ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Вариант G319S гена HNF1A при семейной форме сахарного диабета

Д.Е. Иванощук, С.В. Михайлова, А.К. Овсянникова, Е.В. Шахтшнейдер, И.В. Друк, О.Д. Рымар, М.И. Воевода

1) ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», г. Новосибирск; 2) Научно-исследовательский институт терапии и профилактической медицины – филиал ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», г. Новосибирск; 3) ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России; 4) ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины», г. Новосибирск
Аннотация. При дифференциальной диагностике типа сахарного диабета (СД) наибольшую сложность представляют пациенты с дебютом заболевания в молодом возрасте, так как в этой возрастной группе может манифестировать СД 1-го типа, СД 2-го типа и моногенные формы СД (в том числе MODY-диабет).
Цель работы – показать возможности молекулярно-генетического исследования для MODY-HNF1A и СД 2-го типа с ранним началом на примере клинического случая диабета у пробанда с отягощенным семейным анамнезом.
Материал и методы. Пробанду и матери пробанда было выполнено таргетное секвенирование ДНК на платформе Illumina MiSeq NGS System (Illumina Inc., San Diego, CA, USA). Таргетная панель включала кодирующие участки и прилегающие сайты сплайсинга MODY-ассоциированных генов: HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8, и APPL1.
Результаты. Обнаружен ранее описанный гетерозиготный вариант rs137853240, который локализован в 3’-конце экзона 4 гена HNF1A рядом с высококонсервативным донорным сайтом сплайсинга и приводит к изменению набора кодируемых этим геном транскриптов. Ранее было показано, что данная замена ассоциирована с ранним началом СД 2-го типа в изолированной популяции коренного населения Канады (популяция Оджи-Кри), поэтому мы оценили ее распространенность в выборках коряков, чукчей и эскимосов Канады. Дополнительно были проанализированы популяционные выборки населения Западной Сибири и пациенты с СД 2-го типа. Во всех исследованных выборках не было обнаружено носителей c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240). Принимая во внимание описанные фенотипические особенности лиц-носителей варианта Gly319Ser, мы предполагаем, что этот вариант ассоциирован с развитием MODY.
Заключение. Представленный случай демонстрирует возможности молекулярно-генетического исследования моногенных форм СД, в частности, связанного с анализом гена HNF1A. Персонализированный подход к диагностике и лечению особенно важен при выявлении неклассического течения СД у лиц молодого возраста.

Ключевые слова

генетика человека
MODY-диабет
сахарный диабет 2-го типа
популяции
секвенирование нового поколения
ген HNF1A
rs137853240

ВВЕДЕНИЕ

Сахарный диабет (СД) – группа метаболических (обменных) заболеваний, характеризующихся хронической гипергликемией, которая является результатом нарушения секреции инсулина, действия инсулина или обоих этих факторов [1]. СД 1-го и 2-го типа наиболее распространены среди всех форм СД в мире и относятся к мультифакториальным заболеваниям, причиной развития которых является совокупность наследственных и средовых факторов. Редкие формы диабета, развивающиеся вследствие дефекта в одном гене, составляют менее 5% случаев от всех форм СД [2]. Менделевские подтипы этих форм СД включают диабет взрослого типа у молодых, или MODY (Maturity-Onset Diabetes of the Young), неонатальный диабет, а также синдромальные формы. Трудность их диагностики состоит в том, что многие из этих подтипов имеют клинические признаки, сходные с СД 1-го и 2-го типа [3]. Пациентам с моногенными формами СД требуется персонализированный подход к подбору оптимальной терапии [4].

Верифицировать у пациента моногенную форму СД можно только при проведении молекулярно-генетического исследования. В случае его отсутствия до 80% случаев моногенного диабета неверно диагностируются или остаются нераспознанными [5]. Самой известной и хорошо изученной формой моногенного диабета является MODY. Эта гетерогенная группа заболеваний с аутосомно-доминантным типом наследования обусловлена структурными нарушениями в генах, приводящими к дисфункции бета-клеток поджелудочной железы. В настоящее время известно 14 типов MODY, которые классифицируются по мутациям генов, определяющих клинический фенотип: HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8 и APPL1 [6]. 70% случаев MODY ассоциированы с мутациями в генах GCK и HNF1A [7].

У пациентов с MODY, обусловленным носительством мутаций в гене GCK, умеренная гликемия натощак проявляется уже с рождения, обычно протекает бессимптомно и чаще всего не требует назначения сахароснижаюшей терапии. Пациенты с MODY-GCK могут корректировать уровень гликемии диетой и умеренными физическими нагрузками [8].

Гипергликемия при MODY-HNF1A диагностируется в возрасте от 21 до 26 лет, семейный анамнез у носителей, как правило, отягощен по СД и сердечно-сосудистым заболеваниям в нескольких поколениях. Натощак у таких пациентов наблюдается нормогликемия, но при выполнении орального глюкозотолерантного теста фиксируется прирост гликемии. Также для MODY-HNF1A характерна глюкозурия. Заболевание при этом носит прогрессирующий характер с высоким риском развития макрососудистых осложнений. При лечении у пациентов сохраняется высокая чувствительность к препаратам сульфонилмочевины [9]. Ген HNF1A расположен на длинном плече 12-й хромосомы (12q24.31) и состоит из 10 экзонов (https://www.uniprot.org). Белок, кодируемый этим геном, состоит из 631 аминокислотного остатка, его структура консервативна у позвоночных животных (при сравнении человека и крысы идентичность аминокислотного состава составляет 97%) [10]. В своей структуре белок HNF1A содержит N-концевой димерезационный домен (первые 32 аминокислоты), ДНК-связываюший высококонсервативный домен (91–279 аминокислот), внутри которого находится неконсервативный участок (со 182 по 200 аминокислоту), разделяющий специфический POUS гомеодомен (91–181 аминокислоты) и POUH-гомеодомен (203–279 аминокислоты), и С-концевой трансактивационный домен (282–631 аминокислот) [11, 12]. Альтернативный сплайсинг обеспечивает образование трех изоформ белка, которые различаются аминокислотным составом и уровнями экспрессии [13]. Исследования на мышиных моделях показали, что гетерозиготные нокауты по гену HNF1A имеют нормальный фенотип, тогда как у человека наличие гетерозиготного варианта приводит к развитию СД [14, 15]. Основной транскрипт кодируется на участке с 1-го по 10-й экзон и экспрессируется в период эмбрионального развития в поджелудочной железе, а в зрелом возрасте в тканях почек и печени. Более короткие изоформы, кодируемые экзонами 1–7 и 1–6, выявлены преимущественно в зрелых тканях поджелудочной железы [16]. Известно более 500 различных вариантов в гене HNF1A, которые приводят к развитию СД. Описаны как однонуклеотидные замены в различных его частях, так и структурные перестройки гена HNF1A (http://www.hgmd.cf.ac.uk/ac/search.php). Показана высокая степень пенетрантности у носителей гетерозиготных мутаций гена HNF1A; к 25 годам развитие диабета наблюдается у 63%, к 35 годам – у 78 %, а к 55 годам – у 95,5% из них [17]. Диагноз СД 2-го типа с ранним началом нередко является ошибочным у носителей мутаций в этом гене, так как раннее начало диабета (25–45 лет), наличие семейной истории и отсутствие ожирения не относятся к специфическим критериям и не позволяют проводить дифференциальный диагноз [18].

Целью данной работы было показать возможности молекулярно-генетического исследования для MODY-HNF1A и СД 2-го типа с ранним началом на примере клинического случая диабета у пробанда с отягощенным семейным анамнезом.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Протокол исследования был одобрен этическим комитетом НИИ терапии и профилактической медицины – филиала Института цитологии и генетики Сибирского отделения РАН (№ 7 от 22.06.2008). Письменное информированное согласие на обследование и участие в исследовании было получено от каждого пациента.

Выполнен забор образцов венозной крови у пробанда и ее матери для молекулярно-генетического исследования. Геномную ДНК выделяли из лейкоцитов венозной крови методом фенол-хлороформной экстракции [19].

Проведено таргетное высокопроизводительное секвенирование. В таргетную панель были включены кодирующие участки и прилегающие сайты сплайсинга MODY-ассоциированных генов, в том числе гена HNF1a. Для приготовления библиотек использовали набор KAPA HyperPlus Kit (Roche, Швейцария). Качество анализируемой ДНК и подготовленных библиотек оценивали с помощью системы капиллярного электрофореза Agilent 2100 Bioanalyzer (Agilent Technologies Inc., США). Анализ полностью подготовленной библиотеки проводился на платформе Illumina MiSeq (Illumina, США). Полученные данные выравнивали на референсный геном человека (GRCh37) с использованием программного обеспечения Burrow–Wheeler Alignment tool (BWA v.0.7.17) (http://bio-bwa.sourceforge.net). Последующий биоинформационный анализ включал удаление ПЦР-дубликатов, поиск однонуклео­тидных вариантов с помощью Genome Analysis Toolkit v.3.3 (https://gatk.broadinstitute.org/hc/en-us) и их аннотацию с использованием программы ANNOVAR (https://annovar.openbioinformatics.org/en/latest). Также были использованы данные баз gnomAD (https://gnomad.broadinstitute.org), ClinVar (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar), HGMD (база данных мутаций генов человека, http://www.hgmd.cf.ac.uk/ac/index.php) и учтены литературные данные. Селекцию редких и новых вариантов проводили в MODY-ассоциированных генах (HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8 и APPL1). Ранее нами было опубликовано подробное описание проведения биоинформационного анализа [20].

Обнаруженная замена rs137853240 у пробанда и ее матери была подтверждена секвенированием по Сэнгеру фрагмента ДНК, содержащего экзон 4 гена HNF1a с использованием прямого и обратного праймеров: 5’-GTCACACAGCAGACCTGGCA-3’, 5’-GGCATGAATGGAATGGAACC-3’. Дизайн олигонуклеотидов для исследованного варианта был выполнен в программе Primer-Blast (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast). Секвенирующая реакция была выполнена на приборе ABI 3500 (Thermo Fisher Scientific, США) с помощью набора BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit (Thermo Fisher Scientific, США). Последовательности были проанализированы в программе Vector NTI® Advance (Thermo Fisher Scientific, США). Версия hg19 человеческого генома служила референсной последовательностью для выравнивания.

На втором этапе исследования выполнен анализ распространенности аллелей и генотипов rs137853240 в выборках из популяции европеоидного населения Западной Сибири (376 человек, средний возраст 55,9±6,8 лет, доля мужчин 45,2%) и этнических групп, включающих чукчей (224 человека), коряков (56 человек) и эскимосов Канады (20 человек), а также в клинической группе пациентов с СД 2-го типа (169 человек, средний возраст 59,0±6,7 лет, доля мужчин 45%, уровень глюкозы больше 11,1 ммоль/л), обследованных в рамках проекта HAPIEE (Новосибирск) [21] с использованием технологии TaqMan. Амплификацию геномной ДНК, которая содержала изучаемый вариант, проводили методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ) на приборе StepOnePlus Real-Time PCR System (Thermo Fisher Scientific, США). Подбор фланкирующих олигонуклеотидов и TaqMan-зондов осуществляли с помощью программы Vector NTI Advance 11.0 (Thermo Fisher Scientific, США). Были подобраны следующие фланкирующие олигонуклеотиды и комплементарные зонды, меченные красителями FAM, HEX и гасители флуоресценции BHQ1и BHQ2 соответственно: rs137853240-F-5’-CTGCCCGCTCACAGCTC- 3’, rs137853240-R-5’-CTGCCCGCTCACAGCTC-3’, rs137853240-5’-[FAM] TCCCCCAGTAAGGTCCACGGTAAGT [BHQ1]-3’, rs137853240-5’-[HEX] TCCCCCA­GTAAGGTCCACAGTAAGT [BHQ2]-3’. Реакцию ПЦР-РВ проводили в объеме 25 мкл с использованием 15 нг ДНК, по 100 нМ прямого и обратного фланкирующих праймеров, 50 нМ каждого из двух зондов и мастер микса БиоМастер HS-qPCR Hi-ROX (2×) (Биолабмикс, Россия) согласно протоколу производителя. Режим амплификации начинался со 120 с при 60 °C, затем 36 циклов: 95 °C – 30 с, 66 °C – 30 с, 72 °C – 30 с. Завершалась программа амплификации при 600 °C в течение 120 с.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Клинический фенотип MODY был выявлен у пробанда и ее матери при обследовании у эндокринолога [22]. Пациентка 26 лет обратилась к эндокринологу, в возрасте 15 лет у нее было диагностировано нарушение толерантности к глюкозе. В 16 лет появились жалобы на общую слабость, уровень глюкозы плазмы натощак составлял 9,1 ммоль/л, антитела к глутаматдекарбоксилазе были отрицательными, выявлена глюкозурия (до 3 г/л в утренней порции мочи), НbА1с – 8,0%. У пациентки определяется отягощенный наследственный анамнез по гипергликемии.

У матери пробанда был диагностирован СД 2-го типа в возрасте 39 лет (в настоящий момент ее возраст 53 года, индекс массы тела 38,3 кг/м2). Принимает пероральную сахароснижающую терапию (метформин, гликлазид и эмпаглифлозин). Определяется диабетическая дистальная полинейропатия, ожирение 2-й степени, артериальная гипертензия, неалкогольная жировая болезнь печени.

У бабушки пробанда по линии матери СД был впервые выявлен в возрасте 58 лет, для лечения применялся метформин. У дедушки по линии отца в возрасте 60 лет был диагностирован сахарный диабет 2-го типа, но у отца пробанда на момент обследования наблюдалась нормогликемия (рис., фра­гмент А). При молекулярно-генетическом исследовании у пробанда и ее матери была выявлена гетерозиготная миссенс-замена c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) экзона 4 гена HNF1А (рис., фра­гмент Б). Выявленный вариант описан в базе данных ClinVar, упоминается в базе данных gnomAD и описан в литературе [23] в популяции Оджи-кри. Эта этническая группа является изолированной популяцией канадских эскимосов в заповеднике Сэнди-Лейк в Северном Онтарио [24], поэтому в дальнейший анализ популяционной распространенности редкого аллеля мы включили этнические группы коряков, чукчей и эскимосов Канады.

152-1.jpg (37 KB)

При оценке распространенности вариантов по rs137853240 мы не обнаружили носителей c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) в выборках из популяции европеоидного населения Западной Сибири и этнических групп чукчей, коряков и эскимосов Канады, а также в клинической группе пациентов с СД 2-го типа.

Полученные нами результаты и данные предыдущих исследований позволяют предположить, что вариант c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) экзона 4 гена HNF1А служит причиной развития MODY-HNF1A у пробанда и ее матери.

ОБСУЖДЕНИЕ

Представленный случай демонстрирует особенности течения СД, который связан с мутацией в гене HNF1A, кодирующим ядерный фактор гепатоцитов-1. Как известно, у пациентов молодого возраста с нарушением углеводного обмена может быть верифицирован СД 1-го типа, СД 2-го типа или более редкие моногенные формы диабета. Такие характеристики исследованного пациента, как начало СД в молодом возрасте, сохраненная функция бета-клеток при стаже заболевания более 10 лет (уровень С-пептида находился в пределах референсных значений и составлял 469 н/мл), отсутствие ожирения, выявление дислипидемии в молодом возрасте (триглицериды – 3,1 ммоль/л, общий холестерин – 7 ммоль/л), а также отягощенный наследственный анамнез по гипергликемии, позволили предположить наличие MODY-HNF1A. Молекулярно-генетическое исследование выявило мутацию Gly319Ser в гене HNF1A у двух членов семьи с СД. Ядерный фактор гепатоцитов-1 гомео­бокс А принадлежит к группе транскрипицонных факторов, которые играют важную роль в формировании и дифференцировке различных органов и тканей (печень, почки, поджелудочная железа) посредством регуляции экспрессии тканеспецифических генов в период эмбрионального развития и в течение жизни [25].

Обнаруженный нами вариант c.955G>A, p.Gly319Ser был впервые выявлен у коренного населения Канады с СД 2-го типа, в популяции Оджи-Кри [23] и не был найден ни у одной другой исследованной ранее этнической группы [23]. Также он не был обнаружен нами в популяционной выборке г. Новосибирска, в выборке пациентов с СД, в популяционных выборках коряков, чукчей и канадских эскимосов. Носительство варианта Gly319Ser в популяции Оджи-Кри коррелировало с предрасположенностью к СД 2-го типа: оно наблюдалось у 40% пациентов с этой формой заболевания [23]. В популяции Оджи-кри на фоне увеличения потребления пищевых жиров и снижения физической активности произошло многократное увеличение частоты случаев развития СД 2-го типа. В ходе поиска генетического фактора, предрасполагающего к заболеванию, идентифицирован вариант Gly319Ser гена HNF1A. Частота аллеля Ser319 составляла 0,190 (21/110) у лиц с диабетом и 0,063 (22/350) у лиц без диабета [26]. Высокая частота варианта в популяции может быть обусловлена эффектом основателя – локальным повышением частоты редкого аллеля в результате сегрегации ограниченной группы индивидуумов. Среди лиц с диагнозом СД 2-го типа носители Gly319Ser, по сравнению с остальными пациентам, демонстрировали фенотип, соответствующий дефекту секреции инсулина с более ранним началом, меньшей массой тела более низким уровнем инсулина [23].

Описанная мутация расположена в трансактивационном домене белка HNF1A, высококонсервативного донорного сайта сплайсинга в аминокислотной позиции 391 и входит во все 3 описанные ранее изоформы белка. Но, судя по всему, патогенный эффект этой мутации связан не с изменением структуры белка, а с изменением набора кодируемых этим геном мРНК. Определяющая ее rs137853240 находится в 3 нуклеотиде от 3’ границы экзона 4 этого гена. Функциональные исследования на клеточных линиях показали, что rs137853240 приводит к образованию двух аномальных укороченных транскриптов и существенному снижению количества полноразмерного транскрипта гена HNF1A. Существует гипотеза, что такой дисбаланс может приводить к снижению общих уровней транскрипции и быть причиной возникновения СД [27]. Принимая во внимание описанные фенотипические особенности лиц-носителей варианта Gly319Ser, мы предполагаем, что этот вариант ассоциирован с развитием MODY.

В настоящем исследовании продемонстрирован пример успешной диагностики СД с нетипичным течением – MODY-HNF1A – путем объединения клинических критериев и метода высокотехнологического секвенирования ДНК. Методы секвенирования нового поколения позволяют более эффективно и экономически выгодно диагностировать типы MODY [28]. Применение метода высокотехнологичного секвенирования также перспективно при оценке возможных причин развития фенотипа MODY в случае отсутствия причинных мутаций в традиционных MODY-ассоциированных генах для обнаружения потенциально патогенных мутаций в других генах.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Представленный случай показывает перспективность молекулярно-генетического исследования пациентов с семейными формами СД, в частности, связанного с анализом гена HNF1A. Персонализированный подход к диагностике и лечению особенно важен при выявлении неклассического течения СД у лиц молодого возраста.

Список литературы

  1. Дедов И.И., Шестакова М.В., Майоров А.Ю. с соавт. Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом. Под ред. И.И. Дедова, М.В. Шестаковой, А.Ю. Майорова. 9-й выпуск. Сахарный диабет. 2019; S1–1: 1–144.
  2. Yang Y., Chan L. Monogenic diabetes: What it teaches us on the common forms of type 1 and type 2 diabetes. Endocr Rev. 2016; 37(3): 190–222. doi: 10.1210/er.2015-1116.
  3. Lachance C.H. Practical aspects of monogenic diabetes: A clinical point of view. Can J Diabetes. 2016; 40(5): 368–75. doi: 10.1016/j.jcjd.2015.11.004.
  4. Mohan V., Radha V. Precision diabetes is slowly becoming a reality. Med Princ Pract. 2019; 28(1): 1–9. doi: 10.1159/000497241.
  5. Shields B.M., Hicks S., Shepherd M.H. et al. Maturity-onset diabetes of the young (MODY): How many cases are we missing? Diabetologia. 2010; 53(12): 2504–08. doi: 10.1007/s00125-010-1799-4.
  6. Firdous P., Nissar K., Ali S. et al. Genetic testing of maturity-onset diabetes of the young current status and future perspectives. Front Endocrinol (Lausanne). 2018; 9: 253. doi: 10.3389/fendo.2018.00253.
  7. Ellard S., Bellanne-Chantelot C., Hattersley A.T. European Molecular Genetics Quality Network (EMQN) MODY group. Best practice guidelines for the molecular genetic diagnosis of maturity-onset diabetes of the young. Diabetologia. 2008; 51(4): 546–53. doi: 10.1007/s00125-008-0942-y.
  8. Stride A., Shields B., Gill-Carey O. et al. Cross-sectional and longitudinal studies suggest pharmacological treatment used in patients with glucokinase mutations does not alter glycaemia. Diabetologia. 2014; 57(1): 54–56. doi: 10.1007/s00125-013-3075-x.
  9. Воевода М.И., Рымар О.Д., Шатшнейдер Е.А. с соавт. Диагностика и ведение пациентов с диабетом MODY: методические рекомендации для врачей. Н.: Издательство СО РАН. 2020; 48 с.
  10. Bach I., Mattei M.G., Cereghini S., Yaniv M. Two members of an HNF1 homeoprotein family are expressed in human liver. Nucleic Acids Res. 1991; 19(13): 3553–59. doi: 10.1093/nar/19.13.3553.
  11. Chi Y.I., Frantz J.D., Oh B.C. et al. Diabetes mutations delineate an atypical POU domain in HNF-1alpha. Mol Cell. 2002; 10(5): 1129–37. doi: 10.1016/s1097-2765(02)00704-9.
  12. Vaxillaire M., Abderrahmani A., Boutin P. et al. Anatomy of a homeoprotein revealed by the analysis of human MODY3 mutations. J Biol Chem. 1999; 274(50): 35639–46. doi: 10.1074/jbc.274.50.35639.
  13. Bach I., Yaniv M. More potent transcriptional activators or a transdominant inhibitor of the HNF1 homeoprotein family are generated by alternative RNA processing. EMBO J. 1993; 12(11): 4229–42. Erratum in: EMBO J 1994; 13(2): 492.
  14. Pontoglio M., Sreenan S., Roe M. et al. Defective insulin secretion in hepatocyte nuclear factor 1alpha-deficient mice. J Clin Invest. 1998; 101(10): 2215–22. doi: 10.1172/JCI2548.
  15. Pontoglio M. Hepatocyte nuclear factor 1, a transcription factor at the crossroads of glucose homeostasis. J Am Soc Nephrol. 2000; 11 Suppl 16: S140–43.
  16. Harries L.W., Ellard S., Stride A. et al. Isomers of the TCF1 gene encoding hepatocyte nuclear factor-1 alpha show differential expression in the pancreas and define the relationship between mutation position and clinical phenotype in monogenic diabetes. Hum Mol Genet. 2006; 15(14): 2216–24. doi: 10.1093/hmg/ddl147.
  17. Shepherd M., Ellis I., Ahmad A.M. et al. Predictive genetic testing in maturity-onset diabetes of the young (MODY). Diabet Med. 2001; 18(5): 417–21. doi: 10.1046/j.1464-5491.2001.00447.x.
  18. Owen K.R., Shepherd M., Stride A. et al. Heterogeneity in young adult onset diabetes: Aetiology alters clinical characteristics. Diabet Med. 2002; 19(9): 758–61. doi: 10.1046/j.1464-5491.2002.00766.x.
  19. Sambrook J., Russell D.W. Purification of nucleic acids by extraction with phenol: Chloroform. CSH Protoc. 2006; 2006(1): pdb.prot4455. doi: 10.1101/pdb.prot4455.
  20. Ivanoshchuk D.E., Shakhtshneider E.V., Rymar O.D. et al. The mutation spectrum of maturity onset diabetes of the young (MODY)-associated genes among Western Siberia patients. J Pers Med. 2021; 11(1): 57. doi: 10.3390/jpm11010057.
  21. Pajak A., Szafraniec K., Kubinova R. et al. Binge drinking and blood pressure: cross-sectional results of the HAPIEE study. PLoS One. 2013; 8(6): e65856. doi: 10.1371/journal.pone.0065856.
  22. Баранова А. А., Друк И. В., Овсянникова А. К. Описание клинических случаев семейной формы сахарного диабета HNF1A-MODY. Лечащий врач. 2020; 12: 35–40.
  23. Hegele R.A., Cao H., Harris S.B. et al. The hepatic nuclear factor-1 alpha G319S variant is associated with early-onset type 2 diabetes in Canadian Oji-Cree. J Clin Endocrinol Metab. 1999; 84(3): 1077–82. doi: 10.1210/jcem.84.3.5528.
  24. Harris S.B., Gittelsohn J., Hanley A. et al. The prevalence of NIDDM and associated risk factors in native Canadians. Diabetes Care. 1997; 20(2): 185–87. doi: 10.2337/diacare.20.2.185.
  25. Lau H.H., Ng N.H.J., Loo L.S.W. et al. The molecular functions of hepatocyte nuclear factors – in and beyond the liver. J Hepatol. 2018; 68(5): 1033–48. doi: 10.1016/j.jhep.2017.11.026.
  26. Hegele R.A., Cao H., Harris S.B. et al. The private hepatocyte nuclear factor-1alpha G319S variant is associated with plasma lipoprotein variation in Canadian Oji-Cree. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2000; 20(1): 217–22. doi: 10.1161/01.atv.20.1.217.
  27. Harries L.W., Sloman M.J., Sellers E.A. et al. Diabetes susceptibility in the Canadian Oji-Cree population is moderated by abnormal mRNA processing of HNF1A G319S transcripts. Diabetes. 2008; 57(7): 1978–82. doi: 10.2337/db07-1663.
  28. GoodSmith M.S., Skandari M.R., Huang E.S., Naylor R.N. The impact of biomarker screening and cascade genetic testing on the cost-effectiveness of MODY genetic testing. Diabetes Care. 2019; 42(12): 2247–55. doi: 10.2337/dc19-0486.

Об авторах / Для корреспонденции

Динара Евгеньевна Иванощук, младший научный сотрудник ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», научный сотрудник Научно-исследовательского института терапии и профилактической медицины – филиала ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук». Адрес: 630090, г. Новосибирск, проспект Академика Лаврентьева, д. 10. Тел.: 8 (961) 874-12-16. E-mail: dinara2084@mail.ru. ORCID: 0000-0002-0403-545X
Светлана Владимировна Михайлова, к.б.н., научный сотрудник ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук». Адрес: 630090, г. Новосибирск, проспект Академика Лаврентьева, д. 10. Тел.: 8 (913) 910 24 63. E-mail: mikhail@bionet.nsc.ru. ORCID: 0000-0002-0897-5473
Алла Константиновна Овсянникова, к.м.н., старший научный сотрудник Научно-исследовательского института терапии и профилактической медицины – филиала ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук». Адрес: 630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, д. 175/1. Тел.: 8 (383) 373-09-89. E-mail: aknikolaeva@bk.ru. ORCID: 0000-0002-9669-745X
Елена Владимировна Шахтшнейдер, к.м.н., зам. руководителя по научной работе Научно-исследовательского института терапии и профилактической медицины – филиала ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук», руководитель сектора изучения моногенных форм распространенных заболеваний человека ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук». Адрес: 630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, д. 175/1. Тел.: 8 (383) 373-09-82. E-mail: 2117409@mail.ru. ORCID: 0000-0001-6108-1025
Инна Викторовна Друк, д.м.н., доцент, зав. кафедрой внутренних болезней и семейной медицины ДПО ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России. Адрес: 644033, г. Омск, ул. Красный Путь, д. 127/1. Тел.: 8 (381) 249-20-85. E-mail: osma-genpract@yandex.ru. ORCID: 0000-0001-8317-7765
Оксана Дмитриевна Рымар, д.м.н., зав. лабораторией клинико-популяционных и профилактических исследований терапевтических и эндокринных заболеваний Научно-исследовательского института терапии и профилактической медицины – филиала ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук». Адрес: 630089, г. Новосибирск, ул. Бориса Богаткова, д. 175/1. Тел.: 8 (383) 373-09-89. E-mail: orymar23@gmail.com. ORCID: 0000-0003-4095-0169
Михаил Иванович Воевода, д.м.н., профессор, академик РАН, директор ФГБНУ «Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины». Адрес: 630117, г. Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2. E-mail: mvoevoda@ya.ru. ORCID: 0000-0003-4716-876X

Также по теме