nasulewicz A., Mazur A., Maier J.A. Mgnesium and microvascular endothelial cells: a role in inflammation and angiogenesis. Front Biosci 2005;10:1177—1182.

26. Spasov A.A., Iezhitsa I.N., Kravchenko M.S., Kharitonova M.V. Study of anti-inflammatory activity of some organic and inorganic magnesium salts in rats fed with magnesium-deficient diet. Vopr Pitan 2007;5:68—73. Russian: (Спасов А.А., Иежица И.Н., Кравченко М.С., Харитонова М.В.Изучение противовоспалительной активности некоторых органических и неорганических солей магния в условиях дефицита магния в диете. Вопр питан 2007;5:68—73.).

27. Malpuech-BrugereC., NorwackiW., Daveau M. et al. Inflammatory response following acute magnesium deficiency in the rat. Biochim Biophis Acta 2000;1501:91—98.

28. Mazur A., Maier J., Rock E. et al. Magnesium and the infammatory response: Potential physiopathological implications. Arch Biochem Biophys 2007;458:48—56.

29. Burton R.F. Adenine triphosphate as a determinant of magnesium levels in cytoplasm. Comp Biochem Physiol 1980;65A:1—4.

30. Wolf F.I., Cittadini A. Chemistry and biochemistry of magnesium. Mol Aspects Med 2003;24:3—9.

31. Yang W., Lee J.Y., Nowotny M. Making and breaking nucleic acids: two-Mg2+-ion catalysis and substrate specificity. Mol Cell 2006;22:5—13.

32 Swaminathan R. Magnesium metabolism and its disorders. Clin Biochеm Rev 2003;24:47—66.

33. Goldsmith W.K., Auden J., Chernow B. In: Prough DS, Traystman RJ, eds. Critical care state of the art. Vol. 14. Anaheim, CA: Society of Critical Care Medicine 1993;169—206.

34. Ueshima K. Magnesium and ischemic heart disease: a review of epidemiological, experimental, and clinical evidences. Magnes Res 2005;18:4:275—284.

35. Skorodin M.S., Freebeck P.C., Yetter B. Magnesium sulfate potentiates several cardiovascular and metabolic actions of terbutaline. Chest 1994;105:701—705.

36. Williams L.T., Mulliken D., Lefkowitz R.J. Magnesium dependence of agonist binding to adenylate cyclase-coupled hormone receptors. J Biol Chem 1978;253:2984—2989.

Об авторах / Для корреспонденции

ГБОУ ВПО Волгоградский государственный университет Минздравсоцразвития РФ
Кафедра фармакологии
Спасов А.А. - д.м.н., проф., акад. РАМН, зав. кафедрой.
Харитонова М.В. - к.м.н., ассистент.
Гурова Н.А. - к.м.н., докторант.
Желтова А.А. - аспирант.
Кафедра фармакологии и биофармации факультета усовершенствования врачей
Тюренков И.Н. - д.м.н., проф., член-корр. РАМН, зав. кафедрой.
University Teknologi MARA, Faculty of Medicine, Malaysia, Selangor, Shah Alam
Иежица И.Н. - д.биол.н., доцент (Dr. Sci. Biol., Ph.D., Ass. Prof.).
E-mail: aspasov@mail.ru

Также по теме