ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Эозинофильный катионный белок и развитие рестеноза стентов с лекарственным покрытием

Габбасов З.А., Козлов С.Г., Сабурова О.С., Имаева А.Э., Босых Е.Г., Лякишев А.А., Зыков К.А., Масенко В.П.

ФГУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития России, 121551 Москва, 3-я Черепковская ул., 15а
Целью исследования явилась оценка активации эозинофилов, а также аллергических и воспалительных реакций организма после имплантации стентов больным с ишемической болезнью сердца (ИБС) с лекарственным покрытием. В исследование были включены 32 больных ИБС со стабильной стенокардией, которым в течение первого года после эндоваскулярной реваскуляризации миокарда с помощью стентов с лекарственным покрытием было проведено повторное коронарографическое исследование, а также 11 здоровых лиц. Уровни катионного белка эозинофилов, иммуноглобулина Е (IgE) и С-реактивного белка (СРБ) в плазме крови пациентов и здоровых лиц определяли иммуноферментным методом. По результатам ангиографического исследования пациенты были разбиты на 2 группы: в 1-ю вошли 19 пациентов, у которых не было выявлено рестеноза внутри стента, во 2-ю — 13 пациентов, у которых отмечено возникновение рестеноза по крайней мере одного стента. Пациенты в этих группах не различались по возрасту, полу, соотношению курящих и некурящих, наличию гиперлипидемии, а также по ангиографическим характеристикам пораженных артерий. Было обнаружено, что у пациентов с рестенозом стентов уровень эозинофильного катионного белка в плазме крови составляет 17,7 (11,2—24,0) нг/мл и достоверно выше, чем у пациентов без рестеноза [9,0 (6,4—12,9) нг/мл; p=0,017]. Уровень IgE крови в этих группах пациентов не различался [58,8 (42,1—164,0) и 52,9 (12,8—76,1) мг/мл соответственно; p=0,40] и не отличался от уровня IgE в крови здоровых добровольцев [32,0 (21,2—80,8) мг/мл; p=0,91]. Уровень СРБ у пациентов с ИБС был выше, чем у здоровых добровольцев [0,36 (0,1—0,75) мг/мл; p=0,0008)], однако достоверно не различался в группах больных с рестенозом и без него [2,38 (0,30—4,08) и 1,63 (0,61—2,47) мг/мл соответственно; p=0,52]. Было обнаружено, что в группе пациентов с низким уровнем эозинофильного катионного белка в крови (<11 нг/мл) рестенозы выявляются в 19% случаев, в то время как в группе пациентов с более высоким (>11 нг в мл) уровнем эозинофильного катионного белка в крови — в 62% (p=0,019). У пациентов, подвергшихся коронарному стентированию и имеющих более высокий уровень эозинофильного катионного белка в крови, отмечалось более частое возникновение рестенозов, чем у  пациентов с низким уровнем этого белка. Полученные данные позволяют предположить наличие связи между возникновением рестеноза и повышенной активностью эозинофильных гранулоцитов у пациентов с ИБС после реваскуляризации.

Ключевые слова

эозинофильный катионный белок
стенты
покрытые сиролимусом
рестеноз

Внедрение в клиническую практику стентов с лекарственным покрытием позволило значительно снизить частоту возникновения рестенозов. При использовании стентов, выделяющих такие вещества, как сиролимус, паклитаксель или эверолимус, частота развития рестеноза составляет 6—8% [1, 2]. Рестеноз стента после его установки в зоне атеросклеротического поражения в среднем развивается через 6—9 мес и является результатом избыточного клеточного ответа на повреждение стенки сосуда [3]. Стенты с лекарственным покрытием влияют на различные этапы восстановления стенки сосуда после повреждения и благодаря выраженному противовоспалительному и антипролиферативному действию снижают риск развития рестеноза [4, 5]. Вместе с тем в ряде случаев стенты с лекарственным покрытием вследствие развития реакции гиперчувствительности могут индуцировать локальное воспаление и даже приводить к поздним тромбозам [6].

Последовательность биологических реакций внутри стенки сосуда, которые происходят в процессе избыточного клеточного ответа, во всех случаях включает проникновение в субэндотелиальное пространство клеток гематогенного происхождения. При разных методах реваскуляризации миокарда могут наблюдаться существенные различия по локальным воспалительным реакциям, которые происходят в стенке сосуда. При баллонной ангиопластике ведущую роль в развитии местной воспалительной реакции играют нейтрофилы [7]. При имплантации непокрытых металлических стентов к развитию воспалительного процесса подключаются клетки моноцитарно-макрофагального ряда, которые начинают играть доминирующую роль в развитии рестеноза стентов [8, 9]. После установки стентов с лекарственным покрытием при иммуногистологических исследованиях тканей из зон рестеноза выявляют не только нейтрофилы и макрофаги, но также Т- и В-лимфоциты [6]. Кроме того, вокруг металлических, особенно полимерных частей стента может обнаруживаться распространенная инфильтрация тканей эозинофилами и гигантскими клетками [10, 11].

Таким образом, заживление стенки сосуда после разных эндоваскулярных процедур может различаться качественными и количественными характеристиками вовлекаемых в этот процесс клеточных элементов. Возможность активного участия эозинофилов в развитии рестеноза стентов с лекарственным покрытием была показана в наших предыдущих исследованиях [12]. В то же время мы считаем, что необходим поиск более специфичных способов выявления пациентов с повышенной реакцией эозинофилов на имплантацию стентов. Одним из таких подходов может являться определение в крови секретируемых эозинофилами катионных белков (большой катионный белок, эозинофильный нейротоксин или эозинофильный катионный белок), уровень которых может служить показателем внутрисосудистой активации эозинофилов [13, 14]. Целью настоящей работы явилась оценка роли секретируемого эозинофильного катионного белка в развитии рестеноза после имплантации больным ишемической болезнью сердца (ИБС) стентов с лекарственным покрытием.

Материал и методы

Под наблюдением находились 32 больных ИБС мужчин и женщин, которым в плановом порядке проводили коронарную ангиопластику с имплантацией стентов с лекарст венным покрытием, которым в течение первого года после эндоваскулярной реваскуляризации миокарда было проведено повторное коронарографическое обследование. Контрольную группу составили 11 здоровых лиц в возрасте 24—30 лет, которые обследованы неинвазивными методами.

Стентирование осуществляли по стандартной методике. Использовали стенты, длина которых составляла 8—33 мм, а диаметр — 2,5—3,5 мм. Все пациенты перед стентированием получали ацетилсалициловую кислоту 100 мг/сут и клопидогрел 75 мг/сут (как минимум за 5 дней до вмешательства), во время вмешательства болюсно им вводили гепарин, решение о назначении ингибиторов гликопротеиновых рецепторов IIb/IIIа принимали индивидуально с учетом противопоказаний к их применению. Всем пациентам на протяжении периода наблюдения проводили терапию ацетилсалициловой кислотой 100 мг/сут, клопидогрелом 75 мг/сут, некоторым больным при соответствующих показаниях назначали антиангинальные или гипотензивные препараты, дозы которых оставались неизменными. Отсутствие ИБС у лиц контрольной группы подтверждено данными электрокардиографии и велоэргометрии.

По прошествии 2, 6 и 12 мес после коронарного стентирования больные были обследованы повторно: врачебный осмотр, общий и биохимический анализы крови, электрокардиография, ультразвуковое исследование сердца, тредмил-тест. При наличии показаний проводили повторное ангиографическое исследование, определение уровня циркулирующих в крови стромальных клеток-предшественников и полиморфно-ядерных лейкоцитов. Рестенозом считали возникновение стеноза в ранее стентированном сегменте (внутри стента и на 5 мм дистальнее или проксимальнее стента), уменьшающего просвет коронарной артерии более чем на 50% от диаметра стента. Проведено сопоставление уровня катионного белка эозинофилов, уровней иммуноглобулина Е (IgE) и С-реактивного белка (СРБ) в крови у пациентов с выявленным рестенозом и у больных без рестеноза установленных сентов.

Критериями исключения из исследования были возраст старше 75 лет, нестабильная стенокардия, инфаркт миокарда в пределах 2 мес; коронарное шунтирование, ангиопластика по поводу рестеноза или окклюзии коронарных артерий, фракция выброса левого желудочка <40%, застойная сердечная недостаточность, уровень креатинина >180 мкмоль/л; количество эозинофилов в крови >700 клеток/мкл, включая случаи вторичной эозинофилии при паразитарной инвазии, аллергической или воспалительной реакции, злокачественные формы эозинофилии.

Кровь для исследования брали из локтевой вены пациентов и здоровых доноров утром натощак после 12-часового голодания и стабилизировали ЭДТА. Образцы крови центрифугировали. Супернатант отбирали в отдельные пробирки и хранили при температуре –38 °С. Уровни катионного белка эозинофилов, IgE и СРБ в плазме крови определяли иммуноферментным методом на анализаторе Immulite-1000 (Сименс, Германия). Для эозинофильного катионного белка диапазон регистрируемых значений составлял 0,5—200 нг/мл с коэффициентом вариации не хуже 4%.

Данные приведены в виде медианы, верхнего и нижнего квартилей. Для проверки статистических гипотез о виде распределения использовали W-тест Шапиро—Уилка. Непараметрические критерии, в том числе двусторонний точный критерий Фишера или U-критерий Манна—Уитни были использованы для сравнения двух групп результатов и ANOVA по Краскелу—Уоллису для сравнения множественных групп. Различия считали статистически значимыми, если нулевая гипотеза отвергалась с более чем 95% достоверностью. Для анализа использовали программу Statistica (StatSoft).

Результаты

Вошедшим в исследование 32 больным были имплантированы 47 стентов, покрытых сиролимусом (в среднем 1,5 стента у одного больного). По результатам повторного ангиографического исследования больные, подвергшиеся коронарному стентированию, были разбиты на 2 группы. В 1-ю группу вошли 19 пациентов, у которых не было выявлено рестеноза. Во 2-ю группу вошли 13 пациентов, у которых отмечено возникновение рестеноза по крайней мере одного стента. Клиническая характеристика больных, вошедших в исследование, представлена в табл. 1. Пациенты в группах не различались по возрасту, полу, соотношению курящих и некурящих, а также наличию гиперлипидемии. У равного числа пациентов имелись постинфарктный кардиосклероз, артериальная гипертония и сахарный диабет. Одинаково часто встречалось поражение 1—3 магистральных коронарных артерий.

Таблица 1. Клиническая характеристика обследованных больных

Клиническая характеристика обследованных больных

Примечание. Данные представлены в виде абсолютного числа пациентов (% от общего числа). Возраст указан как медиана (нижний и верхний квартили). МКА — магистральная коронарная артерия.

Ангиографическая характеристика представлена в табл. 2. У больных обеих групп одинаково часто осуществляли стентирование передней нисходящей, огибающей и правой коронарной артерии, протяженных (>20 мм) стенозов, артерий малого (2,75 мм) диаметра, бифуркационных стенозов, а также одновременное стентирование нескольких коронарных артерий.

Таблица 2. Ангиографическая характеристика больных

Ангиографическая характеристика больных

Примечание. Данные представлены в виде абсолютного числа имплантированных стентов (% от общего числа); n — общее число стентов в группе.

Уровень эозинофильного катионного белка в плазме крови пациентов с рестенозом был статистически значимо выше, чем в крови у пациентов без рестеноза, и составил соответственно 17,7 (11,2—24,0) и 9,0 (6,4—12,9) нг/мл (p=0,017; табл. 3).

Таблица 3. Уровни катионного белка эозинофилов, IgE и СРБ в крови больных ИБС, подвергшихся эндоваскулярной реваскуляризации миокарда

Уровни катионного белка эозинофилов, IgE и СРБ в крови больных ИБС, подвергшихся эндоваскулярной реваскуляризации миокарда

Примечание. Данные представлены в виде медианы (нижний и верхний квартиль). U-тест Манна—Уитни. IgE — иммуноглобулин Е; СРБ — С-реактивный белок; ИБС — ишемическая болезнь сердца.

Уровень IgE в плазме крови у пациентов с рестенозом составлял 58,8 (42,1—164,0) мг/мл и не отличался от такового у пациентов без рестеноза [52,9 (12,8—76,1) мг/мл; p=0,40; см. табл. 3] и от уровня IgE в крови здоровых лиц [32,0 (21,2—80,8) мг/мл; p=0,91].

Уровень СРБ в крови у пациентов с ИБС был достоверно выше, чем у здоровых лиц, — 1,76 (0,61, 2,82) и 0,36 (0,1—0,75) мг/мл соответственно. В группах больных ИБС с рестенозом и без рестеноза уровень СРБ был равен 2,38 (0,30—4,08) и 1,63 (0,61—2,47) мг/мл соответственно. Уровень СРБ в обоих случаях был достоверно выше, чем у здоровых лиц (p=0,0008; рис. 1), без значимых различий между группами (p=0,52; см. табл. 3).

Рисунок 1

По уровню эозинофильного катионного белка в плазме крови пациенты, подвергшиеся коронарному стентированию, были разделены на 2 группы — с уровнем эозинофильного катионного белка в крови ниже медианы (<11 нг/мл; n=16) и выше медианы (>11 нг/мл; n=16) распределения. Между этими группами не выявлено достоверных различий по возрасту, полу, наличию гиперлипидемии, артериальной гипертонии, сахарного диабета и основным ангиографическим характеристикам стенозов. В то же время в группе с более низким уровнем эозинофильного катионного белка крови (ниже уровня медианы распределения) рестенозы выявлены только у 3 (19% случаев) пациентов, в то время как во 2-й группе — у 10 пациентов (63% случаев; p=0,019; рис. 2).

Рисунок 2

Обсуждение

Эозинофильные гранулоциты являются популяцией эффекторных иммунокомпетентных клеток, которые циркулируют в крови несколько часов, а затем мигрируют в ткани. Это клетки, в которых сочетаются как важные для организма защитные функции (при аллергических реакциях или инфекциях), так и повреждающие по отношению к эндотелию сосудов и эндокарду эффекты [14]. При скоплении в крови большого количества эозинофилов (независимо от причины, вызвавшей эозинофилию) в одних случаях развивается эозинофильный васкулит, а в других — пристеночный эндокардит, который представляет реальную опасность для жизни человека. Мощная цитотоксическая активность эозинофилов неразрывно сопутствует их участию в процессах регенерации и восстановления поврежденных тканей. Гранулы эозинофилов содержат уникальные основные белки, к которым относятся большой основной белок, эозинофильный катионный белок, эозинофильная пероксидаза и эозинофильный нейротоксин. Именно эти белки служат причиной повреждений тканей и отчасти органных дисфункций, вызванных эозинофилами при синдромах гиперэозинофилии.

По наличию уникальных катионных белков на поверхности эозинофилов или по их уровню в сыворотке крови можно количественно определять активацию эозинофилов. Мы обнаружили, что после имплантации стентов с лекарственным покрытием повышенный уровень эозинофильного катионного белка в плазме крови сопровождается более частым развитием рестеноза внутри стента. А именно, у пациентов, подвергшихся коронарному стентированию и имеющих более высокий уровень эозинофильного катионного белка в крови, отмечалось более частое возникновение рестенозов в сравнении с пациентами с низким уровнем этого белка. При этом подъем уровня секретируемого катионного эозинофильного белка при рестенозе не связан с развитием IgE-зависимых аллергических реакций. Кроме того, подъем уровня секретируемого катионного эозинофильного белка не коррелирует с интенсивностью воспалительных процессов, которые определялись по уровню СРБ. Полученные данные позволяют предположить наличие непосредственной связи между возникновением рестеноза и повышенной активностью эозинофильных гранулоцитов у пациентов после реваскуляризации.

Эозинофилы вырабатывают, хранят и высвобождают ряд факторов роста (трансформирующий ростовой β-фактор), хемокинов (эотаксин) и интерлейкинов (интерлейкин-1β), которые регулируют ремоделирование и восстановление поврежденных тканей. Некоторые из цитокинов, высвобождаемых эозинофилами, способны не только стимулировать продукцию экстрацеллюлярного матрикса, но и индуцировать фиброгенный фенотип фибробластов. Инфильтрация пораженных тканей эозинофилами и их дегрануляция (преимущественно за счет высвобождения из гранул катионных белков) сопровождается усилением фиброза тканей [15—18]. Эти данные подчеркивают важную роль эозинофилов в развитии фиброза и последующего ремоделирования тканей, особенно при гиперплазии неоинтимы в ответ на повреждение стенки сосуда после установки стентов.

Кроме того, при развитии защитной иммунной реакции эозинофилы могут осществлять двойственную функцию. Первая — уничтожение чужеродного антигена собственными эффекторными механизмами, в результате чего относительно крупные фрагменты инородного тела могут фагоцитироваться другими эффекторными клетками. Вторая функция — инициирование и усиление защитной клеточной иммунной реакции самими эозинофилами. Еще в 60-е годы XX века была впервые показана способность эозинофилов накапливать введенный антиген для его быстрой доставки в лимфатические узлы. Первичная инъекция различных флуоресцентно или радиоактивно меченных антигенов в подушечки лап мышей или морских свинок сначала приводила к накоплению антигена внутри эозинофилов ткани, а затем в течение 1 ч содержащие меченый антиген эозинофилы оказывались внутри локальных лимфатических узлов [19—21]. Позднее было обнаружено, что активированные эозинофилы способны не только фагоцитировать антиген, но и выводить фрагменты антигена на свою поверхность, экспрессировать ко-стимулирующий цитокин IL-1β и осуществлять представление процессированного антигена T-клеткам [22—24].

Таким образом, эозинофилы обладают рядом уникальных свойств, которые могут обусловливать их важную роль в инициации и развитии хронического рестеноза и тромбоза после установки стентов с лекарственными покрытиями. Кроме того, способность эозинофилов инициировать клеточную иммунную реакцию открывает возможности использования их функциональных свойств и характеристик в качестве диагностического инструмента и потенциальной мишени терапевтического подавления воспалительных реакций.

В работе итальянской группы исследователей была показана связь уровня эозинофильного катионного белка с развитием коронарных осложнений (повторная реваскуляризация, инфаркт миокарда или смерть от ИБС) после имплантации стентов с лекарственным покрытием [25]. Эти данные позволяют утверждать, что после установки пациентам стентов с лекарственным покрытием эозинофилы могут являться важнейшими участниками развития не только рестеноза, но и отдаленного тромбоза.

Результаты нашего исследования показали возможную связь внутрисосудистой активации эозинофилов (уровня эозинофильного катионного белка в крови) с развитием рестеноза после имплантации стентов с лекарственным покрытием.

Заключение

У пациентов, подвергшихся коронарному стентированию и имеющих более высокий уровень эозинофильного катионного белка в крови, отмечалось более частое возникновение рестенозов, чем у пациентов с низким уровнем этого белка. Полученные данные позволяют предположить наличие связи между возникновением рестеноза и повышенной активностью эозинофильных гранулоцитов у больных ишемической болезнью сердца после реваскуляризации.

Работа была проведена и частично финансировалась Правительством Москвы в рамках Программы «Новые методы в профилактике, диагностике и лечении атеросклероза, атеротромбозов и их осложнений» (Госконтракт 8/3-230-н-10 от 27.05.2010).

Список литературы

1. Sousa J.E., Costa M.A., Abizaid A. et al. Four-year angiographic and intravascular ultrasound follow-up of patients treated with sirolimuseluting stents. Circulation 2005;111:2326—2329.

2. Mitra A.K., Agrawal D.K. In stent restenosis: bane of the stent era. J Clin Pathol 2006;59:232—239.

3. Costa M.A., Simon D.I. Molecular basis of restenosis and drug-eluting stents. Circulation 2005;111:2257—2273.

4. Morris R.E. Mechanisms of action of new immunosuppressive drugs. Ther Drug Monitor 1995;17:564—569.

5. Marx S.O., Marx A.R. Bench to bedside: the development of rapamycin and its application to stent restenosis. Circulation 2001;104:852—825.

6. Virmani R., Guagliumi G., Farb A. et al. Localized hypersensitivity and late coronary thrombosis secondary to a sirolimus-eluting stent: should we be cautious? Circulation 2004;109:701—705.

7. Welt F.G., Edelman E.R., Simon D.I., Rogers C. Neutrophil, not macrophage, infiltration precedes neointimal thickening in ballooninjured arteries. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2000;20:2553—2558.

8. Horvath C., Welt F.G., Nedelman M. et al. Targeting CCR2 or CD18 inhibits experimental in-stent restenosis in primates: inhibitory potential depends on type of injury and leukocytes targeted. Circ Res 2002;90:488—494.

9. Kawamoto R., Yamashita A., Nishihira K. et al. Different inflammatory response and oxidative stress in neointimal hyperplasia after balloon angioplasty and stent implantation in cholesterol-fed rabbits. Pathol Res Pract 2006;202:447—456.

10. Kawano H., Koide Y., Baba T. et al. Granulation tissue with eosinophil infiltration in the restenotic lesion after coronary stent implantation. Circ J 2004;68:722—723.

11. Nebeker J.R., Virmani R., Bennett C.L. et al. Hypersensitivity cases associated with drug-eluting coronary stents: a review of available cases from the Research on Adverse Drug Events and Reports (RADAR) project. J Am Coll Cardiol 2006;47:175—181.

12. Gabbasov Z.A., Kozlov S.G., Ljakishev A.A. et al. Polymorphonuclear blood leukocytes and restenosis after intracoronary implantation of drug eluting stents. Can J APh ysiol Pharmacol 2009;87:130—136.

13. Гриншпун Л.Д. Эозинофилы и эозинофилии (научный обзор). М. 1982;65.

14. Френкель М.А. Эозинофилы. В кн.: Клиническая онкогематология. Под ред. М.А. Волковой. М: Медицина 2007.

15. Padigel U.M., Lee J.J., Nolan T.J. et al. Eosinophils can function as antigen-presenting cells to induce primary and secondary immune responses to Strongyloides stercoralis. Infect Immun 2006;74:3232—3238.

16. Litt M. Studies in experimental eosinophilia VI. Uptake of immunecomplexes by eosinophils. J Cell Biol 1964;23:355—361.

17. Roberts A.N. Cellular localization and quantitation of tritated antigen in mouse lymph nodes during early primary immune response. Am J Pathol 1966;49:889—909.

18. Litt M. Studies in experimental eosinophilia VII. Eosinophils in lymph nodes during the first 24 hr following primary antigenic stimulation. J Immunol 1964;93:807—813.

19. Weller P.F., Rand T.H., Barrett T. et al. Accessory cell function of human eosinophils. HLA-DRdependent,MHC-restricted antigen-presentation and IL-1 expression. J Immunol 1993;150:2554—2562.

20. Herbert D.R., Lee J.J., Lee N.A. et al. Role of IL-5 in innate and adaptive immunity to larval Strongyloides stercoralis in mice. J Immunol 2000;165:4544—4551.

21. Noguchi H., Kephart G.M., Colby T.V., Gleich G.J. Tissue eosinophilia and eosinophil degranulation in syndromes associated with fibrosis. Am J Pathol 1992;140:521—528.

22. Pincus S.H., Ramesh K.S., Wyler D.J. Eosinophils stimulate fibroblast DNA synthesis. Blood 1987;70:572—574.

23. Gomes I., Mathur S.K., Espenshade B.M. et al. Eosinophil-fibroblast interactions induce fibroblast IL-6 secretion and extracellular matrix gene expression: implications in fibrogenesis. J Allergy Clin Immunol 2005;116:796—804.

24. Levi-Schaffer F., Garbuzenko E., Rubin A. et al. Human eosinophils regulate human lung- and skin-derived fibroblast properties in vitro: a role for transforming growth factor beta (TGF-beta). Proc Natl Acad Sci USA 1999;96:9660—9665.

25. Niccoli G., Schiavino D., Belloni F. et al. Pre-intervention eosinophil cationic protein serum levels predict clinical outcomes following implantation of drug-eluting stents. Eur Heart J 2009;30:1340—1347.

Об авторах / Для корреспонденции

Российский кардиологический научно-производственный комплекс, Лаборатория стволовых клеток человека Института экспериментальной кардиологии, Москва
Габбасов З.А. - д.биол.н., вед.н.с.
Сабурова О.С. - к.биол.н., ст.н.с.
Институт клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова ФГУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздравсоцразвития России, Москва
Отдел атеросклероза
Козлов С.Г. - д.м.н., ст.н.с.
Имаева А.Э. - аспирант.
Лякишев А.А. - к.м.н., вед.н.с.
Босых Е.Г. - врач-лаборант лаборатории клинической иммунологии.
Зыков К.А. - д.м.н., руков. лаборатории иммунопатологии сердечно-сосудистых заболеваний.
Масенко В.П. - д.м.н., руков. отдела нейрогуморальных и иммунологических исследований.

Также по теме