ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Диагностическое значение микробиоты кишечника как одного из ведущих факторов в развитии язвенного колита на фоне сахарного диабета 2-го типа

С.Н. Лагутина, А.А. Пашкова, В.В. Дудурич, Л.Г. Данилов, Е.Д. Ермаченко

1) ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России; 2) ООО «Сербалаб», г. Санкт-Петербург; 3) ФГБОУ ВО «Санкт-Петербургский государственный университет»
Аннотация. Частота встречаемости язвенного колита (ЯК) в структуре гастроэнтерологической патологии неуклонно растет. Наличие коморбидных состояний, в том числе сахарного диабета 2-го типа (СД 2), способствует развитию осложненных форм ЯК. Прогрессирующее течение, резистентность к основным группам лекарственных средств ведут к инвалидизации трудоспособного населения. Поиск новых диагностических маркеров может способствовать своевременному началу терапии, что сократит сроки наступления клинической и эндоскопической ремиссии.
Цель – оценить биоразнообразие микробиоты кишечника у пациентов с ЯК и СД 2.
Материал и методы. Проводилось 16S рРНК секвенирование микробиоты кишечника у 100 пациентов (80 – пациенты с ЯК и СД 2, 20 – пациенты с ЯК, 20 – соматически здоровые пациенты). Диагноз ЯК верифицировался с помощью лабораторных и инструментальных методов исследования. Средний возраст обследуемых групп пациентов составил 50,1 ± 8,3 года.
Результаты. В исследуемой группе преобладали пациенты с ЯК легкой степени тяжести. При оценке кишечной микробиоты у пациентов с ЯК и СД 2 выявлено достоверно значимое увеличение количественного содержания родов бактерий, участвующих в углеводном обмене (Akkermansia, Dorea, Collinsella, Lachnospira). Отмечена взаимосвязь между представителями метан-продуцентов и наличием воспалительного процесса при ЯК, увеличение условно-патогенного и патогенного кластера.
Заключение. У пациентов с ЯК установлено увеличение количества представителей Firmicutes по сравнению с группой контроля. При этом возрастание значений численности метан-продуцирующих бактерий может являться одним из неинвазивных критериев оценки тяжести ЯК на фоне СД 2. Полученные сведения, указывающие на новые потенциальные механизмы развития ЯК, могут послужить основой для усовершенствования диагностики и лечения этой патологии при наличии коморбидных состояний.

Ключевые слова

кишечная микробиота
язвенный колит
сахарный диабет 2-го типа
индекс Мейо
16s секвенирование микробиоты

ВВЕДЕНИЕ

В настоящее время среди патологий кишечника наиболее часто встречаются заболевания с аутоиммунным типом воспаления, к которым относится язвенный колит (ЯК). Этиология ЯК остается неизвестной, определены только ведущие факторы, способствующие поддержанию хронического воспаления и аутоагрессии [1]. Данная патология встречается среди пациентов молодого и среднего возрастов (около 40 тыс. человек на территории России), при этом ежегодный прирост частоты ее встречаемости составляет более 11%, в связи с чем актуальной проблемой остается поиск новых маркеров в диагностике ЯК [2].

В результатах современных исследований отмечается важная роль воздействия кишечной микробиоты в развитии воспалительных заболеваний кишечника (ВЗК). Прогрессирующим фактором воспаления при ЯК может быть дисбаланс между представителями различных кластеров бактерий. Уменьшение микробного биоразнообразия с последующим нарушением метаболизма бактерий способствует развитию этой патологии [3–6]. Есть сведения об участии представителей кишечной микробиоты в гомеостазе глюкозы с последующим нарушением процессов всасывания и снижения чувствительности тканей к инсулину, формированием инсулинорезистентности и сахарного диабета 2-го типа (СД 2). Это обусловлено развитием метаболического дисбиоза у лиц с ВЗК вследствие дисбиоза кишечных групп бактерий [7, 8].

Известно, что у пациентов с ЯК доминирующими типами кишечной микробиоты являются Firmicutes, Bacteroidota. Родовидовые представители этих мироорганизмов могут быть вовлечены в развитие воспалительного процесса и выступать новым биомаркером заболевания. Определение численности представителей кишечной микробиоты, оценка родовидового биоразнообразия может служить вспомогательным диагностическим критерием, способствующим своевременной верификации диагноза для пациентов с ЯК на фоне СД 2, а также другой коморбидной патологии [9, 10].

Цель исследования – оценить биоразнообразие кишечной микробиоты у пациентов с ЯК на фоне СД 2.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Проведено 16S рРНК секвенирование микробиома кишечника у 80 пациентов с ЯК и СД 2, 20 пациентов с ЯК и 20 соматически здоровых пациентов. Средний возраст обследуемых составил 50,1 ± 8,3 года.

Участникам выполнялось исследование лабораторных показателей: общий анализ крови (ОАК), оценка С-реактивного белка (СРБ), фекального кальпротектина (исследовался только при первичном обращении пациентов), глюкозы, липидного спектра (общего холестерина, липопротеидов низкой плотности), гликированного гемоглобина (HbA1c). Забор биоматериалов осуществлялся в период клинической ремиссии симптомов ЯК (поддерживающая терапия была идентичной во всех исследуемых группах – прием препаратов группы 5-аминосалициловой кислоты) в рамках динамического наблюдения на амбулаторном этапе.

В плане коррекции симптомов СД 2 сахаро­снижающая терапия у исследуемых была одинаковой – использование пероральных сахароснижающих средств из группы бигуанидов. Тотальную ДНК выделяли из образцов кала и сыворотки, подвергнутых гомогенизации в лизирующем растворе. Гомогенизация проводилась вместе с шариками, с последующей экстракцией ДНК методом сорбентной колонки. Биоинформатическая обработка полученных результатов выполнялась с применением биоинформатического пайплана, реализованного на языках программирования R v.3.6 и Python3 [11]. На первом этапе обработки последовательности праймеров обрезались для парных прочтений. Прочтения, не содержащие последовательности праймеров, удалялись. Затем производилось удаление прочтений с плохим качеством (балл Phred не менее 10) и коротких прочтений (не менее 200 пар нуклеотидов) [12]. После определения вариантов последовательностей прочтения конкатенировали, а полученные последовательности использовали для таксономической классификации (метод Naive Bayes) с применением референсной базы данных SILVA v138 [13, 14]. Идентификация родов бактерий осуществлялась посредством алгоритма точного совпадения в DADA2 по предварительно обработанным соответствующим образом последовательностям SILVA v138 с помощью пользовательских скриптов.

Оценка метаболического потенциала микроб­ного сообщества у исследуемых групп пациентов в рамках данного исследования не проводилась.

Для расчета индекса разнообразия кишечной микробиоты (индекс Шеннона) на вход пакета vegan языка программирования R была подана матрица, содержащая общее количество вариантов последовательности ампликонов (ASV) на родовом уровне. Для парного сравнения индексов биоразнообразия использовался U-тест Манна – Уитни. С целью выявления особых таксонов применительно к каждой группе выполнялся частичный дискриминантный анализ по методу наименьших квадратов (sPLS-DA) при помощи программы multiomix (пакет программ mixOmics) на языке программирования R для установления параметров, максимально увеличивающих различия между сравниваемыми группами [15]. Визуализацию данных осуществляли с использованием пакета ggplot2 в среде R [16].

Статистическая обработка данных проводилась с применением программного обеспечения Statistica 12.6. Сравнение между представителями родового состава кишечной микробиоты осуществлялось посредством теста Вилкоксона с поправкой Хольма – Бонферонни. Различия между исследуемыми группами считали достоверно значимыми при p < 0,05. Количественные данные лабораторных исследований описывались с помощью медианы (Me), значений нижнего и верхнего квартилей (Q1–Q3). Сравнение двух групп по количественному признаку, распределение которого отличалось от нормального, проводилось с использованием U-критерия Манна – Уитни. Различия в значении показателя между признаками считались значимыми при p < 0,05. Исследование было выполнено на базе генетической лаборатории «Сербалаб».

РЕЗУЛЬТАТЫ

При оценке структуры пациентов с ЯК на фоне СД 2 по степени тяжести заболевания (в соответствии с индексом активности Мейо) у 55% участников была выявлена легкая (частота диарейного синдрома менее 5 р./сут.), у 32,5% – средняя степень (6–9 р./ сут.), у 12,5% – тяжелая степень (≥ 10 р./ сут.) ЯК. Определение эндоскопической активности при ЯК проводилось с использованием индекса Schroeder. У большинства исследуемых респондентов (у 85% пациентов с ЯК и СД 2 и у 75% больных с ЯК без метаболических нарушений) наблюдалась минимальная степень эндоскопической активности заболевания (рис. 1). Данные о степени тяжести, эндоскопической активности представлены по результатам оценки последней диагностированной атаки ЯК. При анализе протяженности поражения кишечника было установлено, что у пациентов с сочетанием ЯК и СД 2 в 55% случаев имел место проктит, в 35% – левосторонний колит, в 10% – тотальный колит. В свою очередь, у 65% пациентов с ЯК без СД 2 отмечался проктит, у 35% – тотальный колит (рис. 2).

10-1.jpg (71 KB)

Изучение медикаментозной терапии показало, что у 55% пациентов в лечении преобладала 1-я линия назначений (пероральный месалазин в дозе до 4 г/сут., а также его ректальные формы до 4 г/сут.), у 35% – 2-я линия (пероральный месалазин в дозе до 4 г/сут., ректальные формы месалазина до 4 г/сут., будесонид 1 мг/кг/сут. в ректальной форме, азатиоприн 1 мг/кг/сут.), у 10% – 3-я линия (препараты 2-й линии с добавлением инфликсимаба 5 мг/кг/сут.).

Исследованные лабораторные показатели в период клинической ремиссии симптомов ЯК (результаты ОАК, биохимического анализа крови, исследования фекального кальпротектина) у представителей групп отражены в таблице 1 (достоверно значимыми межгрупповые различия считались при p < 0,05). У пациентов с ЯК на фоне СД 2 наблюдалось достоверно значимое увеличение маркеров воспаления, а также показателей углеводного и липидного обменов по сравнению с группой больных без СД 2 (p = 0,043). У 28% пациентов не были достигнуты целевые показатели гликемического профиля, несмотря на регулярный прием сахароснижающих препаратов.

12-1.jpg (304 KB)

При иерархической кластеризации в иссле­дованных образцах микробиома у соматически здоровых пациентов наиболее часто встреча­ющимися были типы бактерий, к компонентам которых относилось более 50% детектированных прочтений: Firmicutes (43 ± 4,5%), Bacteroidota (22 ± 3,0%), Actinobacteroidota (9,5 ± 2,3%), Fusobacteriota (11,6 ± 2,6%), Proteobacteria (8,1 ± 1,4%), Verrucomicrobiota (2 ± 0,3%). Среди них были выявлены образцы с доминирующими родами бактерий Bacteroides (9,1–28,4%), Faecalibacterium (4,7–26%), Roseburia (2,3–7%), Prevotella (4,8–17,6%), Akkermansia (1,7–18,4%), Phascolactobacterium (1,6–3,4%), Streptococcus (0,6–8,4%).

У пациентов с ЯК преобладающими типами микроорганизмов являлись Firmicutes (64,7 ± 5,3%), Bacteroidota (19 ± 2,5%), Actinobacteroidota (14,7 ± 3,3%) и Proteobacteria (10,9 ± 1,2%). Среди родов бактерий доминировали Bifidobacteruim (1,4–31,5%), Faecalibacterium (3,2–14,3%), Anaerostipes (2,1–8,2%), Escherichia (0,7–12,8%), Clostridium (0,1–5,4%), Desulfovibrio (1,6–5,1%), Methanobrevibacter (0,01–6,2%).

В группе пациентов с ЯК и СД 2 преобладающими типами бактерий были Firmicutes (72,5 ± 4,8%), Bacteroidota (10,7 ± 3,5%), Actinobacteroidota (9,8 ± 2,1%), Proteobacteria (7,8 ± 0,2%), Verrucomicrobiota (5,4 ± 0,9), доминирующими родами – Bifidobacteruim (0,8–19,5%), Faecalibacterium (2,1–11,6%), Anaerostipes (1,1–6,4%), Escherichia (0,9–28,4%), Clostridium (0,6–6,8%), Akkermansia (0,4–9,1%), Methanobrevibacter (0,01–4,1%), Dorea (0,5–11,4%), Collinsella (0,9–2,8%) (рис. 3, 4).

11-1.jpg (242 KB)

При анализе индекса Шеннона в исследуемых группах в результате попарного сравнения у сомати­чески здоровых пациентов и пациентов с ЯК статистически значимых различий выявлено не было (p = 0,0445), медиана (Me) индекса равнялась 2,25 ± 0,15 бит/экз. У соматически здоровых паци­ентов величина этого показателя составила 2,64 ± 0,2 бит/экз., у пациентов с ЯК – 2,66 ± 0,12 бит/экз. При оценке индекса биоразнообразия между больными с ЯК и ЯК в сочетании с СД 2 также не было статистически значимых различий (p = 0,0119), медиана (Me) была равна 2,1. Значения данного параметра в этих группах составили 2,66 ± 0,12 и 2,58 ± 0,16 бит/ экз. соответственно. Отсутствие значимых различий в показа­телях индекса биоразнообразия может быть ассоциировано с преобладанием численности условно-патогенных, патогенных и других штаммов, принимающих участие в воспалении слизистой оболочки кишеч­ника, у пациентов как с изолированным ЯК, так и при сочетании этого заболевания с СД 2. В ряде проведенных исследований было выявлено увели­чение численности, активности условно-патогенной флоры в результате дисбиоза [17], а также изменение микробного потенциала, участвующего в развитии метаболических нарушений, что влечет за собой повышенный потенциал синтеза аминокислот [18].

По данным оценки биоразнообразия кишечной микробиоты, у пациентов с ЯК доминирующими типами бактерий являлись Actinobacteriota, Firmicutes, Bacteroidota, Euryarchaeota. Среди представителей Actinobacteriota обращало на себя внимание увеличение у пациентов с ЯК численности микроорганизмов рода Bifidobacterium, среди Firmicutes – родов Dorea (при ЯК и СД 2), Clostridium, Enterococcus, Streptococcus, со снижением содержания основных бутират-производителей (Roseburia, Faecalibacterium). Внутри типа Pseudomonadota отмечалось повышение количества бактерий рода Escherichia, внутри Euryarchaeota – Methanobrevibacter.

В ряде исследований сообщается о снижении пред­ставителей типов Firmicutes, Bacteroidota у лиц с ВЗК [19], однако в нашем исследовании мы не обнаружили эту тенденцию. Аналогичные результаты были получены и при изучении роли дисбиоза в развитии ЯК и болезни Крона, где также обнаружено доминирование типов Firmicutes, Bacteroidota [20].

Нами было выявлено увеличение численности бактерий рода Bifidobacteium среди пациентов с ЯК, ЯК и СД 2, а также отсутствие или крайне низкое содержание Lactobacterium во всех трех группах исследуемых респондентов (табл. 2).

13-1.jpg (248 KB)

При оценке численности условно-патогенных и патогенных бактерий было обнаружено значи­тельное увеличение их представителей (табл. 3) у пациентов с ЯК, с ЯК и СД 2. Выявленное снижение количества некоторых бутират-производителей (Faecalibacterium и Roseburia – в пределах референс­ных значений во всех исследуемых группах, Anaero­stipes – ниже референсных показателей у пациентов с ЯК; табл. 4), наряду с увеличением численности метан-продуцентов (Methanobrevibacter, Methano­sphaera) у пациентов с ЯК (табл. 5), может говорить о наличии воспаления в слизистой оболочке кишечника. Нами установлена положительная статистически значимая корреляционная связь между численностью Methanobrevibacter и уровнем лейкоцитов, скоростью оседания эритроцитов (p = 0,029, р = 0,034 соответственно). Также была обнаружена значимая корреляционная связь между уровнем скорости оседания эритроцитов (СОЭ), С-реактивного белка и численностью Escherichia (p = 0,0432, p = 0,0487 соответственно), количеством Anaerostipes и СОЭ, уровнем лейкоцитов (p = 0,031, p = 0,031). Результаты количественной оценки бактерий, участвующих в углеводном обмене (Akkermansia, Dorea, Collinsella, Lachnospira), приведены в таблице 6. Найдена статистически значимая связь между уровнями Dorea и Akkermansia и содержанием глюкозы в крови (р = 0,05, p = 0,03 соответственно), а также между численностью Lachnospira и показателями гликированного гемоглобина (p = 0,002; табл. 7).

14-1.jpg (190 KB)

15-1.jpg (122 KB)

16-1.jpg (287 KB)

ОБСУЖДЕНИЕ

Достаточное количество в микробиоме основных бутират-производителей (Faecalibacterium, Rosebu­ria, Anaerostipes) ассоциировано со здоровьем кишечника и его защищенностью от воспалительных процессов и метаболических нарушений. Это связано с расщеплением микроорганизмами пектина и дру­гих источников углерода, таких как d-глюкозамин и N-ацетил-d-глюкозамин. Снижение численности данных бактерий у паци­ентов с ЯК и СД 2 может свидетельствовать о разви­тии дисбиоза, что, в свою очередь, может способствовать прогрессированию воспалительного процесса. Известно об ассоциа­ции между ЯК и нарушением баланса флоры, с увеличением численности Firmicutes, Bacte­roidota [21]. Это может быть обусловлено нарушением гомеостатического баланса, приводящим к росту численности патогенной флоры и увеличению степени разнообразия патоген-ассоциированных молекулярных паттернов. При нарушении баланса между кластерами неко­торые кишечные бактерии не способны произ­водить необходимые для оптимального функционирования метаболиты, что влечет усиление симптомов основного заболевания [22].

У пациентов с ЯК увеличено количество бактерий рода Bifidobacterium, образующего лактат и ацетат, которые используют другие бактерии для производства бутирата. Эти бактерии обладают иммуномодулирующими, защитными и противовоспалительными свойствами. Не­смотря на полезные свойства бактерий рода Bifido­bacterium, высокие уровни некоторых его видов могут быть неблагоприятны для слизистого барьера кишечника, так как они колонизируют слой слизи кишечника. Некоторые виды содержат множество ферментов гликозилгидролаз, которые способны в значительной степени разрушать гликаны муцина и нарушать слизистый барьер кишечника, увеличивая проницаемость для патогенных и условно-патогенных бактерий.

Возрастание численности метан-продуцентов (Methanobrevibacter) может быть связано с превращением газообразного водорода в метан. Удаление водорода повышает эффективность микробной ферментации углеводных субстратов в экосистеме кишечника человека. Избыточная продукция метана Methanobrevibacter может влиять на развитие симптомов при ЯК (метеоризма, болевого синдрома) за счет образования газообразного водорода и поддержания хронического воспаления [23]. Также в некоторых исследованиях подтверждена ассоциация между приемом месалазина – одного из основных препаратов в лечении пациентов с ЯК – и высокой концентрацией Methanobrevibacter. Это обусловлено изменением течения заболевания у пациентов с ВЗК за счет нормализации окислительно-восстановительного потенциала, увеличения облигатных анаэробов в кишечнике. В последние годы показано, что изменение численности метан-продуцирующих архей может оказывать влияние на течение ВЗК. В ряде работ выявлена обратная корреляционная связь между бактериальной нагрузкой и воспри­имчивостью к ЯК [24, 25].

Влияние на углеводный обмен бактерий рода Akkermansia, Dorea, Collinsella может быть объясне­но действием их активных метаболитов. Известно, что увеличенное количество представителей рода Collinsella ассоциируется с развитием СД 2, атеросклеротического поражения сосудов, дислипидемии (повышенное содержание данной бактерии сопряжено с повышенным уровнем триглицеридов, а также липопротеидов низкой плотности). Метаболиты и бактериальные компоненты микробиоты кишечника влияют на инициацию и прогрессирование СД 2. В некоторых исследованиях обнаружено увеличение количества бактерий, разрушающих муцин (Akkermansia), а также повышение уровня Dorea, что указывает на аномальные изменения в микробиоте кишечника как в период нарушения толерантности к глюкозе, так и на фоне СД 2 [26, 27]. При этом в некоторых исследованиях отмечена роль увеличения численности Akkermansia в модуляции микробиоты кишечника, что способствует уменьшению воспаления кишечника при приеме сахароснижающих средств (метформина) [6].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Доминирующими типами бактерий во всех исследуемых группах пациентов были Actinobacte­riota, Firmicutes и Bacteroidota. У пациентов с ЯК наблюдалось снижение численности некоторых бутират-продуцирующих групп бактерий (Anaerostipes), а также увеличение метан-продуцирующих (Methanobrevibacter). У лиц с диагностированным СД 2 оказалось повышенным содержание пред­ставителей микробиоты кишечника, влияющих на углеводный обмен (Dorea, Collinsella).

Изменение численной структуры родового состава бактерий, участвующих в углеводном обмене, может быть одним из факторов риска развития СД 2 у пациентов с ЯК. Полученные данные могут указы­вать на диагностическое значение оценки изменений кишечной микробиоты как одной из ведущих предпосылок в развитии указанной коморбидности и послужить основой для усовершенствования лечебных мероприятий у соответствующих пациентов. Требуется дальнейшее изучение роли кишечной микробиоты в патогенезе хронических неинфекционных заболеваний, включая ВЗК.

Список литературы

1. Тикунов А.Ю., Морозов В.В., Швалов А.Н. с соавт. Изменение кишечного микробиома пациентов с язвенным колитом после трансплантации кишечной микробиоты. Вавиловский журнал генетики и селекции. 2020; 24(2): 168–175. (Tikunov A.Y., Morozov V.V., Shvalov A.N. et al. Fecal microbiome change in patients with ulcerative colitis after fecal microbiota transplantation. Vavilovskiy zhurnal genetiki i selektsii = Vavilov Journal of Selection Genetics. 2020; 24(2): 168–175 (In Russ.)).

https://doi.org/10.18699/VJ20.610. EDN: LDIGAJ.

2. Ситкин С.И., Вахитов Т.Я., Ткаченко Е.И. с соавт. Микробиота кишечника при язвенном колите и целиакии. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2017; (1): 8–30. (Sitkin S.I., Vakhitov T.Ya., Tkachenko E.I. et al. Gut microbiota in ulcerative colitis and celiac disease. Eksperimentalnaya i klinicheskaya gastroenterologiya = Experimental and Clinical Gastroenterology. 2017; (1): 8–30 (In Russ.)). EDN: ZFVTVN.

3. Лагутина С.Н., Зуйкова А.А. Особенности биоразнообразия кишечной микробиоты у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника и метаболическими нарушениями (обзор литературы). Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2023; 38(2): 57–63. (Lagutina S.N., Zuikova A.A. Features of intestinal microbiota biodiversity in patients with inflammatory intestinal diseases and metabolic disorders (literature review). Sibirskiy zhurnal klinicheskoy i eksperimentalnoy meditsiny = The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine. 2023; 38(2): 57–63 (In Russ.)).

https://doi.org/10.29001/2073-8552-2023-38-2-57-63. EDN: NERIZC.

4. Купаева В.А., Лоранская И.Д., Болдырева М.Н. Профиль пристеночного и полостного микробиома кишечника пациентов с язвенным колитом. Клиническая фармакология и терапия. 2020; 29(3): 49–54. (Kupaeva V.A., Loranskaya I.D., Boldyreva M.N. Intestinal and fecal microbiome in patients with ulcerative colitis. Klinicheskaya farmakologiya i terapiya = Clinical Pharmacology and Therapy. 2020; 29(3): 49–54 (In Russ.)).

https://doi.org/10.32756/0869-5490-2020-3-49-54. EDN: FYENHN.

5. Ghavami S.B., Rostami E., Sephay A.A. et al. Alterations of the human gut Methanobrevibacter smithii as a biomarker for inflammatory bowel diseases. Microb Pathog. 2018; 117: 285–89.

https://doi.org/10.1016/j.micpath.2018.01.029. PMID: 29477743.

6. Zheng M., Han R., Yuan Y. et al. The role of Akkermansia muciniphila in inflammatory bowel disease: Current knowledge and perspectives. Front Immunol. 2023; 13: 1089600.

https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.1089600. PMID: 36685588. PMCID: PMC9853388.

7. Данилова Н.А., Абдулхаков С.Р., Григорьева Т.В. с соавт. Маркеры дисбиоза у пациентов с язвенным колитом и болезнью Крона. Терапевтический архив. 2019; 91(4): 13–20. (Danilova N.A., Abdulkhakov S.R., Grigoryeva T.V. et al. Markers of dysbiosis in patients with ulcerative colitis and Crohn’s disease. Terapevticheskiy arkhiv = Therapeutic Archive. 2019; 91(4): 13–20 (In Russ.)).

https://doi.org/10.26442/00403660.2019.04.000211. EDN: ZERHUD.

8. Лазебник Л.Б., Конев Ю.В. Новое понимание роли микробиоты в патогенезе метаболического синдрома. Consilium Medicum. 2014; 16(8): 77–82. (Lazebnik L.B., Konev Yu.V. New understanding of the role of microbiota in the pathogenesis of metabolic syndrome. Consilium Medicum. 2014; 16(8): 77–82 (In Russ.)). EDN: SNHVPP.

9. Бикбавова Г.Р., Ливзан М.А. Системное воспаление и кардиоваскулярные риски у больных воспалительными заболеваниями кишечника: что необходимо учитывать? Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2021; (6): 112–120. (BIkbavova G.R., Livzan M.A. Cardiovascular risks in patients with inflammatory bowel disease: What should be taken into account? Eksperimentalnaya i klinicheskaya gastroenterologiya = Experimental and Clinical Gastroenterology. 2021; (6): 112–120 (In Russ.)).

https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-190-6-112-120. EDN: LILMEV.

10. Баранцевич Н.Е., Конради А.О., Баранцевич Е.П. Артериальная гипертензия: роль микробиоты кишечника. Артериальная гипертензия. 2019; 25(5): 460–66. (Barantsevich N.E., Konradi A.O., Barantsevich E.P. Arterial hypertension: The role of gut microbiota. Arterial’naya gipertenziya = Arterial Hypertension. 2019; 25(5): 460–66 (In Russ.)).

https://doi.org/10.18705/1607-419X-2019-25-5-460-466. EDN: DTOCTL.

11. Callahan B.J., McMurdie P.J., Rosen M.J. et al. DADA2: High-resolution sample inference from Illumina amplicon data. Nat Methods. 2016; 13(7): 581–83.

https://doi.org/10.1038/nmeth.3869. PMID: 27214047. PMCID: PMC4927377.

12. Richterich P. Estimation of errors in “raw” DNA sequences: A validation study. Genome Res. 1998; 8(3): 251–59.

https://doi.org/10.1101/gr.8.3.251. PMID: 9521928. PMCID: PMC310698.

13. Qiong W., Garrity M.G., Tiedje M.J., Cole R.J. Naive Bayesian classifier for rapid assignment of rRNA sequences into the new bacterial taxonomy. Appl Environ Microbiol. 2007; 73(16): 5261–67.

https://doi.org/10.1128/AEM.00062-07. PMID: 17586664. PMCID: PMC1950982.

14. Quast C., Pruesse E., Yilmaz P. et al. The SILVA ribosomal RNA gene database project: Improved data processing and web-based tools. Nucleic Acids Res. 2013; 41(Database issue): D590–6.

https://doi.org/10.1093/nar/gks1219. PMID: 23193283. PMCID: PMC3531112.

15. Love C.J., Gubert C., Kodikara S. et al. Microbiota DNA isolation, 16S rRNA amplicon sequencing, and bioinformatic analysis for bacterial microbiome profiling of rodent fecal samples. STAR Protoc. 2022; 3(4): 101772.

https://doi.org/10.1016/j.xpro.2022.101772. PMID: 36313541. PMCID: PMC9597187.

16. Wickham H. ggplot2: Elegant graphics for data analysis. J Stat Softw. 2010; 35(1): 65–88.

ISSN: 2197-5744 (electronic). https://doi.org/10.1007/978-3-319-24277-4.

17. Heinken A., Hertel J., Thiele I. Metabolic modelling reveals broad changes in gut microbial metabolism in inflammatory bowel disease patients with dysbiosis. NPJ Syst Biol Appl. 2021; 7(1): 19.

https://doi.org/10.1038/s41540-021-00178-6. PMID: 33958598. PMCID: PMC8102608.

18. Lupp C., Robertson M.L., Wickham M.E. et al. Host-mediated inflammation disrupts the intestinal microbiota and promotes the overgrowth of Enterobacteriaceae. Cell Host Microbe. 2007; 2(3): 204.

https://doi.org/10.1016/j.chom.2007.08.002. PMID: 18030708.

19. Ohkusa T., Nishikawa Y., Sato N. Gastrointestinal disorders and intestinal bacteria: Advances in research and applications in therapy. Front Med (Lausanne). 2023; 9: 935676.

https://doi.org/10.3389/fmed.2022.935676. PMID: 36825261. PMCID: PMC9941163.

20. Frost F., Storck L.J., Kacprowski T. et al. A structured weight loss program increases gut microbiota phylogenetic diversity and reduces levels of Collinsella in obese type 2 diabetics: A pilot study. PLoS One. 2019; 14(7): e0219489.

21. Ситкин С.И., Вахитов Т.Я., Демьянова Е.В. Микробиом, дисбиоз толстой кишки и воспалительные заболевания кишечника: когда функция важнее таксономии. Альманах клинической медицины. 2018; 46(5): 396–425. (Sitkin S.I., Vakhitov T.Ya., Demyanova E.V. Microbiome, gut dysbiosis and inflammatory bowel disease: That moment when the function is more important than taxonomy. Al’manakh klinicheskoy meditsiny = Almanac of Clinical Medicine. 2018; 46(5): 396–425 (In Russ.)). EDN: YNLTYL.

https://doi.org/10.18786/2072-0505-2018-46-5-396-425.

22. Карпунина Т.И., Галимзянова А.А., Карпунина Н.С., Годовалов А.П. Взаимодействие микробиоты кишечника с организмом хозяина в состоянии эубиоза и дисбиоза. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2023; 214(6): 105–112. (Karpunina T.I., Galimzyanova A.A., Karpunina N.S., Godovalov A.P. “Host-gut microbiota” interactions in a case of eubiosis and dysbiosis. Eksperimentalnaya i klinicheskaya gastroenterologiya = Experimental and Clinical Gastroenterology. 2023; 214(6): 105–112 (In Russ.)).

https://doi.org/10.31146/1682-8658-ecg-214-6-105-112. EDN: JQXMYU.

23. Seo M., Heo J., Yoon J. et al. Methanobrevibacter attenuation via probiotic intervention reduces flatulence in adult human: A non-randomised paired-design clinical trial of efficacy. PLoS One. 2017; 12(9): e0184547.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0184547. PMID: 28937980. PMCID: PMC5609747.

24. Ghavami S.B., Rostami E., Sephay A.A. et al. Alterations of the human gut Methanobrevibacter smithii as a biomarker for inflammatory bowel diseases. Microb Pathog. 2018; 117: 285–89.

https://doi.org/10.1016/j.micpath.2018.01.029. PMID: 29477743.

25. Белоусова Е.А., Абдулганиева Д.И., Алексеева О.П. с соавт. Социально-демографическая характеристика, особенности течения и варианты лечения воспалительных заболеваний кишечника в России. Результаты двух многоцентровых исследований. Альманах клинической медицины. 2018; 46(5): 445–463. (Belousova E.A., Abdulganieva D.I., Alexeeva O.P. et al. Social and demographic characteristics, features of disease course and treatment options of inflammatory bowel disease in Russia: Results of two multicenter studies. Al’manakh klinicheskoy meditsiny = Almanac of Clinical Medicine. 2018; 46(5): 445–463 (In Russ.)).

https://doi.org/10.18786/20720505-2018-46-5-445-463. EDN: YNLTZB.

26. Zhang L., Chu J., Hao W. et al. Gut microbiota and type 2 diabetes mellitus: Association, mechanism, and translational applications. Mediators Inflamm. 2021; 2021: 5110276.

https://doi.org/10.1155/2021/5110276. PMID: 34447287. PMCID: PMC8384524.

27. Maskarinec G., Raquinio P., Kristal B.S. et al. The gut microbiome and type 2 diabetes status in the Multiethnic Cohort. PLoS One. 2021; 16(6): e0250855.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0250855. PMID: 34161346. PMCID: PMC8221508.

Об авторах / Для корреспонденции

Светлана Николаевна Лагутина, ассистент кафедры поликлинической терапии ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России. Адрес: 394036, г. Воронеж,
ул. Студенческая, д. 10.
E-mail: svlagutina97@mail.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-3730-5265
Анна Александровна Пашкова, д. м. н., профессор, заведующая кафедрой поликлинической терапии ФГБОУ ВО «Воронежский государственный медицинский университет им. Н.Н. Бурденко» Минздрава России. Адрес: 394036, г. Воронеж, ул. Студенческая, д. 10.
E-mail: zuikova-therapia@vrngmu.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-5378-4959
Василиса Валерьевна Дудурич, научный сотрудник мегафакультета «Наука о жизни» Университета ИТМО, руководитель отдела метагеномных исследований генетической лаборатории ООО «Сербалаб». Адрес: 199106, г. Санкт-Петербург, ул. Большой проспект Васильевского острова, д. 90.
E-mail: vasilisadudurich@yandex.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6271-5218
Лаврентий Глебович Данилов, руководитель отдела «Биоинформатика» лаборатории ООО «Сербалаб». Адрес: 199106, г. Санкт-Петербург, ул. Большой проспект Васильевского острова, д. 90.
E-mail: lavrentydanilov@gmail.com
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-4479-3095
Екатерина Дмитриевна Ермаченко, руководитель группы разработки лаборатории ПЦР, старший биотехнолог ла­боратории ООО «Сербалаб». Адрес: 199106, г. Санкт-Петербург, ул. Большой проспект Васильевского острова, д. 90.
E-mail: ermachenkoed@mail.ru
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1694-84872

Также по теме