Взаимосвязь содержания регуляторов пролиферации и апоптоза с активностью протеинкиназы р38 в мононуклеарных клетках периферической крови у реконвалесцентов внебольничной пневмонии


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2018.6.103-110

С.С. Бондарь, О.В. Гук, И.В. Терехов, В.С. Никифоров

1 ФГБОУ ВО «Тульский государственный университет», Россия, Тула; 2 ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России, Санкт-Петербург
Исследованы молекулярные показатели, отражающие состояние стресс-лимитирующих систем мононуклеарных лейкоцитов (МНК) цельной крови у пациентов, перенесших внебольничную пневмонию (ВБ). Цель исследования. Изучение характера зависимости между уровнем фосфорилирования терминальной протеинкиназы р38, отражающей состояние сигнального пути, и содержанием в клетке компонентов, регулирующих процессы пролиферации, дифференцировки и клеточной гибели у реконвалесцентов ВБ. Материал и методы. Обследованы 30 пациентов мужского пола с бактериальной ВБ нетяжелого течения на 15–17-е сутки заболевания, перед выпиской из стационара. Контрольную группу составили 15 практически здоровых молодых лиц из числа доноров крови. В работе оценивалось содержание в клетках компонентов MAPK/SAPK и JAK/STAT сигнальных путей, содержание протеина р53 и цитохрома С. Также в клеточных супернатантах исследовали уровень молекул, контролирующих апоптоз и пролиферацию, членов семейства фактора некроза опухоли альфа (растворимых форм рецепторов DR5 и DcR3, лигандов TRAIL, TWEAK, BAFF, LIGHT), а также концентрацию антиоксидантов. Уровень этих показателей исследовали в зависимости от активности протеинкиназы р38, оцениваемой по уровню ее фосфорилирования. Результаты. У пациентов, перенесших ВП на фоне возрастания уровня протеинкиназы р38, отмечено повышение содержания в МНК протеина р53, а также усиление фосфорилирования ингибитора фактора транскрипции NF-κB. Также выявлено статистически значимое повышение уровня фосфорилирования белка RB, растворимой формы DR5, TRAIL и BAFF. Указанные изменения сопровождались снижением уровня фосфорилирования JAK2, STAT3 и CREB, а также концентрации TWEAK, LIGHT и цитохрома С. Значимых изменений содержания DcR3, STAT5A и АОС в группах с различной активностью р38 выявлено не было. Проведенный линейный регрессионный анализ выявил статистически значимую положительную взаимосвязь активности р38 с уровнем фосфорилирования белка ретинобластомы, STAT3, IκB, JNK и отрицательную с уровнем фосфорилирования JAK2. Заключение. Активность MAPK/SAPK-сигнального пути в МНК реконвалесцентов ВП находится в антагонистичных отношениях к JAK/STAT-сигнальному пути, ослабляя его активность со снижением чувствительности клеток к соответствующим цитокинам. При этом повышение фосфорилирования р38 ассоциировано с повышением фосфорилирования IκB, определяя транскрипцию генов, контролирующих апоптоз, пролиферацию и клеточную дифференцировку. Повышение экспрессии гена BAFF и усиление продукции цитокинов способствует активации В-лимфоцитов, при этом секреция TRAIL усиливает апоптоз чувствительных клеток. Таким образом, активация р38 в МНК может способствовать повышению резистентности организма и противоопухолевой защиты. Проапоптотическая функция р38 может реализовываться за счет стимуляции продукции р53, экспрессии на клетках DR5 и продукции ими TRAIL, тогда как пролиферация и дифференцировка В-лимфоцитов может быть усилена через стимуляцию продукции BAFF, что, очевидно, определяется ее влиянием на ядерную транскрипцию через модуляцию функциональной активности IκB.
Ключевые слова: внебольничная пневмония, мононуклеарные лейкоциты, p38, DR5, TRAIL, BAFF, IκB

Митоген-активируемый/стресс-активи­руемый (MAPK/SAPK) молекулярный каскад играет важную роль в обеспечении реактивности иммунокомпетентных клеток (ИКК) к разнообразным внешним стимулам и запуске ответа острой фазы (ООФ). При этом реализация клеточных реакций в рамках ООФ проявляется активацией клеток, усилением продукции ими активных форм кислорода (АФК), антимикробных пептидов, а также цитокинов [1]. Синтезируемые в рамках ООФ цитокины, связываясь с соответствующими цитоплазматическими рецепторами и воздействуя через сигнальные пути, среди которых JAK/STAT-сигнальный путь, инициируют воспалительный ответ, служащий важнейшей стадией процесса саногенеза.

При этом инициация ООФ требует активации транскрипционных факторов NF-κB и АР-1, что обеспечивается протеинкиназами JNK и p38 [2, 3]. Вместе с тем в отдельных случаях стимуляция сигнального пути сопровождается инициацией процесса апоптоза, вызываемого отдельными цитокинами, входящими в семейство фактора некроза опухоли (ФНО), в частности ФНОα, TRAIL, TWEAK, BAFF и др. Продукция цитотоксическими Т-лимфоцитами и NK-клетками, отдельных представителей цитокинов семейства ФНО, определяет противоопухолевую резистентность организма [3, 4]. Вместе с тем в зависимости от конкретных условий данные факторы могут стимулировать клеточную пролиферацию и дифференцировку, способствовать опухолевому росту. При этом влияние данных факторов на процессы пролиферации находится под контролем внутриклеточных механизмов, эффекторами которых являются протеины р53 и белок ретинобластомы (RB), предупреждающие избыточную активацию данных процессов [5].

Таким образом, MAPK/SAPK-сигнальный путь играет важную роль в первичном клеточном ответе на внешние стимулы, от активности которого зависит дальнейшая судьба клетки и ее жизненный цикл. В связи с этим представляет интерес исследование зависимости между ключевыми молекулярными механизмами в зависимости от активности MAPK/SAPK-сигнального пути.

На основании вышеизложенного целью настоящего исследования стало изучение характера зависимости между уровнем фосфорилирования терминальной протеинкиназы р38, отражающей состояние сигнального пути и содержание в клетке компонентов, регулирующих процессы пролиферации, дифференцировки и клеточной гибели у реконвалесцентов внебольничной пневмонии (ВП).

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В соответствии с целью настоящей работы обследованы 30 пациентов мужского пола с бактериальной ВП нетяжелого течения на 15–17-е сутки заболевания, перед выпиской из стационара. Средний возраст обследованных пациентов основной группы составил 25±5,5 лет. Контрольную группу составили 15 практически здоровых молодых лиц из числа доноров крови в возрасте от 20 до 33 лет (средний возраст 26±4,3 года).

Материалом для исследования служила венозная кровь, забиравшаяся в утренние часы из локтевой вены обследуемых лиц. Для проведения исследования внутриклеточных маркеров 1 мл цельной крови вносили во флакон, содержащий 4 мл среды DMEM, гепарин (2,5 ЕД/мл), гентамицин (100 мкг/мл) и L-глютамин (0,6 мг/мл). Подготовленные таким образом образцы помещались на 3 и 24 ч в термостат при 37 °C с последующим выделением на градиенте фиколл-верографина (ρ=1,077) мононуклеарных лейкоцитов (МНК) и приготовлением лизатов, для чего использовали 1 мл клеточной суспензии содержащей 0,5×106 МНК [6]. Выделенные таким образом МНК дважды отмывали в фосфатно-солевом буфере, после чего лизировали, используя буфер следующего состава: 10 mM Tris, pH 7,4; 100 mM NaCl, 1 mM EDTA, 1 mM EGTA, 1 mM NaF, 20 mM Na4P2O7, 2 mM Na3VO4, 1% Triton X-100, 10% глицерола, 0,1% SDS, 0,5% деоксихолата, 1 mM PMSF (матричный 0,3 М раствор в DMSO). В лизирующий раствор добавляли (ex tempore) 1% коктейля ингибитора протеаз (Sigma-Aldrich, США), выдерживали на льду (при t=+4–5 °C) в течение 15 мин. Ядерно-цитоплазматические лизаты центрифугировали в течение 10 мин при 15 000 об./мин, с последующим аликвотированием и замораживанием при -76 °С.

Подсчет клеток и анализ жизнеспособности осуществляли с помощью счетчика TC20 (Bio-Rad, США). Жизнеспособность клеток подготовленных культур составляла не менее 90%.

В приготовленных ядерно-цитоплазматических лизатах методом иммуноферментного анализа (ИФА) оценивали концентрацию протеина р53, а также уровень цитохрома С. Также в ядерно-цитоплазматических лизатах определяли уровень фосфорилирования ингибитора фактора транскрипции NF-κB – IκBα по серину в положении 32, уровень фосфорилирования по серину в положении 780 белка ретинобластомы, по серину в положении 133 транскрипционного фактора CREB, по тирозину в положении 1007⁄1008 рецепторной протеинкиназы JAK2, фосфорилированной по тирозину в положении 705 формы STAT3, и по тирозину в положении 694 STAT5А. Кроме того, оценивали уровень фосфорилирования по треонину/тирозину в положении 180/182 митоген-активируемой протеинкиназы р38α и уровень фосфорилирования по треонину/тирозину в положении 183/185 стресс-активируемой протеинкиназы JNK1/2. Уровень фосфорилирования исследованных факторов оценивали в условных единицах на 1 нг протеина (ед./нг).

В клеточных супернатантах определяли концентрацию растворимых рецепторов DR5, DcR3, а также лиганда рецептора лимфотоксина β (LIGHT), ФНО-подобного слабого индуктора апоптоза (TWEAK), ФНО-зависимого лиганда, индуцирующего апоптоз (TRAIL), фактора активации В-клеток семейства ФНО (BAFF), а также концентрацию антиоксидантов (АОС).

При проведении ИФА использовали наборы реактивов Cusabio Biotech (КНР). Анализ проводили на анализаторе Personal LAB (Adaltis Italia S.p.A., Италия).

Статистическую обработку проводили в программе Statistica 7.0. Результаты исследования представлены в виде среднего значения признака (x), медианы (Ме), 25 и 75 процентилей выборки (25%; 75%). Статистическую значимость (р) межгрупповых различий в несвязанных выборках оценивали с помощью U-критерия Манна–Уитни. Взаимосвязь показателей исследовали методом многофакторного регрессионного анализа.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Исследование уровня фосфорилирования терминальной протеинкиназы MAPK/SAPK-сигнального пути р38 показало, что средний уровень активности данного фактора в МНК реконвалесцентов ВП составляет 0,16 ед./нг. Уровень, соответствующий 1-му и 4-му квартилям выборочной совокупности, составил 0,13 и 0,19 ед./ нг при величине медианы выборки 0,15 ед./ нг. Таким образом, результаты анализа позволили сформировать две группы исследования: с низким (подгруппа 1) и высоким (подгруппа 2) уровнем фосфорилирования протеинкиназы р38 в образцах. При этом в первую группу (n=16) были включены образцы клеточных культур с содержанием фосфорилированной формы р38 0,16 ед./нг и менее, во вторую (n=24) – образцы с уровнем фосфорилирования 0,2 ед./нг и более.

Содержание исследованных факторов в подгруппах представлено в табл. 1.

На рисунке представлено среднее значение различий уровня исследованных показателей в группах с максимальным и минимальным содержанием протеинкиназы р38α.

Статистическая значимость выявленных различий представлена в табл. 2.

Результаты проведенного анализа свидетельствуют о том, повышение уровня фосфорилирования р38 ассоциировано со статистически значимым повышением экспрессии DR5, TRAIL, BAFF, RB, протеинкиназы JNK1/2 и IκBα, а также снижением уровня TWEAK, LIGHT, JAK2, STAT3 и CREB.

Исследование характера взаимосвязи между регуляторами апоптоза и р38 проведено методом линейного регрессионного анализа с пошаговым включением переменных в регрессионную модель. Результаты проведенного анализа представлены в табл. 3.

Результаты регрессионного анализа свидетельствуют о том, что коэффициент корреляции регрессионного уравнения (R), отражающий силу связи показателя активности протеинкиназы р38 с комбинацией факторов, включенных в модель, составил 0,96, коэффициент детерминации, определяющий долю изменчивости значений р38, объясняемую полученной математической моделью (R2), составил 0,93 (скорректированный коэффициент детерминации – 0,92), указывая на высокую степень взаимосвязи регуляторов апоптоза и активности р38.

Модель характеризуется статистической значимостью, на что указывает значение F-критерия (F=133,5; p <0,0000) и низкой корреляцией остатков (коэффициент Дарбина–Уотсона=1,16; коэффициент линейной корреляции остатков=0,42). Стандартная ошибка оценки модели 0,048 ед.

Анализ математической модели, в частности, стандартизированных коэффициентов корреляции, позволяет говорить о том, что наиболее значимая положительная взаимосвязь фосфорилирования р38 отмечается с уровнем фосфорилирования белка RB, а также STAT3. Менее выраженная взаимосвязь фосфорилирования р38 отмечается с уровнем фосфорилирования протеинкиназы JNK1/2 и ингибитора IκBα. Проведенный анализ также выявил отрицательную взаимосвязь фосфорилирования р38 и JAK2.

Результаты исследований свидетельствуют о том, что постклиническая фаза ВП сопровождается угнетением фосфорилирования компонентов JAK/STAT-сигнального пути, в частности STAT5A и STAT6, а также MAPK/SAPK-сигнального пути, в том числе протеинкиназы JNK, сопровождаясь при этом подавлением активности фактора транскрипции NF-κB на фоне дефицита антиоксидантов, отражающих дисрегуляцию системы АОЗ/ПОЛ у реконвалесцентов ВП.

В настоящем исследовании у реконвалесцентов ВП выявлены взаимосвязи фосфорилирования протеинкиназы р38 и регуляторов апоптоза. При этом установлена статистически значимая положительная взаимосвязь фосфорилирования р38 и уровня фосфорилирования белка ретинобластомы, STAT3, JNK1/2, IκBα, а также отрицательная с уровнем фосфорилирования протеинкиназы JAK2. Кроме того, в группах с низким и высоким уровнем р38 отмечается статистически значимое различие экспрессии DR5, TRAIL, BAFF, TWEAK, LIGHT, а также фосфорилирования протеина RB, протеинкиназ JNK1/2, IκBα, JAK2, факторов транскрипции STAT3 и CREB.

Результаты проведенного анализа свидетельствуют о том, повышение уровня фосфорилирования р38 ассоциировано со статистически значимым повышением экспрессии DR5, TRAIL, BAFF, снижением уровня TWEAK, LIGHT и фактора транскрипции CREB. Таким образом, повышение активности протеинкиназы р38 стимулирует DR5/TRAIL-сигнальный путь активации апоптоза ИКК, что в целом определяет формирование противовоспалительного эффекта [7]. При этом тенденция к повышению уровня р53, а также повышение фосфорилирования IκBα, способствующее активации ядерного фактора транскрипции NF-κB, также стимулируют TRAIL-индуцируемый апоптоз. Кроме этого, результаты исследования указывают на взаимосвязь у реконвалесцентов ВП активности р38 и продукции BAFF, указывающие на стимулирующее влияние р38 на дифференцировку и пролиферацию В-лимфоцитов по неканоническому пути [8]. Вместе с тем отмеченное статистически значимое различие содержания в подгруппах исследования факторов TWEAK и LIGHT, в частности снижение их экспрессии в группе с высоким уровнем фосфорилирования р38, свидетельствует о торможении у обследуемых процессов ангиогенеза и роста клеток, регулируемых TWEAK, а также Т-клеточного иммунитета и аутоиммунных реакций на его основе, регулируемых LIGHT [9]. В свою очередь, взаимосвязь фосфорилирования RB и р38, очевидно, отражает роль исследуемого фактора в репаративных процессах у реконвалесцентов ВП, в частности, регулируемых фактором роста TGFβ [10].

Выявленная отрицательная взаимосвязь уровня р38 и JAK2, свидетельствует о негативном влиянии цитокинов, в том числе, ИЛ-3, ИЛ-7 на митоген-активируемый сигнальный путь, отражая реципроктные взаимосвязи MAPK- и JAK/STAT-сигнальных путей у реконвалесцентов ВП, очевидно, за счет опосредуемого NF-κB и AP-1 повышения продукции супрессора цитокиновой сигнализации SOCS1 и фосфатазы PTP1B [11–13]. Значимая, умеренной силы положительная взаимосвязь р38 и IκBα, обеспечивающая суммацию сигналов, регулирующих активность транскрипционного фактора NF-κB, отражает важную роль исследуемой киназы в реализации саногенетических программ в фазу реконвалесценции бактериальной пневмонии.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Результаты проведенного исследования свидетельствуют о том, что фосфорилирование протеинкиназы р38 в МНК находится в зависимости от уровня молекул, регулирующих апоптоз и пролиферацию, в частности р53, DR5, TRAIL, BAFF, TWEAK и LIGHT, что позволяет говорить о вовлечении МАРК-сигнального пути в регуляцию провоспалительной активности ИКК за счет стимуляции гуморального иммунного ответа и подавления клеточно-опосредованного аутоиммунного воспаления.

Взаимосвязь фосфорилирования р38 с компонентами JAK/STAT-сигнального пути, в том числе JAK2, STAT3 и STA5A, указывает на вовлеченность протеинкиназы р38 в реализацию эффектов цитокинов, передающих сигнал внутрь клетки с помощью gp130 (ИЛ-6, ИЛ-11), а также эритропоэтина и тромбопоэтина. Проведенный анализ показал, что у реконвалесцентов ВП протеинкиназа р38 вовлечена в реализацию процессов саногенеза, ее активность находится в зависимости от экспрессии рецепторов апоптоза, будучи связанной с активностью транскрипционных факторов NF-κB и CREB.

Таким образом, протеинкиназа р38, играя важную роль в регуляции физиологических процессов в ИКК, может рассматриваться в качестве терапевтической мишени с целью коррекции функцио­нального состояния ИКК и процессов саногенеза у реконвалесцентов ВП [1, 2, 6, 14].


Литература


  • Потехина Е.С., Надеждина Е.С Митоген-активируемые протеинкиназные каскады и участие в них Ste20-подобных протеинкиназ. Успехи биологической химии, 2002, №42. С. 235-256.
  • Бондарь С.С., Логаткина А.В., Терехов И.В. Влияние низкоинтенсивного микроволнового излучения частотой 1 ГГц на состояние MAPK/SAPK-сигнального пути в мононуклеарных лейкоцитах. Биомедицинская радиоэлектроника, 2016, №10. С. 28–36.
  • Rath P.C., Aggarwal B.B. TNF-induced signaling in apoptosis. J Clin Immunol. 1999; 19(6): 350-64.
  • Zhang L., Fang B. Mechanisms of resistance to TRAIL-induced apoptosis in cancer. Cancer Gene Ther. 2005; 12(3): 228-37.
  • Желтухин А.О., Чумаков П.М. Повседневные и индуцируемые функции гена р53. Успехи биологической химии, 2010, т. 50. С. 447–516.
  • Терехов И.В., Никифоров В.С., Бондарь С.С., Бондарь Н.В., Воеводин А.А. Изменение содержания компонентов IL/TOLL-сигнального пути и NF-kB в мононуклеарных клеток цельной крови под влиянием низкоинтенсивного электромагнитного излучения частотой 1 ГГц. Гены и клетки, 2017, т. 12, №2. С. 90-96.
  • Liu F.F., Wu X., Zhang Y., Wang Y., Jiang F. TRAIL/DR5 Signaling Promotes Macrophage Foam Cell Formation by Modulating Scavenger Receptor Expression. Bratton SB, ed. PLoS ONE. 2014; 9(1): e87059. doi:10.1371/journal.pone.0087059.
  • Wei F., Xu S., Jia X., Sun X., Yang X., Wei W., Chang Y. BAFF and its receptors involved in the inflammation progress in adjuvant induced arthritis rats. Int Immunopharmacol. 2016; 31: 1-8. doi: 10.1016/j.intimp.2015.12.007.
  • Hung J.Y., Chiang S.R., Tsai M.J., Tsai Y.M., Chong I.W., Shieh J.M., Hsu Y.L. LIGHT is a crucial mediator of airway remodeling. J Cell Physiol. 2015; 230(5): 1042-53. doi: 10.1002/jcp.24832.
  • Li H., Wicks W.D. Retinoblastoma protein interacts with ATF2 and JNK/p38 in stimulating the transforming growth factor-beta2 promoter. Arch Biochem Biophys. 2001; 394(1): 1-12.
  • Myers M.P., Andersen J.N., Cheng A., Tremblay M.L., Horvath C.M., Parisien J.P., Salmeen A., Barford D., Tonks N.K. TYK2 and JAK2 are substrates of protein-tyrosine phosphatase 1B. J Biol Chem. 2001; 276(51): 47771-4.
  • Yoshimura A., Suzuki M., Sakaguchi R., Hanada T., Yasukawa H. SOCS, Inflammation, and Autoimmunity. Front Immunol. 2012;3:20. doi: 10.3389/fimmu.2012.00020. eCollection 2012.
  • Kubo M., Hanada T., Yoshimura A. Suppressors of cytokine signaling and immunity. Nat Immunol. 2003;4(12):1169-76.
  • Петросян В.И., Чесноков Б.П., Брилль Г.Е. и др. Онко-радиоволны биосферы: аква-фазоволновая модель развития злокачественных новообразований Ч. 1. Радиофизические основы модели. Биомедицинская радиоэлектроника, 2014, №1. С. 3-13.
  • Терехов И.В., Солодухин К.А., Ицкович В.О. Особенности биологического действия низкоинтенсивного СВЧ-излучения на продукцию цитокинов клетками цельной крови при внебольничной пневмонии. Цитокины и воспаление, 2012, т. 11, №4. С. 67-72.
  • Солодухин К.А., Никифоров В.С., Громов М.С. и др. Влияние низкоинтенсивного СВЧ-облучения на внутриклеточные процессы в мононуклеарах при пневмонии. Медицинская иммунология, 2012, т. 14, №6. С. 541-544.
  • Терехов И.В., Хадарцев А.А., Бондарь С.С. Состояние рецепторзависимых сигнальных путей в агранулоцитах периферической крови реконвалесцентов внебольничной пневмонии под влиянием микроволнового излучения. Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры, 2016, т. 93, №3. С. 23-28.

  • Об авторах / Для корреспонденции


    Станислав Станиславович Бондарь, аспирант кафедры внутренних болезней Медицинского института ФГБОУ ВО «Тульский государственный университет». Адрес: 300012, Россия, Тула, пр. Ленина, д. 92. Тел.: +7 (4872) 254-728. E-mail: stos34@mail.ru
    Олеся Вячеславовна Гук, аспирант кафедры внутренних болезней Медицинского института ФГБОУ ВО «Тульский государственный университет». Адрес: 300012, Россия, Тула, пр. Ленина, д. 92. Тел.: +7 (4872) 254-728. E-mail: olesya.guck@yandex.ru
    Игорь Владимирович Терехов, к.м.н., доцент кафедры общей патологии Медицинского института ФГБОУ ВО «Тульский государственный университет». Адрес: 300012, Россия, Тула, пр. Ленина, д. 92. Тел.: +7 (4872) 254-742. E-mail: trft@mail.ru
    Виктор Сергеевич Никифоров, д.м.н., профессор кафедры функциональной диагностики ФГБОУ ВО «Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова» Минздрава России. Адрес: 191015, Санкт-Петербург, ул. Кирочная, 41. Тел.: +7 (812) 275-19-33. Е-mail: viktor.nikiforov@szgmu.ru


    Бионика Медиа