ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Изменение реполяризационных свойств правого желудочка при гипертензивной гипертрофии левого желудочка

Крандычева В.В., Харин С.Н., Азаров Я.Э., Шмаков Д.Н.

Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения РАН, Сыктывкар, Россия
Реполяризационные свойства миокарда левого желудочка (ЛЖ) изменяются при его гипертрофии различного генеза. Цель данной работы состояла в изучении реполяризации эпикардиальной поверхности правого желудочка (ПЖ) при экспериментальном моделировании гипертрофии ЛЖ, вызванной реноваскулярной гипертензией у крыс. На поверхности желудочков сердца регистрировали 32 униполярные электрограммы; для оценки реполяризации вычисляли длительность интервалов активация—восстановление. У гипертензивных крыс относительная масса ЛЖ была на 26% больше, чем у контрольных крыс, тогда как относительная масса правого желудочка была одинаковой у животных обеих групп. Длительность интервалов активация—восстановление при гипертензии была в 1,7 раза больше, чем в контрольной группе, на поверхности как ЛЖ, так и ПЖ сердца. Дисперсия интервалов активация—восстановление значимо не различалась между группами. Таким образом, при гипертрофии ЛЖ у крыс, вызванной реноваскулярной гипертензией, происходит электрическое ремоделирование миокарда не только ЛЖ, но и ПЖ.

Ключевые слова

реполяризация
левый и правый желудочки
гипертрофия
гипертензия
экспериментальная модель

Гипертрофия левого желудочка (ГЛЖ), развивающаяся в ответ на артериальную гипертензию, предрасполагает к развитию аритмий и внезапной сердечной смерти, обусловленных изменениями реполяризации миокарда. Известно, что длительность потенциалов действия желудочковых кардиомиоцитов увеличивается при ГЛЖ различного генеза [1—7]. Однако эти сведения получены только для левожелудочковых кардиомиоцитов. Вместе с тем необходимо учитывать изменения реполяризационных свойств миокарда правого желудочка (ПЖ) при ГЛЖ, если таковые имеются, поскольку они вносят вклад в общую дисперсию реполяризации.

Цель данной работы состояла в изучении реполяризации эпикардиальной поверхности ПЖ при экспериментальном моделировании ГЛЖ, вызванной реноваскулярной гипертензией у крыс.

Материал и методы

Эксперименты проведены на 12 самках крыс Вистар в возрасте 6—8 мес и с массой тела 170—230 г, которая в ходе эксперимента не изменялась. Реноваскулярная гипертензия была вызвана сужением левой почечной артерии с помощью модифицированного нами способа [8] у 6 крыс, анестезированных эфиром; 6 других животных служили нормотензивным контролем. Способ сужения почечной артерии заключается во втягивании петли препарированного сосуда с помощью тонкой шелковой нити в цельную пластиковую трубочку с заданным внутренним диаметром.

Через месяц после операции животных, под эфирным наркозом и измеряли давление в брюшной аорте. Введенный в аорту катетер (внешний диаметр 0,5 мм; внутренний диаметр 0,3 мм) присоединяли к датчику давления SensoNor 840 (50 μV/V/cmHg). Давление регистрировали на мониторе EAGLE 1000 (Marquette Hellige GmbH, Германия). После измерения давления животных наркотизировали тиопенталом натрия (100 мг/кг внутрибрюшинно), переводили на искусственную вентиляцию легких, вскрывали грудную клетку по среднегрудинной линии и разрезали перикард. В дальнейшем температуру тела поддерживали на уровне 38—38,5 °C, сердце орошали теплым (38—39 °C) изотоническим раствором натрия хлорида. Картографирование эпикардиальной поверхности желудочков сердца проводили при синусно-предсердном ритме. Униполярные электрограммы (n=32; рис. 1) и ЭКГ в биполярных отведениях от конечностей регистрировали синхронно на 128-канальной компьютеризированной системе с полосой пропускания 0,05—1000 Гц и частотой дискретизации 4000 Гц.

В конце эксперимента вырезали сердце и взвешивали желудочки. Для оценки гипертрофии миокарда определяли относительную массу ЛЖ и ПЖ. Для оценки реполяризационных свойств миокарда вычисляли длительность интервалов активация—восстановление, определяемых как разность между временем локальной активации и реполяризации [9]. Время локальной активации определяли как минимум первой производной униполярной электрограммы в период комплекса QRS, время локальной реполяризации — как максимум первой производной униполярной электрограммы в период комплекса ST—T (см. рис. 1). Дисперсию интервалов активация—восстановление вычисляли как разность между максимальным и минимальным значениями интервалов активация—восстановление. Данные представлены в виде среднего ± стандартного отклонения. Статистический анализ полученных данных проводили с помощью критерия Манна—Уитни и критерия Вилкоксона.

Рис. 1. Распределение электродов по эпикардиальной поверхности желудочков у крысы.

Распределение электродов по эпикардиальной поверхности желудочков у крысы

Пунктирной линией обозначена межжелудочковая борозда. ЛЖ — левый желудочек; ПЖ — правый желудочек.

Результаты

У крыс с суженной левой почечной артерией систолическое и среднее артериальное давление составило 155—186 (160±11) и 108—150 (117±12) мм рт.ст. соответственно, что значимо больше (p<0,001), чем у контрольных крыс (113±5 и 84±4 мм рт.ст. соответственно). Стеноз почечной артерии у крыс вызывал умеренную ГЛЖ. Относительная масса ЛЖ у гипертензивных крыс составила 0,34±0,02, что на 26% больше (p<0,001), чем у контрольных животных (0,27±0,03). Относительная масса ПЖ у гипертензивных (0,067±0,015) и контрольных (0,071±0,012) крыс не различалась. Различий по частоте сердечных сокращений между гипертензивной (290±45 уд/мин) и контрольной (269±64 уд/мин) группами животных не было выявлено (частота сердечных сокращений указана у животных со вскрытой грудной клеткой).

Длительность среднего интервала активация—восстановление на поверхности ЛЖ у крыс с ГЛЖ составила 24,1±0,7 мс, что значимо больше (p<0,001), чем у контрольных животных (14,0±5,0 мс). На поверхности ПЖ у крыс с ГЛЖ длительность среднего интервала активация—восстановление также была больше, чем у контрольных крыс (21,0±4,3 и 13,1±3,6 мс соответственно, p<0,001). Длительность интервалов активация—восстановление была увеличена как в основании, так и на верхушке обоих желудочков (рис. 2).

Рис. 2. Определение длительности интервала активация—восстановление.

Определение длительности интервала активация—восстановление

Толстая сплошная линия — униполярная электрограмма; пунктирная линия — график первой производной электрограммы; вертикальные линии 1 и 2 — момент активации и реполяризации, соответственно, в зоне регистрации электрограммы; 3 — интервал активация—восстановление.

У крыс с ГЛЖ и контрольных животных дисперсии интервалов активация—восстановление не различались на эпикардиальной поверхности как ЛЖ (14,3±6,6 и 14,4±6,7 мс), так и ПЖ (13,3±1,8 и 11,6±3,2 мс). Общая дисперсия интервалов активация—восстановление на обоих желудочках также не различалась: 18,0±5,5 мс у крыс с ГЛЖ и 15,4±5,6 мс у контрольных животных.

Обсуждение

Развитие гипертензивной ГЛЖ приводило к удлинению интервалов активация—восстановление в 1,7 раза на поверхности ЛЖ. Это согласуется с удлинением потенциалов действия субэпикардиальных кардиомиоцитов при ГЛЖ различного генеза [1—3, 5—7, 10]. Однако в данной работе нами впервые показано, что при ГЛЖ, вызванной реноваскулярной гипертензией, изменяется длительность реполяризации миокарда не только ЛЖ, но и ПЖ, причем интервалы активация—восстановление на поверхности ПЖ удлинялись также в 1,7 раза. Ранее было показано увеличение длительности потенциалов действия кардиомиоцитов обоих желудочков при экспериментальной констрикции аорты [11]. Однако эти изменения в длительности потенциалов действия кардиомиоцитов ПЖ происходили при наличии гипертрофии ПЖ. В нашем исследовании удлинение интервалов активация—восстановление выявлено без гипертрофии ПЖ. Это свидетельствует о том, что электрофизиологические эффекты реноваскулярной гипертензии связаны не только с развитием ГЛЖ.

Механизм изменения реполяризационных свойств миокарда ПЖ обусловлен, вероятно, действием на трансмембранные ионные токи в кардиомиоцитах ПЖ ангиотензина II и альдостерона, концентрация которых увеличивается при реноваскулярной гипертензии. Длительность реполяризации желудочковых кардиомиоцитов и, следовательно, длительность реполяризации миокарда желудочков у крысы обусловлена несколькими калиевыми реполяризующими токами — прежде всего, транзиторным выходящим током Ito, а также токами входящего (IK1) и задержанного (IKr, Isus) выпрямления [12], и деполяризующими токами — кальциевым током L-типа (ICa,L), натриевым током (INa) и током Na+/Ca2+-обмена (INaCa) [12, 13]. Кроме того, длительность потенциала действия в кардиомиоцитах модулируется хлорными токами [14]. Все эти токи подвержены влиянию ангиотензина II и/или альдостерона.

Ранее было показано, что хроническое повышение уровня ангиотензина II приводит к увеличению длительности потенциалов действия кардиомиоцитов через воздействие на реполяризующие калиевые токи IK1 [15], Ito [16] и Isus [17]. Вместе с тем блокада АТ1-рецепторов ангиотензина II лозартаном способствовала нормализации реполяризации миокарда ЛЖ, изменившейся в связи с развитием обусловленной реноваскулярной гипертензией ГЛЖ [18], и предотвращению развития ГЛЖ, и связанными с ней удлинением потенциалов действия и других электрофизиологических изменений [19]. Альдостерон также способствует удлинению потенциалов действия кардиомиоцитов [20, 21], в том числе за счет подавления тока Ito [22].

Другие возможные механизмы удлинения реполяризации при ГЛЖ могут быть связаны с ингибированием хлорных каналов [23, 24], усилением кальциевого тока ICa,L [22—26] и тока Na+/Ca2+-обмена INaCa [27, 28], а также с нарушением инактивации натриевого тока INa [29, 30]. Данные электрофизиологические эффекты обусловлены в основном действием ангиотензина II и альдостерона.

На основании изложенного можно предположить, что в наших экспериментах хроническое увеличение уровня ангиотензина II при реноваскулярной гипертензии вследствие сужения почечной артерии ингибирует большинство калиевых токов и активирует входящий кальциевый ток, увеличивая длительность потенциалов действия кардиомиоцитов обоих желудочков напрямую или/и через продукцию альдостерона параллельно или опережая развитие ГЛЖ. Однако эти предположения нуждаются в непосредственном экспериментальном подтверждении. Кроме того, необходимы дополнительные исследования для выяснения, какой из калиевых токов в кардиомиоцитах вносит больший вклад в пролонгирование реполяризации ПЖ при реноваскулярной гипертензии у крыс как широко распространенных животных для моделирования артериальной гипертензии и ГЛЖ. По-видимому, им является транзиторный выходящий калиевый ток Ito, поскольку его подавление в кардиомиоцитах ЛЖ при развитии ГЛЖ вследствие перегрузки давлением вносит больший вклад в удлинение потенциалов действия по сравнению с токами IK1 и IK [5]. Это согласуется с данными, полученными при сравнении трансмембранных калиевых токов у спонтанно гипертензивных и нормотензивных крыс [31]. Ввиду видоспецифичности электрофизиологии миокарда желудочков у позвоночных животных [12] полученные данные необходимо обобщать с осторожностью.

Дисперсия реполяризации эпикардиальной поверхности желудочков не отличалась у крыс с гипертензивной ГЛЖ и контрольных крыс. Возможны несколько объяснений этого. Во-первых, известно о модулирующем влиянии ангиотензина II на хлорный ток в желудочковых кардиомиоцитах кролика [32] и хлорном токе в клетках гипертрофированного миокарда у крысы [33], а появление и/или активация хлорных токов вносит вклад в укорочение потенциалов действия кардиомиоцитов [14]. Во-вторых, вследствие изменения баланса между калиевым Ito и кальциевым ICa,L токами при развитии ГЛЖ у крысы уменьшается межрегиональная гетерогенность реполяризации [34]. В-третьих, высокая частота сердечных сокращений ослабляет пролонгацию потенциалов действия кардиомиоцитов, возникающую при развитии ГЛЖ и сердечной недостаточности [35]. В связи с последним фактом изменение дисперсии реполяризации миокарда желудочков при реноваскулярной гипертензии у человека будет, вероятно, более выражено, чем обнаруженное нами у крысы.

О структурном и электрическом ремоделировании в гипертрофированном миокарде хорошо известно [13, 31, 36, 37]. Результаты представленной работы свидетельствуют о том, что при реноваскулярной гипертензии, приводящей к развитию ГЛЖ, происходит электрическое ремоделирование миокарда ПЖ без увеличения его массы.

Заключение

Таким образом, при экспериментальной гипертрофии левого желудочка у крыс, вызванной реноваскулярной гипертензией, увеличивается длительность реполяризации эпикардиальной поверхности не только левого, но и правого желудочка, что обусловлено, вероятно, системным действием ангиотензина II и/или альдостерона; дисперсия реполяризации эпикардиальной поверхности желудочков не изменяется.

Исследование поддержано Уральским отделениемРАН (Программа поддержки интеграционных проектов,выполняемых в УрО РАН совместно с ДВО РАН), Фондомсодействия отечественной науке.

Список литературы

1. Keung E.C., Aronson R.S. Transmembrane action potentials and the electrocardiogram in rats with renal hypertension. Cardiovasc Res 1981;15:611—614.

2. Bryant S.M., Shipsey S.J., Hart G. Normal regional distribution of membrane current density in rat left ventricle is altered in catecholamine-induced hypertrophy. Cardiovasc Res 1999;42:391—401.

3. Shipsey S.J., Bryant S.M., Hart G. Effects of hypertrophy on regional action potential characteristics in the rat left ventricle. A cellular basis for T-wave inversion? Circulation 1997;96:2061—2068.

4. Swynghedauw B. Molecular mechanisms of myocardial remodeling. Physiol Rev 1999;791:215—262.

5. Volk T., Nguyen T.H., Schultz J.H. et al. Regional alterations of repolarizing K+ currents among the left ventricular free wall of rats with ascending aortic stenosis. J Physiol 2001; 530:443—455.

6. McCrossan Z.A., Billeter R., White E. Transmural changes in size, contractile and electrical properties of SHR left ventricular myocytes during compensated hypertrophy. Cardiovasc Res 2004;63:283—292.

7. Volk T., Noble P.J., Wagner M. et al. Ascending aortic stenosis selectively increases action potential-induced Ca2+ influx in epicardial myocytes of the rat left ventricle. Exp Physiol 2005;90:111—121.

8. Харин С.Н., Крандычева В.В. Методика сужения почечной артерии для моделирования реноваскулярной гипертензии у крыс. Бюлл экспер биол мед 2004;138:118—120.

9. Millar C.K., Kralios F.A., Lux R.L. Correlation between refractory periods and activation-recovery intervals from electrograms: effects of rate and adrenergic interventions. Circulation 1985;72:1372—1379.

10. Rithalia A., Hopkins P.M., Harrison S.M. Effects of halothane on action potential configuration in sub-endocardial and sub-epicardial myocytes from normotensive and hypertensive rat left ventricle. Br J Anaesth 2003;90:501—503.

11. Lessard Y., Vernhet L., Mainguy A. Relationships between transmembrane action potential changes and simultaneous changes in electrocardiograms of rats after a one-month aortic pressure overload. Physiol Res 1997;46:257—269.

12. Nerbonne J.M., Kass R.S. Molecular physiology of cardiac repolarization. Physiol Rev 2005;85:1205—1253.

13. Tomaselli G.F., Marban E. Electrophysiological remodeling in hypertrophy and heart failure. Cardiovasc Res 1999;42:270—283.

14. Hiraoka M., Kawano S., Hirano Y., Furukawa T. Role of cardiac chloride currents in changes in action potential characteristics and arrhythmias. Cardiovasc Res 1998;40:23—33.

15. Domenighetti A.A., Boixel C., Cefai D. et al. Chronic angiotensin II stimulation in the heart produces an acquired long QT syndrome associated with IK1 potassium current downregulation. J Mol Cell Cardiol 2007;42:63—70.

16. Fischer R., Dechend R., Gapelyuk A. et al. Angiotensin II-induced sudden arrhythmic death and electrical remodeling. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2007;293:H1242—H1253.

17. Matsuda H., Kurata Y., Imanishi S. et al. Effects of angiotensin II on sustained outward currents in rat ventricular myocytes. Pflugers Arch 2004;448:54—62.

18. Rials S.J., Xu X., Wu Y. et al. Restoration of normal ventricular electrophysiology in renovascular hypertensive rabbits after treatment with losartan. J Cardiovasc Pharmacol 2001;37:317—323.

19. Cerbai E., Crucitti A., Sartiani L. et al. Long-term treatment of spontaneously hypertensive rats with losartan and electrophysiological remodeling of cardiac myocytes Cardiovasc Res 2000;45:388—396.

20. De Mello W.C. Aldosterone modulates the effect of angiotensin II on the electrical properties of rat heart. J Cardiovasc Pharmacol 2002;40:90—95.

21. Tillmann H.C., Schumacher B., Yasenyev O. et al. Acute effects of aldosterone on intracardiac monophasic action potentials. Int J Cardiol 2002;84:33—39.

22. Benitah J.P., Perrier E., Gomez A.M., Vassort G. Effects of aldosterone on transient outward K+ current density in rat ventricular myocytes. J Physiol 2001;537:151—160.

23. Obayashi K., Horie M., Xie L.H. et al. Angiotensin II inhibits protein kinase A-dependent chloride conductance in heart via pertussis toxin-sensitive G proteins. Circulation 1997;95:197—204.

24. Wallis W., Cooklin M., Sheridan D.J., Fry C.H. The action of isoprenaline on the electrophysiological properties of hypertrophied left ventricular myocytes. Arch Physiol Biochem 2001;109:117—126.

25. Benitah J.P., Vassort G. Aldosterone upregulates Ca(2+) current in adult rat cardiomyocytes. Circ Res 1999;85:1139—1145.

26. De Mello W.C., Gerena Y. Eplerenone inhibits the intracrine and extracellular actions of angiotensin II on the inward calcium current in the failing heart. On the presence of an intracrine renin angiotensin aldosterone system. Regul Pept 2008;151:54—60.

27. Krizanova O., Orlicky J., Masanova C. et al. Angiotensin I modulates Ca-transport systems in the rat heart through angiotensin II. J Mol Cell Cardiol 1997;29:1739—1746.

28. Yamamoto T., Shirayama T., Takahashi T., Matsubara H. Altered expression of Na+ transporters at the mRNA level in rat normal and hypertrophic myocardium. Heart Vessels 2009;24:54—62.

29. Boixel C., Gavillet B., Rougier J.S., Abriel H. Aldosterone increases voltagegated sodium current in ventricular myocytes. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2006;290:H2257—H2266.

30. Baartscheer A., van Borren M.M. Sodium ion transporters as new therapeutic targets in heart failure. Cardiovasc Hematol Agents Med Chem 2008;6:229—236.

31. Li X., Jiang W. Electrical remodeling of membrane ionic channels of hypertrophied ventricular myocytes from spontaneously hypertensive rats. Chin Med J (Engl) 2000;113:584—587.

32. Morita H., Kimura J., Endoh M. Angiotensin II activation of a chloride current in rabbit cardiac myocytes. J Physiol 1995;483:119—130.

33. Benitah J.P., Gomez A.M., Delgado C. et al. A chloride current component induced by hypertrophy in rat ventricular myocytes. Am J Physiol 1997;272:H2500—H2506.

34. Gomez A.M., Benitah J.P., Henzel D. et al. Modulation of electrical heterogeneity by compensated hypertrophy in rat left ventricle. Am J Physiol 1997;272:H1078—H1086.

35. Vermeulen J.T., McGuire M.A., Opthof T. et al. Triggered activity and automaticity in ventricular trabeculae of failing human and rabbit hearts. Cardiovasc Res 1994;28:1547—1554.

36. Swynghedauw B. Molecular mechanisms of myocardial remodeling. Physiol Rev 1999;79:215—262.

37. Stilli D., Sgoifo A., Macchi E. et al. Myocardial remodeling and arrhythmogenesis in moderate cardiac hypertrophy in rats. Am J Physiol Heart Circ Physiol 2001;280:H142—H150.

Об авторах / Для корреспонденции

Учреждение РАН Институт физиологии Коми научного центра Уральского отделения РАН, Сыктывкар
Крандычева В.В. - к.биол.н., ст.н.с.
Харин С.Н. - к.биол.н., доц., вед.н.с.
Азаров Я.Э. - к.биол.н., доц., зав. лабораторией.
Шмаков Д.Н. - д.биол.н., проф., зам. директора.
E-mail: s.kharin@physiol.komisc.ru

Также по теме