Invasive fungal infections in patients with COVID-19


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2022.5.74-80

Bolieva L.Z., Malyavin A.G., Ovsyannikova A.I.

1) North Ossetian State Medical Academy of the Ministry of Healthcare of Russia, Vladikavkaz; 2) A.I. Yevdokimov Moscow State University of Medicine and Dentistry of the Ministry of Healthcare of Russia, Moscow
Abstract. COVID-19 is sometimes associated with the onset of secondary infections, more often in severe cases treated in the intensive care unit. Bacterial pathogens are the most common pathogens, but a certain number of patients are at high risk of invasive fungal infections, in particular, invasive candidiasis, which can have a severe course and cause death of the patient. Additionally, invasive candidiasis has no pathognomonic features, most of causative fungal species have reduced susceptibility to first-line treatments and almost all antifungal medications are highly toxic. All of the above determines the need to generalize and discuss the available data on risk factors, diagnosis, clinical features, treatment and prevention of invasive candidiasis in patients with COVID-19.

ВВЕДЕНИЕ

За последние десятилетия инвазивные микозы в связи с неуклонным ростом заболеваемости стали актуальной медицинской проблемой. Наиболее часто они развиваются у больных гемобластозами, реципиентов трансплантатов кроветворных стволовых клеток. Увеличению числа иммунокомпрометированных пациентов с высоким риском развития глубоких микозов способствует всё большее распространение инвазивных диагностических и лечебных процедур, иммуносупрессивной терапии, возрастание числа ВИЧ-инфицированных, широкое применение антибактериальных препаратов. При этом наиболее высокому риску таких микозов подвержены пациенты в отделениях реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ). Еще одну группу пациентов высокого риска составляют больные с тяжелым течением вирусных инфекций. В литературе описаны случаи развития инвазивных микозов у иммунокомпетентных до заболевания пациентов с тяжелым течением гриппа или других острых респираторных вирусных инфекций [1, 2].

Инвазивные микозы у больных новой коронавирусной инфекцией COVID-19 представляют собой тяжелые осложнения с высокой летальностью. По имеющимся данным, у пациентов, инфицированных SARS-CoV-2, наиболее часто развиваются инвазивный аспергиллез, инвазивный кандидоз и мукормикоз [3–5].

В нашей работе представлены опубликованные к настоящему времени данные об эпидемиологии, патогенезе, особенностях диагностики и лечения инвазивного кандидоза, ассоциированного с COVID-19.

ЭПИДЕМИОЛОГИЯ

Согласно эпидемиологическим данным, полученным еще до пандемии новой коронавирусной инфекции, острый диссеминированный кандидоз и кандидемия составляют 75–90% всех случаев инвазивного кандидоза, при этом риск летального исхода в период госпитализации увеличивается в два раза. Candida spp. – одноклеточные дрожжевые микроорганизмы размером 6–10 мкм. В 93–97% случаев возбудителями кандидемии и острого диссеминированного кандидоза выступают C. albicans (15–60%), C. parapsilosis (5–40%), C. glabrata (5–25%), С. tropicalis (5–15%) и C. krusei (3–7%). Источник возбудителя инвазивного кандидоза обычно эндогенный, поскольку Candida spp. – естественные обитатели слизистых оболочек и кожи человека; также возможно внутрибольничное заражение этими возбудителями. В условиях стационара заражение происходит в основном через медицинские изделия, такие как кислородные маски, трубки, катетеры, а также через медицинских работников [6, 7].

Кандидоз является самым распространенным инвазивным микозом у больных с COVID-19 и встречается в этом случае, по результатам ряда исследований, с частотой до 10%. Присоединение вторичной грибковой инфекции происходит обычно через семь и более дней после госпитализации, летальность составляет более 50% [7–12]. Так, в когортном исследовании, проведенном Chowdhary A. et al. (2020), у пациентов с COVID- 19, госпитализированных в ОРИТ, кандидоз или кандидемия обнаруживались в 2,5% случаев, причем 67% случаев были вызваны Candida auris [13].

Патогенез

Наиболее частое проявление инфекции, вызванной грибами рода Candida, – поверхностный кандидоз кожи и слизистых оболочек. Однако у иммунокомпрометированных пациентов возможна грибковая инвазия в системный кровоток и через стенку кишечника [14].

Процесс этот можно представить в виде следующих этапов.

1. Адгезия, опосредующая прикрепление Candida spp. к клеткам организма хозяина путем неспецифических (гидрофобные контакты) и специфических (лиганд-рецепторные взаимодействия) механизмов.

2. Диморфизм – трансформация из дрожжевой формы в гифальную. При этом гифы непосредственно способствуют инвазии, а дрожжевые формы участвуют в диссеминации.

3. Тигмотропизм – направленный рост гиф, который обеспечивается внеклеточным захватом кальция через кальциевые каналы.

4. Инвазия, обеспечивающая проникновение Candida spp. в клетки-хозяина. Она основана на двух взаимодополняющих механизмах: индуцированном эндоцитозе, опосредованном белками-инвазинами, и активном проникновении. Активному проникновению возбудителя в клетки хозяина и повреждению тканей способствует секреция гидролаз – аспарагиновых протеаз, фосфолипаз и липаз.

5. Формирование биопленок, способствующее большей устойчивости возбудителя к антимикробным агентам и иммунным факторам хозяина. Связано это со сложной архитектурой матрикса, повышенной экспрессией эффлюксного насосного аппарата и метаболической пластичностью [15–19].

Candida spp. обладают способностью обходить иммунную систему организма хозяина путем снижения слияния фагосом с лизосомами, уменьшения опсонизации, разрушения факторов комплемента, высвобождения каталазы и супероксиддисмутазы, снижения концентрации антимикробных пептидов, нарушения баланса между Th1- и Th2- лимфоцитами [20]. Кроме того, они вырабатывают кандидализин – пептидный цитолитический токсин, который является критическим фактором в процессе перехода кандид из комменсальной в патологическую форму. Кандидализин обладает двойной функцией – лизиса мембран макрофагальных фагосом и активации иммунокомпетентных клеток. При этом зачастую происходит иммунопатологический ответ с чрезмерной активацией клеточного звена [21].

Candida и COVID-19

Возможные факторы риска развития инвазивного кандидоза у пациентов с COVID-19 продолжают изучаться. Согласно имеющимся к настоящему времени сведениям, таким фактором риска прежде всего выступает сама инфекция, вызванная вирусом SARS-CoV-2, особенно у госпитализированных пациентов с тяжелым поражением легких. Есть исследования, в которых показано, что частота инвазивного кандидоза у пациентов с COVID-19 выше, даже если они не имеют дополнительных факторов риска [12, 22]. SARS-CoV-2 может повреждать энтероциты, снижать барьерную функцию кишечника, приводить к микробной транслокации и изменению микробиоты пациентов с COVID-19, что влечет за собой увеличение содержания Candida spp. Таким образом, данная категория пациентов входит в группу повышенного риска транслокации грибов рода Candida с последующей кандидемией [23–25].

Вероятность развития инвазивного кандидоза повышает наличие дополнительных факторов риска, таких как пожилой возраст, сахарный диабет, применение иммуносупрессантов и ряд других. В значительном числе случаев кандидоз развивался у пациентов с центральным венозным катетером, госпитализированных в ОРИТ. Отрицательную роль играла также необоснованно высокая частота назначения антибактериальных препаратов пациентам с COVID-19. По данным литературы, антибиотики получали около 70% таких больных, тогда как частота подтвержденной вторичной бактериальной инфекции составляла лишь 1–10%. Очевидно, что нерациональное применение антибактериальных препаратов широкого спектра действия способствует селекции и размножению условно-патогенных микроорганизмов, повышая риски вторичной грибковой инфекции [11, 26–33].

Наконец, известно, что для лечения тяжелой инфекции COVID-19 применяются иммуносупрессоры. В ряде работ высказано предположение о возможной связи между использованием блокатора рецепторов интерлейкина 6 (ИЛ-6) тоцилизумаба и развитием кандидоза [34, 35]. Также опубликованы результаты исследований, в которых на небольшой выборке получено подтверждение повышенного риска развития кандидемии и диссеминированного кандидоза при применении системных глюкокортикостероидов (ГКС) [36].

Роль системных ГКС в развитии инвазивного кандидоза у пациентов с COVID-19 объясняется их фармакологическими свойствами и подтверждается значительным числом исследователей. Препараты этого класса оказывают выраженное угнетающее влияние на клетки иммунной системы (Т-лимфоциты, макрофаги, лейкоциты и др.) и подавляют синтез провоспалительных цитокинов, таких как ИЛ-1b, ИЛ-2, ИЛ-6 и фактор некроза опухоли-альфа (ФНО-α). Под действием ГКС снижается фагоцитарная активность и нарушается баланс Th1/Th2 с преобладанием Th2-опосредованного иммунного ответа и выработкой специфических цитокинов [37]. Вследствие ингибирования ГКС секреции ФНО-α подавляется способность моноцитов ингибировать рост Candida [38]. Также показана способность ГКС способствовать адгезии грибковых клеток к клеткам хозяина и размножению их в желудочно-кишечном тракте (ЖКТ) и системном кровотоке [36, 38].

Клиническая картина

Клинические проявления кандидемии и острого диссеминированного кандидоза, вызванных Candida spp., существенно не различаются. Клинические признаки кандидемии неспецифичны и практически не отличаются от симптомов бактериального сепсиса: у 95–97% больных отмечается повышение температуры тела выше 38 °C, рефрактерное к антибактериальной терапии, у 20–25% – острая дыхательная недостаточность, у 15–25% – инфекционно-токсический шок, у 30–40% – признаки поражения различных органов. Острый диссеминированный кандидоз возникает в результате гематогенного распространения Candida spp. в организме. При этом возможно поражение практически всех органов и тканей организма, но наиболее часто в патологический процесс вовлекаются легкие, почки, органы зрения, головной мозг, сердце, кости, а также кожа и подкожная клетчатка [6].

У пациентов с инвазивным кандидозом, осложнившим течение новой коронавирусной инфекции COVID-19, описаны такие клинические проявления, как лихорадка с ознобом, гипотензия, дезориентация, абдоминальные боли, инфекции мочевых путей, безболезненные пустулезные элементы на коже на фоне эритемы [39–41].

ДИАГНОСТИКА

У больных с факторами риска и соответствующими клиническими признаками кандидемии или острого диссеминированного кандидоза диагностические мероприятия следует проводить незамедлительно. Диагностика основана на выявлении грибов рода Candida в крови и других стерильных в норме субстратах. Рекомендованные лабораторные и инструментальные исследования приведены в таблице.

77-1.jpg (149 KB)

Критерии диагностики кандидемии – однократное выделение Candida spp. при посеве крови, полученной у больного с лихорадкой или другими признаками генерализованной воспалительной реакции. Критерии диагностики острого диссеминированного кандидоза – кандидемия в сочетании с выявлением Candida spp. при гистологическом исследовании и/или посеве материала из глубоких тканей или выявление Candida spp. при гистологическом исследовании и/или посеве материала из глубоких тканей двух и более локализаций [6].

Положительная гемокультура служит «золотым стандартом» диагностики инвазивного кандидоза [42]. Однако нужно помнить, что иногда при кандидемии или диссеминированном кандидозе в инфицированных тканях или в крови могут быть лишь единичные грибковые клетки, что делает их обнаружение в культуре крови затруднительным и требует дополнительных диагностических процедур [43]. Исследование гемокультуры также занимает достаточно длительное время [44]. Быстрым и точным современным методом идентификации Candida spp. является времяпролетная масс-спектрометрия с матрично-активированной лазерной десорбцией/ионизацией (MALDI-TOF-масс-спектрометрия) [45, 46].

РЕЗИСТЕНТНОСТЬ Candida к противогрибковым препаратам

Резистентность Candida spp. к азолам формируется через два механизма. Гиперэкспрессия или мутация гена ERG11, кодирующего фермент 14-α-деметилазу, приводит к гиперпродукции эргостерола или снижению аффинитета к азолам. Второй механизм связан с формированием мембранных эффлюксных помп. Известно несколько транспортных систем, осуществляющих активное выведение азолов. Активация систем выведения, часто ассоциирующаяся с изменениями в структуре мембраны, связана с мутациями генов Cg CDR1, Cd CDR1, Cd MDR1 [47, 48]. Относительно редко резистентность к азолам наблюдается у C. albicans, в то время как C. glabrata, C. krusei, C. auris и C. tropicalis обычно резистентны к этим препаратам [48].

Лекарственные средства из класса эхинокандинов воздействуют на мембрано-ассоциированный фермент β-13-D-глюкан-синтетазу, блокирующий синтез β-1,3-глюкана – основного структурного компонента клеточной стенки большинства грибов. Ферментный комплекс состоит из структурной/каталитической субъединицы, которая кодируется генами FKS [49]. В случае формирования клинической резистентности происходит модификация субъединиц генов FKS [50]. У большинства грибов рода Candida мутации возникают в двух высококонсервативных участках генов FKS1, а у C. glabrata – и FKS2. Возникающие аминокислотные замены вызывают повышение значений минимальных подавляющих концентраций (МПК), при этом некоторые из них могут снижать чувствительность глюкансинтетазы к препарату более чем в 3000 раз [51]. На текущий момент мутации в генах FKS остаются единственным механизмом устойчивости, четко ассоциированным с клинической неэффективностью терапии [52]. Наиболее частыми типами мутаций, ответственными за снижение чувствительности или резистентность к эхинокандинам, являются замены S663P или F659L [52–54], однако появляются данные и о новых типах мутаций, сопровождающихся высокими показателями устойчивости (потеря функции гена FKS1 в сочетании с точечной мутацией E655K в FKS2) [55]. Резистентность возбудителей к эхинокандинам обычно возникает на фоне терапии и связана с повторным или длительным их применением, при этом есть сведения о достаточно быстром формировании устойчивости и после коротких курсов лечения [56, 57].

Устойчивость к полиенам (амфотерицин В) развивается редко, и среди грибов рода Candida наблюдается у Candida auris [58]. Встречаются также штаммы, резистентные к большинству противогрибковых средств, и в этом случае контролировать возможные внутрибольничные вспышки особенно сложно [59].

ЛЕЧЕНИЕ

Риск развития инвазивного кандидоза, ассоциированного с COVID-19 (COVID-ИК), у больных в ОРИТ без специфических факторов риска невысок, поэтому рутинная первичная антифунгальная профилактика не рекомендуется.

Раннее эмпирическое назначение эхинокандинов повышает выживаемость больных инвазивным кандидозом. Показанием для эмпирической терапии COVID-ИК у больных в ОРИТ служит резистентная к адекватной антибиотикотерапии лихорадка продолжительностью более 4 сут в сочетании с наличием ≥2 факторов риска (длительное применение центрального венозного катетера, полное парентеральное питание, использование ГКС или иммуносупрессоров). Всем пациентам с инвазивным кандидозом показано раннее удаление/замена всех внутрисосудистых катетеров и других возможных источников возбудителя (мочевых катетеров, шунтов, протезов). Важные компоненты лечения – устранение или уменьшение выраженности факторов риска (отмена или снижение дозы ГКС, компенсация сахарного диабета и др.). При наличии факторов риска и клинических признаков COVID-ИК эмпирическую терапию следует начинать немедленно.

К препаратам выбора для эмпирической терапии всех вариантов COVID-ИК, кроме менингита и эндофтальмита, относятся эхинокандины – анидулафунгин, каспофунгин и микафунгин. Триазолы (вориконазол, флуконазол) можно назначать только в случае выделения чувствительного к препарату возбудителя COVID-ИК при стабильном состоянии пациента, а также для лечения кандидозного менингита и эндофтальмита. Помимо этого, вориконазол и флуконазол используют для деэскалационной терапии после стабилизации больного на фоне применения эхинокандина. Липосомальный амфотерицин В или липидный комплекс амфотерицина B применяют в случае неэффективности, токсичности или недоступности эхинокандинов. Амфотерицин В, позаконазол и итраконазол не рекомендованы для лечения COVID-ИК.

Продолжительность лечения составляет не менее 14 сут после исчезновения клинических признаков COVID-ИК и отрицательного посева крови [60].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Грибковые инфекции, в частности ассоциированный с COVID-19 инвазивный кандидоз, относятся к частым осложнениям новой коронавирусной инфекции COVID-19. Особенно это касается госпитализированных пациентов с тяжелым течением инфекции и дополнительными факторами риска, среди которых наиболее значимыми являются сопутствующий сахарный диабет, онкогематологические заболевания, применение системных ГКС, антагонистов ИЛ-6 и других иммуносупрессоров, антибактериальных препаратов. Учитывая отсутствие специфических клинических проявлений COVID-ИК, позднюю диагностику, сложности терапии, связанные с ростом резистентности грибов рода Candida к антимикотическим препаратам, высокую летальность, необходима повышенная настороженность врачей в отношении этого осложнения новой коронавирусной инфекции для его своевременной диагностики и лечения.


Literature


1. Хостелиди С.Н., Шагдилеева Е.В., Шадривова О.В. с соавт. Случай генерализованного сочетанного микоза на фоне острой респираторной вирусной инфекции. Проблемы медицинской микологии. 2019; 4: 24–29. [Khostelidi S.N., Shagdileeva E.V., Shadrivova O.V. et al. The case of generalized combined mycosis on the background of acute respiratory viral infection. The Problems of Medical Mycology. 2019; 4: 24–29 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.24412/1999-6780-2019-4-24-29. EDN: OQZIXE.


2. Schauwvlieghe A.F.A.D., Rijnders B.J.A., Philips N. et al. Invasive aspergillosis in patients admitted to the intensive care unit with severe influenza: A retrospective cohort study. Lancet Respir Med. 2018; 6(10): 782–92. https://dx.doi.org/10.1016/S2213-2600(18)30274-1.


3. Хостелиди С.Н., Зайцев В.А., Пелих Е.В. с соавт. Мукормикоз на фоне COVID-19: описание клинического случая и обзор литературы. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2021; 3: 256–262. [Khostelidi S.N., Zaytsev V.A., Pelikh E.V. et al. Mucormycosis following COVID-19: clinical case and literature review. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya = Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. 2021; 3: 256–262 (In Russ.)].https://dx.doi.org/10.36488/cmac.2021.3.255-262. EDN: KVDDYF.


4. Zhu X., Ge Y., Wu T. et al. Co-infection with respiratory pathogens among COVID-2019 cases. Virus Res. 2020; 285: 198005.https://dx.doi.org/10.1016/j.virusres.2020.198005.


5. Talento A.F., Hoenig M. Fungal infections complicating COVID-19: With the rain comes the spores. J Fungi (Basel). 2020; 6(4): 279–80. https://dx.doi.org/10.3390/jof6040279.


6. Васильева Н.В., Климко Н.Н., Цинзерлинг В.А. Диагностика и лечение инвазивных микозов: современные рекомендации. Вестник Санкт-петербургской медицинской академии последипломного образования. 2010; 4: 5–18. [Vassilieva N.V., Klimko N.N., Zinserlin V.A. Modern recommendations for diagnosis and treatment of invasive mycosis. Vestnik Sankt-peterburgskoy meditsinskoy akademii poslediplomnogo obrazovaniya = Bulletin of Saint Petersburg Medical Academy of Postgraduate Education. 2010; 4: 5–18 (In Russ.)]. EDN: NXUDQT.


7. Arastehfar A., Carvalho A., Nguyen M.H. et al. COVID-19-associated candidiasis (CAC): An underestimated complication in the absence of immunological predispositions? J. Fungi. 2020; 6(4): 211. https://dx.doi.org/10.3390/JOF6040211.


8. Chiurlo M., Mastrangelo A., Ripa M., Scarpellini P. Invasive fungal infections in patients with COVID-19: A review on pathogenesis, epidemiology, clinical features, treatment, and outcomes. New Microbiol. 2021; 44(2): 71–83.


9. Cuntro M., Manisco A., Guarneri D. et al. Blood stream infections during the first wave of COVID-19. A short microbiological retrospective picture at Papa Giovanni XXIII Hospital, Bergamo, Italy. New Microbiol. 2021; 44(1): 51–58.


10. Falcone M., Tiseo G., Giordano C. et al. Predictors of hospital-acquired bacterial and fungal superinfections in COVID-19: A prospective observational study. J Antimicrob Chemother. 2021; 76(4): 1078–84. https://dx.doi.org/10.1093/jac/dkaa530.


11. Grasselli G., Scaravilli V., Mangioni D. et al. Hospital-acquired infections in critically-ill COVID-19 patients. Chest. 2021; 160(2): 454–65. https://dx.doi.org/10.1016/j.chest.2021.04.002.


12. Nucci M., Barreiros G., Guimaraes L.F. et al. Increased incidence of candidemia in a tertiary care hospital with the COVID-19 pandemic. Mycoses. 2021; 64(20): 152–56. https://dx.doi.org/10.1111/myc.13225.


13. Chowdhary A., Tarai B., Singh A., Sharma A. Multidrug resistant Candida auris infections in critically ill coronavirus disease patients, India, April–July 2020. Emerg Infect Dis. 2020; 26(11): 2694–96. https://dx.doi.org/10.3201/EID2611.203504.


14. Jerez Puebla L.E. Fungal infections in immunosuppressed patients. Immunodeficiency. 2012. https://dx.doi.org/10.5772/51512.


15. Bommanavar S.B., Gugwad S., Malik N. Phenotypic switch: The enigmatic white-gray-opaque transition system of Candida albicans. J Oral Maxillofac Pathol. 2017; 21(1): 82–86. https://dx.doi.org/10.4103/0973-029X.203781.


16. Chakrabarti A., Sood P. On the emergence, spread and resistance of Candida auris: Host, pathogen and environmental tipping points. J Med Microbiol. 2021; 70(3): 001318. https://dx.doi.org/10.1099/JMM.0.001318.


17. Garcia M.C., Lee J.T., Ramsook C.B. et al. A role for amyloid in cell aggregation and biofilm formation. PLoS One. 2011; 6(3): e17632. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0017632.


18. Odds F.C. Secreted proteinases and Candida albicans virulence. Microbiology. 2008; 154(11): 3245–46.https://dx.doi.org/10.1099/mic.0.2008/023671-0.


19. Sudbery P.E. Growth of Candida albicans hyphae. Nat Rev Microbiol. 2011; 9(10): 737–48. https://dx.doi.org/10.1038/nrmicro2636.


20. Pathakumari B., Liang G., Liu W. Immune defence to invasive fungal infections: A comprehensive review. Biomed Pharmacother. 2020; 130: 110550. https://dx.doi.org/10.1016/j.biopha.2020.110550.


21. Kasper L., Franke A., Mogavero S. et al. Role of the fungal peptide toxin Candidalysin in macrophage damage and inflammatory response. Mycoses. 2016; 59: 15.


22. Mastrangelo A., Germinario B.N., Ferrante M. et al. COVID-BioB Study Group. Candidemia in COVID-19 patients: Incidence and characteristics in a prospective cohort compared to historical non-COVID-19 controls. Clin Infect Dis. 2021; 73(9): 2838–39.https://dx.doi.org/10.1093/cid/ciaa1594.


23. Arunachalam P.S., Wimmers F., Mok C.K.P. et al. Systems biological assessment of immunity to mild versus severe COVID-19 infection in humans. Science. 2020; 369(6508): 1210–220. https://dx.doi.org/10.1126/science.abc6261.


24. Lamers M.M., Beumer J., Vaart J. et al. SARS-CoV-2 productively infects human gut enterocytes. Science. 2020; 369(6499): 50–54. https://dx.doi.org/10.1126/science.abc1669.


25. Zuo T., Zhan H., Zhang F. et al. Alterations in fecal fungal microbiome of patients with COVID-19 during time of hospitalization until discharge. Gastroenterology. 2020; 159(4): 1302–10. https://dx.doi.org/10.1053/j.gastro.2020.06.048.


26. Abelenda-Alonso G., Padulles A., Rombauts A. et al. Antibiotic prescription during the COVID-19 pandemic: A biphasic pattern. Infect Control Hosp Epidemiol. 2020; 41(11): 1371–72. https://dx.doi.org/10.1017/ice.2020.381.


27. Guisado-Gil A.B., Infante-Dominguez C., Penalva G. et al. Impact of the COVID-19 pandemic on antimicrobial consumption and hospital-acquired candidemia and multidrug-resistant bloodstream infections. Antibiotics (Basel). 2020; 9(11): 816.https://dx.doi.org/10.3390/antibiotics9110816.


28. Langford B.J., So M., Raybardhan S., Leung V. et al. Bacterial co-infection and secondary infection in patients with COVID-19: A living rapid review and meta-analysis. Clin Microbiol Infect. 2020; 26(12): 1622–29. https://dx.doi.org/10.1016/j.cmi.2020.07.016.


29. Rawson T.M., Moore L.S.P., Zhu N. et al. Bacterial and fungal coinfection in individuals with coronavirus: A rapid review to support COVID-19. Clin Infect Dis. 2020; 71(9): 2459–68. https://dx.doi.org/10.1093/cid/ciaa530.


30. Richardson S., Hirsch J.S., Narasimhan M. et al. Presenting characteristics, comorbidities, and outcomes among 5700 patients hospitalized with COVID-19 in the New York City area. JAMA. 2020; 323(20): 2052–59. https://dx.doi.org/10.1001/jama.2020.6775.


31. Ripa M., Galli L., Poli A. et al. Secondary infections in patients hospitalized with COVID-19: Incidence and predictive factors. Clin Microbiol Infect. 2021; 27(3): 451–57. https://dx.doi.org/10.1016/j.cmi.2020.10.021.


32. Yapar N. Epidemiology and risk factors for invasive candidiasis. Ther Clin Risk Manag. 2014: 10; 95–105.https://dx.doi.org/10.2147/TCRM.S40160.


33. Vaughn V.M., Gandhi T.N., Petty L.A. et al. Empiric antibacterial therapy and community-onset bacterial coinfection in patients hospitalized with coronavirus disease 2019 (COVID-19): A multi-hospital cohort study. Clin Infect Dis. 2021; 72(10): e533–e541.https://dx.doi.org/10.1093/cid/ciaa1239.


34. Antinori S., Bonazzetti C., Gubertini G. et al. Tocilizumab for cytokine storm syndrome in COVID-19 pneumonia: an increased risk for candidemia? Autoimmun Rev. 2020; 19(7): 102564. https://dx.doi.org/10.1016/j.autrev.2020.102564.


35. Kimmig L.M., Wu D., Gold M. et al. IL-6 inhibition in critically ill COVID-19 patients is associated with increased secondary infections. Front Med (Lausanne). 2020; 7: 583897. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2020.583897.


36. Riche C.V.W., Cassol R., Pasqualotto A.C. Is the frequency of candidemia increasing in COVID-19 patients receiving corticosteroids? J Fungi (Basel). 2020; 6(4): 286. https://dx.doi.org/10.3390/jof6040286.


37. Tang Y., Liu J., Zhang D. et al. Cytokine storm in COVID-19: The current evidence and treatment strategies. Front Immunol. 2020; 11: 1708. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2020.01708.


38. Heidenreich S., Kubis T., Schmidt M., Fegeler W. Glucocorticoid-induced alterations of monocyte defense mechanisms against Candida albicans. Cell Immunol. 1994; 157(2): 320–27. https://dx.doi.org/10.1006/CIMM.1994.1230.


39. Riad A., Gomaa E., Hockova B., Klugar M. Oral candidiasis of COVID-19 patients: Case report and review of evidence. J Cosmet Dermatol. 2021; 20(6): 1580–84. https://dx.doi.org/10.1111/JOCD.14066.


40. Corchuelo J., Ulloa F.C. Oral manifestations in a patient with a history of asymptomatic COVID-19: Case report. Int J Infect Dis. 2020; 100: 154–57. https://dx.doi.org/10.1016/j.ijid.2020.08.071.


41. Jeronimo L.S., Esteves Lima R.P., Suzuki T. et al. Oral candidiasis and COVID-19 in users of removable dentures: Is special oral care needed? Gerontology. 2022; 68(1): 80–85. https://dx.doi.org/10.1159/000515214.


42. Nieto M., Robles J.C., Causse M. et al. Polymerase chain reaction versus blood culture to detect candida species in high-risk patients with suspected invasive candidiasis: The MICAFEM study. Infect Dis Ther. 2019; 8(3): 429–44.https://dx.doi.org/10.1007/S40121-019-0248-Z.


43. Arastehfar A., Carvalho A., Nguyen M.H. et al. COVID-19-associated candidiasis (CAC): An underestimated complication in the absence of immunological predispositions? J Fungi (Basel). 2020; 6(4): 211. https://dx.doi.org/10.3390/jof6040211.


44. Song G., Liang G., Liu W. Fungal co-infections associated with global COVID-19 pandemic: A clinical and diagnostic perspective from China. Mycopathologia. 2020; 185(4): 599–606. https://dx.doi.org/10.1007/S11046-020-00462-9.


45. Рябинин И.А., Сальникова В.А., Васильева Н.В. Аннотация MALDI-масс-спектров клеточной биомассы штаммов Candida albicans berkhout. Проблемы медицинской микологии. 2022; 1: 41–52. [Ryabinin I.A., Salnikova V.A., Vasilyeva N.V. Annotation of MASS-spectra of cellular biomass from Candida albicans Berkhout strains. Problemy meditsinskoy mikologii = Issues of Medical Mycology. 2022; 1: 41–52 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.24412/1999-6780-2022-1-41-52. EDN: VGECAP.


46. Clancy C.J., Nguyen M.H. Diagnosing invasive candidiasis. J Clin Microbiol. 2018; 56(5): 01909–17.https://dx.doi.org/10.1128/JCM.01909-17.


47. Иванова Л.В., Баранцевич Е.П., Шляхто Е.В. Резистентность грибов-патогенов к антимикотикам (обзор). Проблемы медицинской микологии. 2011; 1: 14–17. [Ivanova L.V., Barantsevich E.P., Shlyakchto E.V. Resistance of fungi-pathogens to antifungal preparations (revirew). Problemy meditsinskoy mikologii = Issues of Medical Mycology. 2011; 1: 14–17 (in Russ.)]. EDN: NMZBQR.


48. de Oliveira Santos G.C., Vasconcelos C.C., Lopes A.J.O. et al. Candida infections and therapeutic strategies: mechanisms of action for traditional and alternative agents. Front Microbiol. 2018; 9: 1351. https://dx.doi.org/10.3389/FMICB.2018.01351.


49. Mazur P., Baginsky W. In vitro activity of 1,3-β-D-glucan synthase requires the GTP-binding protein Rho1. J Biol Chem. 1996; 271(24): 14604–9. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.271.24.14604.


50. Park S., Kelly R., Kahn J.N. et al. Specific substitutions in the echinocandin target fks1p account for reduced susceptibility of rare laboratory and clinical Candida sp. isolates. Antimicrob Agents Chemother. 2005; 49(8): 3264–73.https://dx.doi.org/10.1128/AAC.49.8.3264-3273.2005.


51. Garcia-Effron G., Park S., Perlin D.S. Correlating echinocandin MIC and kinetic inhibition of FKS1 mutant glucan synthases for Candida albicans: Implications for interpretive breakpoints. Antimicrob Agents Chemother. 2009; 53(1): 112–22.https://dx.doi.org/10.1128/AAC.01162-08.


52. Shields R.K., Nguyen M.H., Press E.G. et al. The presence of an FKS mutation rather than MIC is an independent risk factor for failure of echinocandin therapy among patients with invasive candidiasis due to Candida glabrata. Antimicrob Agents Chemother. 2012; 56(9): 4862–69. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.00027-12.


53. Alexander B.D., Johnson M.D., Pfeiffer C.D. et al. Increasing echinocandin resistance in Candida glabrata: clinical failure correlates with presence of FKS mutations and elevated minimum inhibitory concentrations. Clin Infect Dis. 2013; 56(12): 1724–32.https://dx.doi.org/10.1093/cid/cit136.


54. Shields R., Nguyen M., Press E. et al. Caspofungin MICs correlate with treatment outcomes among patients with Candida glabrata invasive candidiasis and prior echinocandin exposure. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57(8): 3528–35.https://dx.doi.org/10.1128/AAC.00136-13.


55. Hou X., Healey K.R., Shor E. et al. Novel FKS1 and FKS2 modifications in a high-level echinocandin resistant clinical isolate of Candida glabrata. Emerg Microbes Infect. 2019; 8(1): 1619–25. https://dx.doi.org/10.1080/22221751.2019.1684209.


56. Lewis J.S., 2nd, Wiederhold N.P., Wickes B.L. et al. Rapid emergence of echinocandin resistance in Candida glabrata resulting in clinical and microbiologic failure. Antimicrob Agents Chemother. 2013; 57(9): 4559–61. https://dx.doi.org/10.1128/AAC.01144-13.


57. Bhatt K., Agolli A., Patel M.H. et al. High mortality co-infections of COVID-19 patients: Mucormycosis and other fungal infections. Discoveries. 2021; 9(1): e126. https://dx.doi.org/10.15190/D.2021.5.


58. Chaabane F., Graf A., Jequier L., Coste A.T. Review on antifungal resistance mechanisms in the emerging pathogen Candida auris. Front Microbiol. 2019; 10: 2788. https://dx.doi.org/10.3389/FMICB.2019.02788.


59. Sanguinetti M., Posteraro B., Lass-Florl C. Antifungal drug resistance among Candida species: mechanisms and clinical impact. Mycoses. 2015; 58(Suppl 2): 2–13. https://dx.doi.org/10.1111/MYC.12330.


60. Временные методические рекомендации «Профилактика, диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции COVID-19». Версия 15 (22.02.2022). Минздрав России. Доступ: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/059/392/original/BMP_COVID-19_V15.pdf (дата обращения – 04.06.2022). [Interim guidelines «Prevention, diagnosis and treatment of a new coronavirus infection COVID-19». Version 15 (02/22/2022). Ministry of Healthcare of Russia. URL: https://static-0.minzdrav.gov.ru/system/attachments/attaches/000/059/392/original/BMP_COVID-19_V15.pdf (date of access – 04.06.2022) (In Russ.)].


About the Autors


Laura Z. Bolieva, Dr. med. habil., professor, head of the Department of pharmacology with clinical pharmacology, North Ossetian State Medical Academy of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 362019, Vladikavkaz, 40 Pushkinskaya Str. E-mail: bolievalz@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-3763-8994
Andrey G. Malyavin, Dr. med. habil., professor, professor of the Department of phthisiology and pulmonology of the Faculty of general medicine, A.I. Evdokimov Moscow State University of Medicine and Dentistry of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 107150, Moscow, 39/2 Losinoostrovskaya Str. E-mail: maliavin@mail.ru.
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6128-5914. Scopus Author ID: 6701876872
Alevtina I. Ovsyannikova, PhD in Medicine, associate professor of the Department of pharmacology with clinical pharmacology, North Ossetian State Medical Academy of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 362019, Vladikavkaz, 40 Pushkinskaya Str. E-mail: logitech@mail.ru


Бионика Медиа