Features of the relationship between clinical and laboratory, ultrasound signs of atherosclerosis and antioxidant defense in patients with comorbid pathology


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2021.9.76-84

Polyakov V.Ya., Kovrigin I.I., Kozhin P.M., Nikolaev Yu.A., Malov A.S., Sevostyanova E.V., Menschikova E.B.

Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine, Novosibirsk
Abstract. The ambiguity of data on Nrf2-mediated redox-sensitive signaling pathways participation in atherogenesis and the progression of atherosclerosis determines the need to search for new data on the mechanisms of cause-effect relationships of these processes.
The aim of the research was to study the features of clinical and laboratory markers of atherosclerosis and the level of genes expression of the antioxidant defense system (NRF2, HMOX1, NQO1, GSTP1) in correlation to the echoscopically verified degree of carotid artery (CA) stenosis.
Material and methods. The study included 160 patients from the clinic of the Federal research center for fundamental and translational Medicine aged from 35 to 78 years. They underwent clinical and laboratory diagnostics, ultrasound examination of brachiocephalic arteries, assessment of the expression of genes involved in the formation of antioxidant protection (NRF2, NQO1, HMOX1, GSTP1) using RT-PCR methodic.
Results. It was found that in peripheral blood leukocytes of patients with verified CA atherosclerosis, the expression of GSTP1, NQO1, and NRF2 genes is reduced (by 49, 51, and 44%, respectively), while the mRNA contained amount of the HMOX1 gene is not changed. A correlation was revealed between the severity of expression of genes GSTP1, HMOX1, NQO1, NRF2, indicators of blood lipid spectrum, as well as the degree of CA stenosis: an inverse correlation between the expression of NQO1 gene and the percentage of stenosis in the left common CA, expression of GSTP1 gene and the atherogenic coefficient, a direct relationship between the level of mRNA of the NRF2 gene and the concentration of high density lipoproteins (HDL). A direct correlation was found between the concentration of triglycerides and the thickness of the «intima-media» complex, the content of total cholesterol and the blood flow rate in the right internal CA, an inverse correlation between the level of HDL, as well as the concentration of apolipoprotein A and the thickness of the «intima-media» complex of the common CA.
Conclusion. Complex pathogenetic interrelationships of the expression of antioxidant defense genes, the degree of atherosclerotic stenosis and blood flow velocity of CA, as well as indexes of blood lipid spectrum are shown.

ВВЕДЕНИЕ

Современная медицина рассматривает атеросклероз как заболевание с вариабельной комбинацией изменений внутренней оболочки артерий эластического и мышечно-эластического типа, в основе которого лежат обменные нарушения, характеризующиеся аккумуляцией липидов, пролиферацией гладкомышечных клеток сосудов, воспалительными и некроапоптотическими процессами [1, 2]. В патогенетических механизмах атеросклероза ключевая роль принадлежит нарушению обмена липидов, эндотелиальной дисфункции, воспалительным и иммунным патологическим процессам, которые взаимосвязаны между собой. Как в условиях физиологической нормы, так и при развитии патологических процессов, в первую очередь связанных с формированием редокс-дисбаланса, в том числе при атерогенезе, центральное место занимает гомеостазирующая регуляторная система антиоксидант-респонсивного элемента Keap1/Nrf2/ARE [3].

Во время развития и прогрессирования атеросклероза опосредованная транскрипционным фактором Nrf2 передача сигналов модулирует многие физиологические и патофизиологические процессы: редокс-регуляцию, воспаление, липидный обмен, образование пенистых клеток, поляризацию макрофагов и др. Установлена связь некоторых полиморфизмов Nrf2 со способностью сосудов к вазодилатации, а также уровнем систолического и диастолического давления; в свою очередь, на активность системы Keap1/Nrf2/ARE могут влиять некоторые микроРНК [4]. Известно, что окислительное повреждение эндотелиальных клеток сосудов увеличивает риск атеросклероза [5]. Развитие окислительного стресса сопровождается стабилизацией в них Nrf2, который реализует свое защитное действие путем увеличения транскрипции целевых генов, в том числе антиоксидантных и связанных со II фазой детоксикации [6].

Nrf2 выполняет противовоспалительную функцию в эндотелиальных клетках [7], подавляет экспрессию молекул адгезии и цитокинов, ассоциированных с воспалением, на ранних этапах атерогенеза. Индукция системы Keap1/Nrf2/ARE Nrf2 в эндотелиальных клетках ингибирует ФНО-α-индуцированную экспрессию моноцитарного хемоаттрактантного белка-1 (MCP-1) и молекулы адгезии сосудистых клеток 1 (VCAM-1) [8, 9]. Эндотелиальный Nrf2 активируется ламинарным током крови и оказывает антиатерогенное действие [10]. В целом можно заключить, что Nrf2 эндотелиоцитов действует как антиатерогенный фактор за счет индукции антиоксидантных генов и угнетения экспрессии провоспалительных генов в ответ на различные сигналы, включая ламинарный сдвиг.

Повышенный уровень в крови общего холестерина (ХС), в основном за счет ХС липопротеидов низкой плотности (ЛНП) и триглицеридов (ТГ), наряду с низкой концентрацией ХС липопротеидов высокой плотности (ЛВП), увеличивает риск развития атеросклероза [12]. В то же время липопротеиды крови представляют собой гетерогенный спектр частиц, различающихся по плотности, размеру, электрическому заряду, химическому составу [13–16]. Критическими этапами атерогенеза являются поглощение окисленно модифицированных ЛНП макрофагами интимы и превращение последних в пенистые клетки [17].

Роль Nrf2-опосредованной регуляции в развитии и прогрессировании атеросклероза неоднозначна: выявлены ряд как антиатерогенных (снижение окисления ЛНП и их токсического действия, усиление синтеза антиоксидантных ферментов гемоксигеназы-1 и глутатионпероксидазы, повышение экспорта из клеток холестерина через транспортер АВСА1), так и проатерогенных (рост содержания ХС в крови, повышение экспрессии скэвинджер-рецепторов CD36 и миграции моноцитов в интиму, а также перевод макрофагов в проатерогенное состояние Mox) эффектов активации системы Keap1/Nrf2/ARE [3, 12].

Миграция, пролиферация и апоптоз клеток гладких мышц сосудов (КГМС) тесно связаны с развитием атеросклероза [18]. На поздней стадии атеросклероза КГМС мигрируют в интиму и секретируют белки внеклеточного матрикса для стабилизации бляшек. Хотя неизвестно, модулирует ли Nrf2 функцию КГМС во время атерогенеза, ряд исследований предполагает возможное антиатерогенное действие Nrf2 на КГМС. Окислительный стресс влияет на некоторые функции КГМС, такие как пролиферация, миграция и выработка воспалительных цитокинов [19]. Показано, что индукция системы Keap1/Nrf2/ARE снижает окислительный стресс и ингибирует пролиферацию КГМС и экспрессию MCP-1 [20, 21], а снижение стационарной концентрации Nrf2 малыми интерферирующими РНК увеличивает индуцированную фактором роста тромбоцитов миграцию КГМС [20, 21].

Неоднозначность данных об участии Nrf2-опосредованных редокс-чувствительных сигнальных путей в атерогенезе и прогрессировании атеросклероза определяет необходимость поиска новых сведений о механизмах причинно-следственных взаимо­связей данных процессов и позволяет предположить возможность разработки персонализированного подхода для диагностики и прогнозирования развития атеросклероза.

Цель исследования – изучить особенности клинико-лабораторных маркеров атеросклероза и уровень экспрессии генов системы антиоксидантной защиты NRF2, HMOX1, NQO1, GSTP1 во взаимо­связи с эхоскопически верифицированной степенью стенозирования сонных артерий.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

В исследование были включены 160 пациентов (54 мужчины, 106 женщин) клиники Федерального исследовательского центра фундаментальной и трансляционной медицины, проходивших обследование и лечение в период с 2016 по 2021 г. Возраст больных составил от 45 до 78 лет (в среднем 61,9±8,7 года). Исследование проводилось в соответствии со стандартами Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации «Этические принципы проведения медицинских исследований с участием человека в качестве субъекта» и Правилами клинической практики в Российской Федерации, утвержденными Приказом Минздрава России от 19.06.2003 № 266. Все пациенты дали письменное информированное согласие на включение в исследование.

В исследовании были использованы данные клинической, лабораторной, функциональной, ультразвуковой диагностики, выполнялась оценка экспрессии генов, участвующих в формировании антиоксидантной зашиты.

Определение компонентов липидного спектра крови проводилось в сыворотке крови, взятой в утренние часы натощак; с помощью биохимического анализатора Konelab 30i (Thermo Clinical Labsystems, Финляндия) оценивалось содержание общего ХС, ХС ЛНП, ХС ЛВП и ТГ. Гиперхолестеринемию определяли при повышении содержания общего ХС в сыворотке крови более 5 ммоль/л, увеличение концентрации ХС ЛНП и ТГ – при значениях более 3 и 1,7 ммоль/л соответственно, снижение уровня ХС ЛВП – при его величине менее 0,9 ммоль/л.

Проводилось дуплексное сканирование сосудов шеи (Vivid E9, GE, США) с определением диаметра общих сонных артерий, внутренних сонных артерий, наружных сонных артерий, позвоночных артерий, толщины комплекса «интима-медиа», пиковой систолической скорости кровотока общих сонных, внутренних сонных, наружных сонных, позвоночных артерий, извитости артерий, индекса резистентности, процента стеноза брахицефальных артерий. У пациентов рассчитывался кумулятивный индекс коморбидности CIRS-G.

Для оценки экспрессии генов забирали цельную венозную кровь, получали лейкоциты, из которых впоследствии выделяли РНК с использованием TRIzol Reagent (Thermo Fisher Scientific, США). Для получения кДНК выполняли обратную транскрипцию с помощью набора реагентов iScript cDNA Synthesis Kit (BioRad Laboratories, США) в соответствии с инструкцией. Методом TaqMan ПЦР в режиме реального времени на амплификаторе CFX96 (Bio-Rad Laboratories) изучали изменение экспрессии мРНК гена, кодирующего транскрипционный фактор Nrf2 (NRF2), и мРНК контролируемых им генов белков NAD(P)H:хиноноксидоредуктазы 1 (NQO1), гемоксигеназы 1 (HMOX1), глутатион-S-трансферазы P1 (GSTP1); в качестве референсного использовали ген домашнего хозяйства GAPDH.

Реакцию амплификации проводили в следующих условиях: реакционная смесь ПЦР объемом 20 мкл содержала буфер для ПЦР, 2,5 мМ MgCl2, 0,2 мМ dNTP’s, 1,25 е. а. Taq-полимеразы. Амплификацию выполняли согласно следующей программе: 3 мин при 95 °С начальной денатурации, далее 40 циклов: 10 с при 95 °С для денатурации, 20 с при 60 °С для гибридизации праймеров, съем флуоресцентного сигнала, 20 с при 72 °С для элонгации. Подобранные пары праймеров приведены в таблице 1.

79-1.jpg (33 KB)

Уровень экспрессии мРНК генов рассчитывали согласно методу 2-ΔΔCT и нормировали относительно референсного гена GAPDH. Статистическую обработку результатов исследования проводили, вычисляя среднее арифметическое значение (М), ошибку среднего арифметического значения (m), и представляли в виде M±m (нормальность распределения данных оценивали по критерию Колмогорова–Смирнова). Различия между группами определяли с помощью критерия Стьюдента, статистически значимыми считали результаты при р <0,05. Связь между различными признаками в исследуемой выборке устанавливалась посредством корреляционного анализа величиной коэффициента корреляции Спирмена (r).

РЕЗУЛЬТАТЫ

В подгруппе из 92 обследованных (средний возраст 62,0±9,1 года, 25 мужчин, 67 женщин) анализировались ультразвуковые характеристики брахиоцефальных артерий во взаимосвязи с биохимическими показателями липидного обмена. По результатам обследования пациенты были разделены на 3 группы в зависимости от степени стенозирования сонных артерий:

1) менее 30%;

2) от 30 до 50%;

3) более 50%.

Распределение пациентов по степени стеноза представлена в таблице 2. Незначительное стенозирование сонных артерий наблюдалось у 60,9% обследованных, умеренное и выраженное – у 39,1%.

79-2.jpg (20 KB)

Также был проведен расчет средних значений скорости кровотока (табл. 3) и показателей липидного спектра пациентов (табл. 4). Выявлено, что в среднем исследуемые пациенты имели повышенный уровень общего ХС с тенденцией к повышению коэффициента атерогенности.

80-1.jpg (142 KB)

Выполненный корреляционный анализ позволил найти взаимосвязи между показателями скорости кровотока и липидного спектра (табл. 5). В частности, была выявлена прямая корреляция между показателями концентрации ТГ и показателями толщины комплекса «интима-медиа» (r=0,31; p <0,05). Обнаружена прямая корреляция между показателями общего ХС и скоростью кровотока во внутренней сонной артерии (r=0,32; p <0,05). Также была установлена обратная корреляция между показателями концентрации ЛВП и толщиной комплекса «интима-медиа» (r=-0,53; p <0,05). Была выявлена прямая корреляционная связь между показателями скорости кровотока в позвоночных артериях и концентрациями ТГ и ЛНП. Обнаружена прямая корреляция между показателями толщины комплекса «интима-медиа» и коэффициентом атерогенности (r=0,48; p <0,05), а также между скоростью кровотока в позвоночных артериях и коэффициентом атерогенности (r=0,37 и r=0,41; p <0,05). Установлена обратная корреляционная связь между показателем концентрации аполипопротеина А и толщиной комплекса «интима-медиа» (r= 0,49; p <0,05) и прямая корреляция между показателем концентрации аполипопротеина В и скоростью кровотока в позвоночных артериях (справа r=0,39; слева r=0,46; p <0,05).

Далее были отобраны 12 больных (средний возраст 64,3±4,8 года) с верифицированным атеросклерозом брахиоцефальных артерий для исследования уровня экспрессии генов антиоксидантной защиты. Установлено, что у этих пациентов по сравнению с контролем (условно здоровых лиц сопоставимого пола и возраста) экспрессия генов GSTP1, NQO1 и NRF2 была снижена на 49, 51 и 44% соответственно (p <0,05), тогда как содержание мРНК гена HMOX1 изменено не было (табл. 6).

81-1.jpg (34 KB)

На следующем этапе исследования была выявлена взаимосвязь между выраженностью экспрессии генов GSTP1, HMOX1, NQO1, NRF2 и показателями липидного спектра крови, а также степенью стенозирования сонных артерий: обратная корреляция между экспрессией гена NQO1 и процентом стеноза в левой общей сонной артерии, прямая зависимость между уровнем мРНК гена NRF2 и концентрацией ЛВП, обратная корреляция между экспрессией гена GSTP1 и коэффициентом атерогенности (табл. 7).

81-2.jpg (49 KB)

В подгруппе из 68 пациентов (средний возраст 61,7±8,3 года; 29 мужчин, 39 женщин) была проанализирована взаимосвязь уровня полиморбидности с показателями липидного обмена. Была обнаружена умеренная обратная корреляция между содержанием общего ХС, ЛНП и индексом кумулятивной коморбидности (CIRS-G). r=-0,48 при р <0,05 и r=-0,45 при р<0,05 соответственно. Внутри групп с различной степенью стенозирования сонных артерий данная корреляция сохранялась. В группах с эхоскопически умеренным и выраженным (>30%), а также с незначительным (<30%) атеросклеротическим стенозированием сонных артерий концентрация общего ХС обратно коррелировала с индексом CIRS-G (r=-0,44 при р <0,05 и r=-0,46 при р <0,05 соответственно), уровень ЛНП – отрицательно (r=-0,41 при р <0,05, r=-0,43 при р <0,05 соответственно). Таким образом, в исследовании установлена и доказана статистически значимая обратная связь между индексом кумулятивной коморбидности (CIRS-G) и ЛНП у больных с атеросклерозом.

ОБСУЖДЕНИЕ

В проведенном исследовании обнаружено, что показатели липидного спектра могут влиять на скорость кровотока в брахиоцефальных артериях. В частности, повышенное содержание ТГ в крови влияет на толщину комплекса «интима-медиа» в общей сонной артерии, а также на увеличение скорости кровотока в позвоночных артериях. Помимо этого, повышенное содержание ЛНП также неблагоприятно сказывается на линейной скорости кровотока в позвоночных артериях и приводит к ее увеличению. Вместе с этим повышенный коэффициент атерогенности также влияет на линейную скорость кровотока в позвоночных артериях и приводит к увеличению последней. К тому же увеличенный коэффициент атерогенности влияет и на толщину комплекса «интима-медиа» в общих сонных артериях. Эти данные развивают представление о большой клинической значимости ультразвуковых показателей состояния брахиоцефальных артерий при комплексной оценке развития атеросклероза и его осложнений [22].

В нашем исследовании изучена экспрессия гена транскрипционного фактора Nrf2 – мастер-регулятора гомеостаза – и контролируемых им генов белков антиоксидантной защиты HMOX1, NQO1, GSTP1. То, что развитие атеросклероза сопровождается снижением экспрессии генов антиоксидантной защиты, в целом не вызывает сомнений [10, 23, 24], однако данных об участии в атерогенезе регуляторной системы Keap1/Nrf2/ARE относительно немного, а имеющиеся сведения крайне противоречивы. Полученные в настоящем исследовании результаты подтверждают гипотезу о наличии такой взаимосвязи: так, у пациентов с верифицированным атеросклерозом брахиоцефальных артерий снижена экспрессия не только гена NRF2, но и активируемых им генов GSTP1 и NQO1. Кроме того, наличие обратной корреляционная связи экспрессии гена NQO1 со степенью стеноза общей сонной артерии позволяет предположить, что одной из причин увеличения атеросклеротический бляшки в сонных артериях может быть уменьшение активности системы Keap1/Nrf2/ARE, хотя зависимость между выраженностью экспрессии NRF2 и стенозом сонных артерий не установлена. Необходимо отметить, что система Keap1/Nrf2/ARE регулируется главным образом на посттранскрипционном уровне, один из ключевых моментов ее индукции – внутриклеточное перераспределение Nrf2 (транспорт в ядро) с последующей активацией подконтрольных генов, поэтому изменение экспрессии Nrf2 не является обязательным свидетельством его активности [4, 6, 25, 26].

Корреляционный анализ также позволил вы­явить прямую корреляционную связь между экспрессией гена NRF2 и концентрацией ХС ЛВП. Таким образом, снижение или увеличение экспрессии NRF2 может влиять на изменение содержания ЛВП в периферической крови, что, в свою очередь, также влияет на развитие атеросклероза, поскольку, согласно литературным данным [2, 27, 28], эта группа липопротеидов выполняет уникальную антиатерогенную функцию. Напомним, что ЛВП способствуют обратному транспорту холестерина, гидролизуют окисленные липиды, тем самым угнетая свободно-радикальные окислительные процессы. Кроме того, входящий в их состав апопротеин A1 действует как антиоксидант, защищая ЛНП от окислительной модификации.

Наличие обратной зависимости между экспрессией гена GSTP1 и коэффициентом атерогенности также свидетельствует об угнетении антиоксидантной защиты при атеросклерозе и увеличении риска развития атеросклеротической бляшки, поскольку, в соответствии с литературными данными [2, 10, 11, 27], коэффициент атерогенности служит показателем, отражающим степень риска развития атеросклероза.

В результате полученные данные об экспрессии генов GSTP1, HMOX1, NQO1, NRF2 могут позволить в будущем разработать персонализированный подход для диагностики и прогнозирования развития атеросклероза, а также открывают перспективы разработки антиатеросклеротических препаратов нового поколения, мишенью которых будет выступать регуляторная система Keap1/Nrf2/ARE и опосредованно система антиоксидантной защиты.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

1. У пациентов с верифицированным атеросклерозом брахиоцефальных артерий экспрессия гена GSTP1 снижена на 49% по сравнению с контролем, экспрессия гена NQO1 – на 51%, экспрессия гена NRF2 – на 44%, в то время как экспрессия гена HMOX1 не изменена.

2. Выявлены взаимосвязи между выраженностью экспрессии генов GSTP1, HMOX1, NQO1, NRF2 и биохимическими показателями липидного спектра, а также степенью стенозирования сонных артерий, а именно: обратная корреляция между экспрессией гена NQO1 и процентом стеноза в левой общей сонной артерии, прямая зависимость между уровнем мРНК гена NRF2 и концентрацией ЛВП, обратная корреляция между экспрессией гена GSTP1 и коэффициентом атерогенности.

3. Обнаружены прямые корреляционные связи между концентрацией ЛНП, ТГ, аполипопротеина B в крови и скоростью кровотока в позвоночных артериях, а также обратная корреляционная связь между содержанием ЛВП и толщиной комплекса «интима-медиа» в общих сонных артериях.


Literature



  1. Falk E. Pathogenesis of atherosclerosis. J Am Coll Cardiol. 2006; 47(8 Suppl): C7–12. doi: 10.1016/j.jacc.2005.09.068.

  2. 2. Rafieian-Kopaei M., Setorki M., Doudi M. et al. Atherosclerosis: Process, indicators, risk factors and new hopes. Int J Prev Med. 2014; 5(8): 927–46.

  3. Зенков Н.К., Колпаков А.Р., Меньщикова Е.Б. Редокс-чувствительная система Keap1/Nrf2/ARE как фармакологическая мишень при сердечно-сосудистой патологии. Сибирский научный медицинский журнал. 2015; 5: 5–25. [Zenkov N.K., Kolpakov A.R., Menshchikova E.B. The redox-sensitive Keap1/Nrf2/ARE system as a pharmacological target in cardiovascular pathology. Sibirskiy nauchnyy medicinsky zhurnal = Siberian Scientific Medical Journal. 2015; 5: 5–25 (In Russ.)].

  4. Tian C., Gao L., Zucker I.H. Regulation of Nrf2 signaling pathway in heart failure: Role of extracellular vesicles and non-coding RNAs. Free Radic Biol Med. 2021; 167: 218–31. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.03.013.

  5. Souilhol C., Harmsen M.C., Evans P.C., Krenning G. Endothelial-mesenchymal transition in atherosclerosis. Cardiovasc Res. 2018; 114(4): 565–77. doi: 10.1093/cvr/cvx253.

  6. Kloska D., Kopacz A., Piechota-Polanczyk A. et al. Nrf2 in aging – focus on the cardiovascular system. Vascul Pharmacol. 2019; 112: 42–53. doi: 10.1016/j.vph.2018.08.009.

  7. Wei Y., Gong J., Thimmulappa R. K. et al. Nrf2 acts cell-autonomously in endothelium to regulate tip cell formation and vascular branching. Proc Natl Acad Sci USA. 2013; 110(41): E3910–18. doi: 10.1073/pnas.1309276110.

  8. Ahmed S.M.U., Luo L., Namani A. et al. Nrf2 signaling pathway: Pivotal roles in inflammation. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis. 2017; 1863(2): 585–97. doi: 10.1016/j.bbadis.2016.11.005.

  9. Holloway P.M., Gillespie S., Becker F. et al. Sulforaphane induces neurovascular protection against a systemic inflammatory challenge via both Nrf2-dependent and independent pathways. Vascul Pharmacol. 2016; 85: 29–38. doi: 10.1016/j.vph.2016.07.004.

  10. Takabe W., Warabi E., Noguchi N. Anti-atherogenic effect of laminar shear stress via Nrf2 activation. Antioxid Redox Signal. 2011; 15(5): 1415–26. doi: 10.1089/ars.2010.3433.

  11. Zhang Z., Zhou S., Jiang X. et al. The role of the Nrf2/Keap1 pathway in obesity and metabolic syndrome. Rev Endocr Metab Disord. 2015; 16(1): 35–45. doi: 10.1007/s11154-014-9305-9.

  12. Sachdeva A., Cannon C.P., Deedwania P.C. et al. Lipid levels in patients hospitalized with coronary artery disease: an analysis of 136.905 hospitalizations in get with the guidelines. Am Heart J. 2009; 157(1): 111–17.e2. doi: 10.1016/j.ahj.2008.08.010.

  13. Carmena R., Duriez P., Fruchart J.C. Atherogenic lipoprotein particles in atherosclerosis. Circulation. 2004; 109(23 Suppl 1): III2–7. doi: 10.1161/01.CIR.0000131511.50734.44.

  14. Berneis K.K., Krauss R.M. Metabolic origins and clinical significance of LDL heterogeneity. J Lipid Res. 2002; 43(9): 1363–79. doi: 10.1194/jlr.r200004-jlr200.

  15. Kwiterovich P.O. Clinical relevance of the biochemical, metabolic, and genetic factors that influence low-density lipoprotein heterogeneity. Am J Cardiol. 2002; 90(8A): 30i–47i. doi: 10.1016/s0002-9149(02)02749-2.

  16. Krauss R.M. Lipoprotein subfractions and cardiovascular disease risk. Curr Opin Lipidol. 2010; 21(4): 305–11. doi: 10.1097/MOL.0b013e32833b7756.

  17. Abdolmaleki F., Hayat S.M.G., Bianconi V. et al. Atherosclerosis and immunity: A perspective. Trends Cardiovasc Med. 2019; 29(6): 363–71. doi: 10.1016/j.tcm.2018.09.017.

  18. Lacolley P., Regnault V., Nicoletti A. et al. The vascular smooth muscle cell in arterial pathology: a cell that can take on multiple roles. Cardiovasc Res. 2012; 95(2):194–204. doi: 10.1093/cvr/cvs135.

  19. Badran A., Nasser A. S., Mesmar J. et al. Reactive oxygen species: Modulators of phenotypic switch of vascular smooth muscle cells. Int J Mol Sci. 2020; 21(22): 8764. doi: 10.3390/ijms21228764.

  20. Ashino T., Yamamoto M., Yoshida T., Numazawa S. Redox-sensitive transcription factor Nrf2 regulates vascular smooth muscle cell migration and neointimal hyperplasia. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2013; 33(4): 760–68. doi: 10.1161/ATVBAHA.112.300614.

  21. Cheng C., Haasdijk R. A., Tempel D. et al. PDGF-induced migration of vascular smooth muscle cells is inhibited by heme oxygenase-1 via VEGFR2 upregulation and subsequent assembly of inactive VEGFR2/PDGFRβ heterodimers. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2012; 32(5): 1289–98. doi: 10.1161/ATVBAHA.112.245530.

  22. Генкель Б.Б., Салашенко А.О., Алексеева О.А., Шапошник И.И. Комплексная оценка сосудистой жесткости у больных атеросклерозом периферических артерий. Атеросклероз и дислипидемии. 2016; 4: 49–56. [Genkel B.B., Malashenko A.O., Alekseeva O.A., Shaposhnik I.I. Complex assessment of vascular stiffness in patients with atherosclerosis of peripheral arteries. Ateroskleroz i dislipidemii = Atherosclerosis and dyslipidemia. 2016; 4: 49–56 (In Russ.)].

  23. Ding Y., Zhang B., Zhou K. et al. Dietary ellagic acid improves oxidant-induced endothelial dysfunction and atherosclerosis: role of Nrf2 activation. Int J Cardiol. 2014; 175(3): 508–14. doi: 10.1016/j.ijcard.2014.06.045.

  24. Hur K.Y., Kim S.H., Choi M.A. et al. Protective effects of magnesium lithospermate B against diabetic atherosclerosis via Nrf2-ARE-NQO1 transcriptional pathway. Atherosclerosis. 2010; 211(1): 69–76. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2010.01.035.

  25. Zenkov N.K., Kozhin P.M., Chechushkov A.V. et al. Mazes of Nrf2 regulation. Biochemistry (Moscow). 2017; 82(5): 556–64. doi: 10.1134/s0006297917050030.

  26. Liu T., Lv Y.F., Zhao J.L. et al. Regulation of Nrf2 by phosphorylation: Consequences for biological function and therapeutic implications. Free Radic Biol Med. 2021; 168: 129–41. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2021.03.034.

  27. Libby P., Ridker P.M., Hansson G.K. Progress and challenges in translating the biology of atherosclerosis. Nature. 2011; 473(7347): 317–25. doi: 10.1038/nature10146.

  28. Itabe H., Sawada N., Makiyama T., Obama T. Structure and dynamics of oxidized lipoproteins in vivo: Roles of high-density lipoprotein. Biomedicines. 2021; 9(6): 655. doi: 10.3390/biomedicines9060655.


About the Autors


Vladimir Ya. Polyakov, MD, leading researcher of the laboratory of somatic diseases pathogenesis of the Department of biomedical research, Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. Tel.: +7 (963) 942-35-25. E-mail: vpolyakov15@mail.ru. ORCID: 0000-0002-9606-2331
Igor I. Kovrigin, resident in «Therapy» specialty of Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. Tel.: +7 (913) 797-73-26. E-mail: ahilles9@bk.ru
Petr M. Kozhin, PhD, senior researcher of the Laboratory of molecular mechanisms of free radical processes of the Department of general pathology, Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. E-mail: kozhinpm@centercem.ru. ORCID: 0000-0002-9989-9778
Yuri A. Nikolaev, MD, head of the Laboratory of pathogenesis of somatic diseases of the Department of biomedical research, Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine, chief researcher. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. E-mail: nicol@centercem.ru. ORCID: 0000-0002-1690-6080
Alexander S. Malov, resident in «Therapy» specialty of Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Stк. Tel.: +7 (996) 376-58-00. E-mail: malov_as@cnmt.ru
Evgeniya V. Sevostyanova, PhD, senior researcher of the Laboratory of pathogenesis of somatic diseases of the Department of biomedical research, Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. Tel.: +7 (913) 897-49-68. E-mail: luck.nsk@rambler.ru. ORCID: 0000-0003-1132-3801
Elena B. Menshchikova, MD, head of the Laboratory of molecular mechanisms of free-radical processes of the Department of general pathology, Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. E-mail: lemen@centercem.ru. ORCID: 0000-0003-2367-0114


Similar Articles


Бионика Медиа