ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Влияние экзогенного пептида апелина-12 на восстановление функции и метаболизма изолированного сердца крысы после ишемии

Писаренко О.И., Шульженко В.С., Пелогейкина Ю.А., Студнева И.М., Кхатри Д.Н., Беспалова Ж.Д., Азьмуко А.А., Сидорова М.В., Палькеева М.Е.

ФГУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации, 121552 Москва, 3-я Черепковская ул., 15а
Апелин 12 (А 12) получен методом автоматического твердофазного синтеза пептидов, очищен с применением высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) на обращенной фазе; его гомогенность и структура подтверждены с помощью ВЭЖХ, 1Н ЯМР спектроскопии и масс спектроскопии. Действие А 12 изучено на изолированном работающем сердце крысы, перфузируемом раствором Кребса (РК) с 11 мМ глюкозой, которое подвергали 35 минутной глобальной ишемии и 30 минутной реперфузии. Инфузию РК, содержащего А 12 (35, 70, 140, 280 или 560 мкМ), проводили перед ишемией (А 12 И) или в начале реперфузии (А 12 Р); в контроле вводили РК. Введение А 12 улучшало восстановление коронарного потока, сократительной и насосной функции сердца при реперфузии, причем в наибольшей степени в группе А 12 И. Так, после инфузии 140 мкМ А 12 коронарный поток, показатель интенсивности сократительной функции (Рразв. ? ЧСС) и минутный объем в конце реперфузии в группе А 12 И составляли 92±5, 81±5 и 77±5% от исходных значений, соответственно в группе А 12 Р — 83±6, 61±5 и 52±5% по сравнению с 76±2, 42±2 и 32±2% в контроле. В обеих группах А 12 уменьшалась ишемическая и реперфузионная контрактура. Лучшее функциональное восстановление сердец в группе А 12 И сопровождалось снижением выведения в перфузат активности лактатдегидрогеназы на стадии ранней реперфузии (на 36±5% по сравнению с контролем; р<0,05). Введение 140 мкМ А 12 перед ишемией достоверно увеличивало содержание АТФ и снижало накопление АМФ в миокарде к окончанию реперфузии. В результате общий фонд адениннуклеотидов и энергетический потенциал в постишемических кардиомиоцитах были восстановлены до 81±5 и 86±3% от исходных, соответственно, по сравнению с 66±3% в контроле (р<0,05). В конце реперфузии cодержание лактата и отношение лактат/пируват в ткани сердца достоверно не отличались от таковых до ишемии и были в 5 раз ниже, чем в контроле, что указывало на восстановление аэробной утилизации глюкозы. Таким образом, меньшие повреждения функции сердца и клеточных мембран под влиянием A 12 могли быть обусловлены лучшим сохранением энергетического обмена в ишемизированном сердце. Обсуждены кардиопротекторные механизмы действия апелина.

Ключевые слова

апелин-12
ишемия и реперфузия сердца
энергетический обмен
повреждения клеточных мембран

В условиях ишемии и последующей реперфузии в миокарде усиливается образование ряда присущих организму факторов — адипокинов, цитокинов и вазоактивных пептидов, опосредующих механизмы адаптации клеток к такому повреждению [1—3]. К их числу относится адипокин апелин — пептид, состоящий из 77 аминокислот и являющийся лигандом, сопряженного с Gi-белком APJ-рецептора [4, 5]. Апелин активно экспрессируется различными тканями, включая эндотелиальные и гладкие
мышечные клетки коронарных сосудов и кардиомиоциты [4]. Активация системы апелин—APJ-рецептор вызывает гипотензивный и положительный инотропный эффект [4, 6, 7], что указывает на ее важную роль в регуляции сердечно-сосудистого гомеостаза. В последние годы обнаружено, что 2 более коротких фрагмента пептида — апелин-36 и апелин-13 — обладают кардиопротекторной активностью и способны защищать сердце от ишемического и реперфузионного стресса. Под действием этих пептидов уменьшались размеры инфаркта и улучшалось восстановление сократительной функции изолированного перфузируемого сердца мышей и крыс после тотальной или регионарной ишемии [8—10]. Это сочеталось с увеличением активности в миокарде супероксид-дисмутазы, уменьшением образования продукта перекисного окисления липидов — малонового диальдегида — и меньшими повреждениями сарколеммы ишемизированных кардиомиоцитов [10]. В культуре неонатальных и зрелых кардиомиоцитов, подвергнутых ишемии и реоксигенации, апелин-13 усиливал экспрессию NO-cинтазы, образование NO и одновременно подавлял продукцию суперокид-аниона [10]. Получены экспериментальные подтверждения ингибирования апелином-13, и в меньшей степени апелином-36, открытия митохондриальной поры и апоптоза в кардиомиоцитах крыс при моделировании окигенационного стресса [8, 10]. Ряд авторов высказали гипотезу о том, что более физиологически активный апелин-13 инициирует механизмы запрограммированного клеточного выживания, которые запускаются каскадами реперфузионных киназ [11, 12]. Гипотеза была подтверждена отменой влияния апелина-13 на открытие митохондриальной поры и гибель кардиомиоцитов в присутствии ингибиторов фосфатидилинозитол-3-киназы, Akt-киназы (PI3K-Akt) и митоген-акивируемой p44/42 киназы [8, 10, 11].
Эти данные свидетельствуют о возможности существенного улучшения метаболического состояния постишемического сердца под влиянием экзогенного апелина.

Целью настоящей работы было изучение кардиозащитных свойств апелина-12 — фрагмента пептида, полностью идентичного таковому у человека, — на модели изолированного работающего сердца крысы, подвергнутого тотальной ишемии. Предполагалось сопоставить влияние апелина-12 при его
введении до периода ишемии и в начале реперфузии на восстановление функции сердца, а также оценить его действие на метаболизм миокарда и повреждения клеточных мембран.

Материал и методы

Получение апелина-12 H-Arg-Pro-Arg-Leu-Ser-His-Lys-Gly-Pro-Met-Pro-Phe-OH. А-12 был получен путем автоматического твердофазного синтеза на пептидном синтезаторе фирмы Applied Biosystems 431A (Германия) с использованием Fmoc-методологии на полимере Ванга по стандартным программам. Твердофазный синтез проводили исходя из 0,25 ммоль коммерческого Fmoc-Phe-полимера (Bachem, Швейцария), путем последовательного удлинения пептидной цепи с С-конца. На первой стадии синтеза с целью предотвращения побочной реакции образования дикетопиперозина из пролинсодержащего дипептидилполимера присоединяли дипептидный блок Fmoc-Met-Pro-OH. После
этого цепь наращивали по одной аминокислоте. Для создания амидной связи применяли карбодиимидный метод. Конечный продукт отщепляли от полимерного носителя одновременно
с удалением защитных групп боковых функций аминокислот действием трифторуксусной кислоты со скавенджерами. Пептид был очищен с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ) до 98% чистоты и охарактеризован с помощью 1Н-ЯМР-спектроскопии и MALDI-масс-спектрометрии (m/z 1423,5; расчетная молекулярная масса 1422,7). В работе использованы производные аминокислот, реагенты и растворители фирм Bachem и Fluka (Швейцария).

Перфузия изолированного сердца крысы. Опыты выполнены на сердце крыс-самцов линии Wistar (290—340 г). У наркотизированных уретаном (внутрибрюшинно 1,25 мг на г массы тела) животных извлекали сердце и перфузировали ретроградно в течение 15—20 мин раствором Кребса (РК)
с 11 мМ глюкозой, насыщенным карбогеном (95% О2±5% СО2) рН 7,4±0,1 при температуре 37 °С, при постоянном перфузионном давлении 60 мм рт.ст. После этого сердца перфузировали антеградно по Нийли при постоянном давлении наполнения левого предсердия 15 мм рт.ст. и среднем перфузионном давлении в аорте 60 мм рт.ст. [13].

Давление в аорте и левом желудочке регистрировали при помощи тензометрических датчиков Р50, монитора SP1405 и регистратора SP2010 (Gould Statham, США). Показателем интенсивности сократительной функции (ИСФ) левого желудочка служило произведение частоты сокращений сердца на развиваемое давление (разность между систолическим и минимальным диастолическим давлением).
Насосную функцию левого желудочка оценивали по величине минутного (сумма коронарного потока и аортального объема) и ударного (отношение минутного объема к частоте сокращений сердца) объемов. Коронарное сопротивление рассчитывали из отношения аортального давления к коронарному потоку.

После перфузии сердца по Нийли в течение 15—20 мин регистрировали показатели функции сердца и коронарных сосудов (исходное состояние). Затем осуществляли 5-минутную инфузию РК с постоянной скоростью 4 мл/мин и подвергали сердца глобальной нормотермической (37 °С) ишемии в течение 35 мин. За ишемией следовала 5-минутная ретроградная инфузия РК со скоростью 4 мл/мин и реперфузия
по Нийли в течение 25 мин.

Влияние A-12 на восстановление показателей функции сердца было изучено при его введении до ишемии или во время ранней реперфузии после периода глобальной ишемии. Растворенный в РК A-12 до концентрации 35, 70, 140, 280 или 560 мкМ вводили со скоростью 4 мл/мин в течение 5 мин
до ишемии (А-12-И) или в течение 5 мин перед реперфузией (А-12-Р). При выборе концентраций А-12 нами были приняты во внимание данные работы [14] о содержании эндогенного апелина в плазме крови крысы, а также собственные предварительные результаты, в которых положительное
инотропное действие А-12 на интактное перфузируемое сердце крысы было обнаружено в диапазоне концентраций 0,5— 20 мкМ. В отдельных сериях было изучено влияние инфузии 140 мкМ A-12 перед ишемией на выход в перфузат лактатдегидрогеназы (ЛДГ) и энергетическое состояние сердца. В контроле инфузию РК проводили без А-12.

Повреждение мембран кардиомиоцитов оценивали по увеличению активности ЛДГ в оттекающем от сердца перфузате, который собирали в охлажденные льдом пробирки в течение 5 мин перед ишемией (исходное состояние) и в течение первых 5 мин реперфузии. Активность ЛДГ определяли, используя в качестве субстрата пируват, на спектрофотометре Yanako UO-2000 (Япония) при λ=340 нм.

Метаболическое состояние сердца. Сердца замораживали охлажденными в жидком азоте щипцами Волленбергера в исходном состоянии или в конце реперфузии. Ткань гомогенизировали в холодной 6% HClO4 (10 мл на 1 г ткани) в гомогенизаторе Ultra-Turrax T-25 (IKA-Labortechnik, Германия). Белки осаждали центрифугированием при 3000 g и 4 °С в течение 10 мин. Супернатанты нейтрализовали 5 М К2СО3 до рН 7,4. Осадок KСlO4 отделяли центрифугированием в тех же условиях. Безбелковые экстракты хранили при температуре –20 °С до определения метаболитов. Сухой вес гомогенизированной ткани определяли после высушивания образцов в течение суток при температуре 110 °С. АТФ и фосфокреатин (ФКр) в тканевых экстрактах определяли спектрофотометрически, используя глюкозо-6-фосфатдегидрогеназу, гексокиназу и креатинкиназу [15]. Содержание АДФ и АМФ в тканевых экстрактах определяли с помощью миокиназы, пируваткиназы и лактатдегидрогеназы [16]. Для определения креатина (Кр) использовали сопряженные реакции с креатинкиназой, пируваткиназой и лактатдегидрогеназой [17]. Лактат и пируват определяли с помощью ЛДГ [18, 19]. Содержание метаболитов выражали в мкмоль/г сухого веса.

Приведенные показатели выражены как средняя ± ошибка средней. Различия между группами оценивали с помощью t-критерия Стьюдента и считали статистически значимыми при р<0,05.

Результаты

Восстановление функции сердца и коронарных сосудов при реперфузии. Инфузия А-12 до или после ишемии улучшала восстановление насосной функции сердца при реперфузии. На рис. 1 показано восстановление минутного объема (МО) в конце реперфузии в опытах с введением А-12 до и после ишемии. Достоверное увеличение его восстановления по сравнению с контролем было
отмечено при инфузии 70 мкМ А-12 в обеих группах. В дальнейшем по мере увеличения концентрации А-12 в РК различия между восстановлением МО в группах А-12 и контролем возрастали. При инфузии 140 мкМ А-12 скорость восстановления МО снижалась, а после введения 280 мкМ А-12 кривая дозозависимости выходила на плато в обеих группах. Во всем диапазоне исследованных концентраций введение пептида до ишемии было более эффективно, чем после ишемии. Так, максимальное восстановление МО после инфузии 560 мкМ в группе А-12-И и А-12-Р составляло 86±9 и 59±6% от исходного значения соответственно по сравнению с 32±2 в контроле (р<0,02—0,01). По существу ана-
логичные дозозависимости были получены для восстановления показателя ИСФ при реперфузии (рис. 2).

Влияние концентрации пептида А 12 в инфузионном растворе на постишемическое восстановление МО изолированного сердца крысы к 30 й минуте реперфузии

Влияние концентрации пептида А 12 в инфузионном растворе на постишемическое восстановление ИСФ изолированного сердца крысы к 30 й минуте реперфузии

В табл. 1 сопоставлено восстановление показателей насосной, сократительной и коронарной функции сердца при введении 140 мкМ А-12 до и после ишемии. Видно, что восстановление аортального объема (АО) и ударного объема также было более высоким в группе А-12-И, чем в группе А-12-Р и в контроле. Особенно существенные различия между группами отмечены для АО, степень восстановления которого в группе А-12-И была в 2 раза больше, чем в А-12-Р, и в 30 раз выше контрольной. Более эффективное улучшение насосной функции под действием А-12 сопровождалось увеличением восстановления показателя ИСФ (см. рис. 2). В обеих А-12 группах это обеспечивалось более высоким развиваемым давлением (в большей степени, чем частота сердечных сокращений), которое в свою очередь было обусловлено устранением ишемической и реперфузионной контрактуры.

Действие А-12 не было прямо связано с его влиянием на коронарную систему. Так, несмотря на явное улучшение восстановления показателей сократительной и насосной функции, в группе А-12-Р была отмечена только тенденция к увеличению коронарного потока и снижению коронарного сопротивления по сравнению с контролем (см. табл. 1). В то же время при введении А-12 до ишемии показатели коронарной функции восстанавливались достоверно лучше контрольных, что позволяет предполагать участие коронарных сосудов в защите ишемизированного сердца А-12.

Энергетическое состояние реперфузированного миокарда. Изменения в содержании адениннуклеотидов и конечных продуктов гликолиза — лактата и пирувата — в конце реперфузии, вызванные предишемической инфузией 140 мкМ А-12, сопоставлены с исходными уровнями этих метаболитов в сердце в табл. 2 и 3. В контроле под действием ишемии и последующей реперфузии происходило снижение содержания АТФ до 37±7% от исходного с одновременным увеличением содержания АДФ и АМФ в среднем в 1,7 и 5,6 раза соответственно. Эти изменения указывали на преимущественный распад адениннуклеотидов, общий фонд которых (ΣАН) был снижен
до 58±3% от предишемического значения. Содержание лактата и пирувата в миокарде было увеличено соответственно в 5 и 1,3 раза по сравнению с нормой, что свидетельствовало
об ингибировании окисления глюкозы при реперфузии.

Таблица 1. Влияние инфузии 140 мкМ А 12 на восстановление показателей сократительной, насосной и коронарной функции изолированного сердца крысы после глобальной ишемии.

Таблица 2. Влияние инфузии 140 мкМ апелина 12 перед ишемией на содержание адениннуклеотидов (в мкмоль/г сухого веса) в сердце крысы в конце реперфузии.

Таблица 3. Влияние инфузии 140 мкМ апелина 12 перед ишемией на содержание конечных продуктов гликолиза (в мкмоль/г сухого веса) в сердце крысы в конце реперфузии.

Таблица 4. Влияние инфузии апелина 12 перед ишемией на выведение ЛДГ из сердца в перфузат до и после ишемии.

Под действием 140 мкМ А-12 содержание АТФ к концу реперфузии достоверно увеличивалось в 1,6 раза при двукратном снижении уровня АМФ. В результате фонд ΣАН в группе А-12-И был сохранен значительно лучше, чем в контроле и составлял 81±6% от предишемического значения.
Перераспределение в содержании адениннуклеотидов достоверно увеличивало энергетический заряд кардиомиоцитов в реперфузированных сердцах группы А-12-И по сравнению с контролем. Обнаруженное улучшение энергетического состояния реперфузированного миокарда сочеталось с уменьшением содержания лактата в ткани сердца до исходного значения (см. табл. 3). Хотя уровень пирувата в группе А-12-И оставался повышенным в конце реперфузии, отношение лактат/пируват в сердце было в 5 раз ниже, чем в контроле, и достоверно не отличалось от этого показателя в исходном состоянии.

Предишемическая инфузия 140 мкМ А-12 не приводила к достоверному увеличению восстановления фосфокреатина: его содержание в реперфузированном сердце составляло 14,77±1,41 мкмоль/г сухого веса по сравнению с 12,14±2,80 мкмоль/г сухого веса в контроле. Содержание общего креатина в группе А-12-И в конце реперфузии достоверно не отличалось от этого показателя в контроле и в исходном состоянии (59,65±1,56; 56,65±3,89 и 59,26±1,87 мкмоль/г сухого веса соответственно).

Влияние А-12 на выведение ЛДГ из сердца. Способность апелина влиять на повреждение клеточных мембран оценивали по изменению активности ЛДГ в перфузате до и после глобальной ишемии
в группе А-12-И (см. табл. 2). В течение 5-минутной инфузии 140 мкМ А-12 до ишемии выход ЛДГ из миокарда в перфузат был таким же, как в контроле при инфузии РК. Таким образом, инфузия А-12 не вызывала повреждения сарколеммы кардиомиоцитов неповрежденного сердца. В течение 5-минутного периода после ишемии выведение ЛДГ в контрольной группе увеличивалось в среднем в 2,6 раза по сравнению с этим показателем до ишемии, указывая на повреждение мембран. Инфузия 140 мкМ А-12
перед ишемией снижала активность ЛДГ в перфузате в 1,4 раза по сравнению с контролем. Это свидетельствовало о меньших дефектах мембран постишемических кардиомиоцитов, определяющих выведение цитоплазматической ЛДГ из миокарда.

Обсуждение

Впервые на модели изолированного работающего сердца крысы, подвергнутого глобальной ишемии, продемонстрированы кардиопротекторные свойства экзогенного А-12. Они проявлялись в значительном улучшении восстановления сократительной и насосной функции, а также коронарного потока при реперфузии, которое было наиболее эффективным при введении пептида перед ишемией, а не в начале реперфузии (см. рис. 1, см. табл. 1). Полученные данные принципиально согласуются
с результатами работы [10], в которой было показано, что введение апелина-13 в изолированное перфузируемое по Лангендорфу сердце увеличивало восстановление после ишемии конечного
систолического давления в левом желудочке (LVESP), максимальную скорость сокращения (±LV/dtmax) и расслабления (–LV/dtmax) при одновременном снижении конечного диастолического давления (LVEDP). Существенно, что более высокому функциональному уровню реперфузированных сердец, защищенных А-12 в наших опытах, соответствовало их лучшее метаболическое состояние. Оно было связано с восстановлением окисления глюкозы — основного энергетического субстрата изолирован-
ного перфузируемого сердца. Прямым следствием этого явилось достоверное увеличение содержания АТФ, ΣАН в миокарде и энергетического потенциала кардиомиоцитов в конце реперфузии по сравнению с этими показателями в контроле (см. табл. 2). Улучшение энергетического обмена миокарда под действием А-12 сопровождалось лучшим сохранением сарколеммы кардиомиоцитов, что было подтверждено меньшим выведением активности ЛДГ из сердца в перфузат на стадии ранней реперфузии (табл. 4). Полученные результаты прямо свидетельствуют о влиянии А-12 на энергетический обмен ишемизированного сердца крысы. Они согласуются с гипотезой об активации апелином-13 PI3K-Akt и митоген-активируемых MEK-Erk1/2 киназ, результатом которой является блокирование открытия митохондиальной поры [8, 10, 11], замедляющее катаболизм адениннуклеотидов в постишемических кардиомиоцитах.

Увеличение экспрессии эндотелиальной NO-синтазы (e-NOS) под действием апелина-13, являющейся одной из мишеней реперфузионных PI3K-Akt и MEK-Erk1/2 киназ [8, 10, 20], приводит к возрастанию образования NO. В наших опытах это косвенно подтверждалось достоверным улучшением коронарного потока в группе А-12-И во время реперфузии (см. табл. 1), а также улучшением коронарной функции постишемического сердца под действием донора NO — динитрозильного комплекса железа — на этой же экспериментальной модели, которое было обнаружено нами ранее [21, 22]. Включение образования NO в физиологические механизмы действия А-12 было отмечено К. Tatemoto и соавт. [6]. Ими было показано, что у наркотизированных крыс гипотензивный эффект А-12 (в большей степени, чем апелина-13 и апелина-36) сопровождается увеличением общего содержания
в плазме нитритов и нитратов и отменяется в присутствии ингибитора NOS метилового эфира Nω-нитро-L-аргинина (L-NAME). Впоследствии дозозависимый характер снижения среднего артериального давления при инфузии А-12 был документирован на бодрствующих крысах [23]. Известно, что NO обладает не только свойствами вазодилататора, но и скавенджера супероксидных радикалов, образование которых инициируется окислительным стрессом [24, 25]. Роль NO, образующегося под действием А-12, в снижении продукции активных форм кислорода (АФК)
до настоящего времени остается невыясненной. В то же время антиоксидантные свойства экзогенного апелина-13 были подтверждены снижением генерации АФК одновременно с уменьшением содержания малонового диальдегида в изолированном сердце крысы и в культуре кардиомиоцитов при моделировании ишемического и реперфузионного стресса [10]. Не исключено, что эти эффекты были обусловлены не только экспрессией e-NOS, но и увеличением активности супероксид-дисмутазы под влиянием апелина-13, которая снижалась в ткани сердца и кардиомиоцитах под влиянием ишемии и реперфузии [10, 26].

Таким образом, лучшее восстановление функции постишемического сердца и сохранение клеточных мембран под действием экзогенного А-12 могло быть вызвано улучшением аэробного обмена и антиоксидантной защиты миокарда. Существенно, что в опытах in vitro и in vivo было обнаружено увеличение экспрессии апелина и APJ-рецептора (на уровне мРНК и продукции белка) на моделях ишемии и гипоксии в периферических тканях и сердце [9, 10, 27—29]. Однако последующая инфузия С-концевых фрагментов пептида значительно повышала восстановление функции сердца и снижала повреждения, вызванные окислительным стрессом. Это указывает на то, что возрастание продукции эндогенного апелина недостаточно для активации APJ-рецептора и служит хорошим обоснованием применения его экзогенных лигандов для защиты сердца при ишемии и реперфузии.

Заключение

Результаты настоящей работы демонстрируют снижение нарушений функции и метаболизма постишемического сердца с помощью экзогенного А-12 на модели in vitro. Хотя короткие С-концевые фрагменты апелина обладают более высокой активностью по сравнению с апелином-36, представляется важным оценить возможность их использования в качестве кардиопротектора в условиях in vivo. Вероятно, что синтез модифицированных аналогов А-12 способен повысить его резистентность к действию аминопептидаз и привести к созданию фармакологических агонистов АPJ-рецептора. Такой подход может оказаться перспективным для регуляции активности системы апелин—АPJ-рецептор у пациентов с острым коронарным синдромом и сердечной недостаточностью.

Список литературы

1. Verma S., Fedak P.W., Weisel R.D. et al. Fundamentals of reperfusion injury for the clinical cardiologist. Circulation 2002;105:2332—2336.
2. Infanger M., Faramarzi S., Grosst J. et al. Expression of vascular endothelial growth factor and receptor tyrosine kinases in cardiac ischemia/reperfusion injury. Cardiovasc Pathol 2007;16:291—299.
3. Smith C.C., Mocanu M.M., Davidson S.M. et al. Leptin, the obesityassociated hormone, exhibits direct cardioprotective effects. Br J Pharmacol 2006;149:5—13.
4. Berry M.F., Pirolli T.J., Jayasankar V. et al. Apelin has in vivo inotropic effects on normal and failing hearts. Circulation 2004;110: II187—II193.
5. Boucher J., Masri B., Daviaud D. et al. Apelin, a newly identified adipokine up-regulated by insulin and obesity. Endocrinology 2005;146:1764—1771.
6. Tatemoto K., Takayama K., Zou M.X. et al. The novel peptide apelin lowers blood pressure via a nitric oxide-dependent mechanism. Regul Pept 2001;99:87—92.
7. Chen M.M., Ashley E.A., Deng D.X. et al. Novel role for the potent endogenous inotrope apelin in human cardiac dysfunction. Circulation 2003; 108:1432—1439.
8. Simpkin J.C., Yellon D.M., Davidson S.M. et al. Apelin-13 and apelin-36 exhibit direct cardioprotective activity against ischemia-reperfusion injury. Basic Res Cardiol 2007;102:518—528.
9. Kleinz M.J., Baxter G.F. Apelin reduces myocardial reperfusion injury independently of PI3K/Akt and P70S6 kinase. Regul Pept 2008;146:271—277.
10. Zeng X.J., Zhang L.K., Wang H.X. et al. Apelin protects heart against ischemia/reperfusion injury in rat. Peptides 2009;30:1144—1152.
11. Smith C.C., Mocanu M.M., Bowen J. et al. Temporal changes in myocardial salvage kinases during reperfusion following ischemia: studies involving the cardioprotective adipocytokine apelin. Cardiovasc Drugs Ther 2007;21:409—414.
12. Masri B., Lahlou H., Mazarguil H. et al. Apelin (65—77) activates extracellular signalregulated kinases via a PTX-sensitive G protein. Biochem Biophys Res Commun 2004;290:539—545.
13. Писаренко О.И., Студнева И.М., Шульженко В.С., Тимошин А.А. Механизмы снижения повреждений ишемизированного cердца с помощью модифицированной реперфузии. Биомед хим 2007;3:313 —321.
14. Kawamata Y., Habata Y., Fukusumi S. et al. Molecular properties of apelin: tissue distribution and receptor binding. Biochim Biophys Acta 2001;1538:162—171.
15. Lamprecht W., Trautschold I. Creatine phosphane. Determination with CK, HK and G6P-DH. In: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H.U. (ed). Academic Press. N.Y. 1974:1777—1781.
16. Jaworek D., Gruber W., Bergmeyer H.U. Adenosine-5’-diphosphate and adenosine-5’-monophosphate. In: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H.U. (ed). Academic Press. N.Y. 1974:2127—2131.
17. Bernt E., Bergmeyer H.U., Mollering H. Creatine. In: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H.U. (ed). Academic Press. N.Y. 1974:1772—1776.
18. Gutman I., Wahlenfeld A.W.L. L-(±)-Lactate. Determination with LDH and NAD. In: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H.U. (ed). Academic Press. N.Y. 1974:1464—1467.
19. Bucher T., Czok R., Lamprecht W., Latzko E. Pyruvate. In: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H.U. (ed). Academic Press. N.Y. 1963:2253—2259.
20. Jia Y.X., Lu Z.F., Zhang J. et al. Apelin activates L-arginine/nitric oxide synthase/nitric oxide pathway in rat aortas. Peptides 2007;28:2023—2029.
21. Писаренко О.И., Шульженко В.С., Студнева И.М. и др. Действие динитрозильного комплекса железа на метаболизм и клеточные мембраны ишемизированного сердца крысы. Кардиология 2009;12:43—49.
22. Писаренко О.И., Шульженко В.С., Студнева И.М. и др. Влияние препарата динитрозильного комплекса железа с глутатионом и его компонентов на ишемизированное сердце крысы при реперфузии. Биофизика 2009;6:1081—1087.
23. Сheng X., Cheng X.S., Pang C.C. Venous dilator effect of apelin, an endogenous peptide ligand for the orphan APJ receptor, in conscious rats. Eur J Pharmacol 2003;470:171—175.
24. Clancy R.M., Leszczynska-Piziak J., Abramson S.B. Nitric oxide, an endothelial cell relaxation factor, inhibits neutrophil superoxide anion production via a direct action on the NADPH oxidase. J Clin Invest
1992;90:1116—1121.
25. Shultz R., Kelm M., Heusch G. Nitric oxide in myocardial ischemia/reperfusion injury. Cardiovasc Res 2004;61:402—413.
26. Marklund S., Marklund G. Involvement of the superoxide anion radical in the autoxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. Eur J Biochem 1974;47:469—474.
27. Ronkainen V.P., Ronkainen J.J., Hanninen S.L. et al. Hypoxia inducible factor regulates the cardiac expression and secretion of apelin. FASEB J 2007;8:1821—1830.
28. Atluri P., Morine K.J., Liao G.P. et al. Ischemic heart failure enhances endogenous myocardial apelin and APJ receptor expression. Cell Mol Biol Lett 2007;1:127—138.
29. Ashley E.A., Powers J., Chen M. et al. The endogenous peptide apelin potently improves cardiac contractility and reduces cardiac loading in vivo. Cardiovasc Res 2005;65:73—82.

Об авторах / Для корреспонденции

ФГУ Российский кардиологический научно производственный комплекс Минздравсоцразвития России, Москва
Писаренко О.И. - д.биол.н., руков. лаборатории.
Шульженко В.С. - ст.н.с.
Студнева И.М. - к.биол.н., вед.н.с.
Пелогейкина Ю.А. - мл.н.с.
Кхатри Д.Н. - аспирант.
Беспалова Ж.Д. - к.хим.н., руков. лаборатории.
Азьмуко А.А. - к.хим.н., вед.н.с.
Сидорова М.В. - к.хим.н., вед.н.с.
Палькеева М.Е. - к.хим.н., ст.н.с.
E-mail: olpi@cardio.ru

Также по теме