ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Аутоиммунитет и прогноз у больных с морфологически документированным миокардитом

Хащевская Д.А., Митрофанова Л.Б., Белякова Е.А., Бещук О.В., Зверев Д.А., Лебедев Д.С., Моисеева О.М.

ФГБУ Северо-Западный федеральный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава РФ, Санкт-Петербург
Цель исследования. Оценить клиническое и прогностическое значение циркулирующих кардиоспецифических аутоантител (ААТ) и Т-регуляторных клеток CD4+ у больных миокардитом. Материал и методы. В исследование были включены 47 пациентов ­
с лимфоцитарным миокардитом, документированным на основании анализа гистологических и иммуногистохимических данных. В качестве группы сравнения обследованы 30 практически здоровых лиц. У всех пациентов определяли содержание маркерных кардиотропных ААТ с помощью стандартизованных иммуноферментных тест-систем группы ЭЛИ-ТЕСТ. Число циркулирующих Т-лимфоцитов CD4+CD25+ и CD4+CD25+FoxP3+ оценивали методом проточной цитометрии. Результаты. Среди факторов, определяющих прогноз больных лимфоцитарным миокардитом, ключевое значение имели клинически выраженная сердечная недостаточность в дебюте заболевания, а также степень снижения фракции выброса левого желудочка. Отличительной особенностью больных активным миокардитом было повышение титра ААТ к саркомерным, цитоскелетным и цитоплазматическим белкам кардиомиоцитов, а также уровня ААТ к различным эпитопам белка — переносчика адениновых нуклеотидов ANT. Повышенный уровень ААТ к β1-адренорецепторам был независимым предиктором развития неблагоприятного исхода у больных лимфоцитарным миокардитом. Увеличение популяции циркулирующих Т-регуляторных клеток CD4+CD25+ сопряжено с повышением концентрации натрийуретического пептида. Заключение. Нарушения в системе аутоиммунитета играют ключевую роль не только в патогенезе, ­
но и в прогнозе воспалительных заболеваний миокарда. Изменения профиля циркулирующих кардиоспецифических аутоантител ­
и Т-регуляторных клеток могут носить защитную функцию.

Ключевые слова

миокардит
эндомиокардиальная биопсия
профиль аутоантител
Т-регуляторные клетки

Несмотря на достижения последних десятилетий, диагностика воспалительных заболеваний миокарда по-прежнему вызывает большие трудности, что в первую очередь связано с разнообразием их клинических проявлений. Кроме того, как следует из определения, данного группой экспертов Всемирной организации здравоохранения (1996), миокардит — это, прежде всего, морфологический диагноз, что дополнительно подчеркивает важность проведения эндомиокардиальной биопсии (ЭМБ) для верификации диагноза [1].

Современные представления о патогенезе воспалительных заболеваний миокарда неразрывно связаны с понятием аутоиммунитета. Дополнительным подтверждением аутоиммунной природы миокардита служат такие проявления заболевания, как персистирующая при отсутствии инфекционного агента воспалительная инфильтрация в миокарде,­ повышение титра циркулирующих кардиоспецифичных аутоантител (ААТ) и в ряде случаев – эффективность иммуносупресивной терапии. При иммуногистохимическом исследовании биоптатов миокарда у больных миокардитом­ в 59% случаев выявляются специфические ААТ [2]. Вместе с тем циркулирующие антимиокардиальные антитела ­не являются патогномоничным признаком миокардита ­и могут определяться у 9—57% больных дилатационной кардиомиопатией (ДКМП), у 9,3% пациентов с острым коронарным синдромом, у 27,6% – с систолической дисфункцией миокарда ишемического генеза и даже у 2—25% практически здоровых лиц [2—4]. Несмотря на низкую специфичность, выявление повышенного титра циркулирующих кардиоспецифических ААТ, как правило, ассоциировано с неблагоприятным прогнозом течения миокардита или ДКМП, а также с более высоким риском развития заболевания у здоровых родственников больных ДКМП [5, 6].

Однако ключевое значение в патогенезе миокардита играет не гуморальный, а клеточный иммунный ответ и, прежде всего, опосредованная главным комплексом гистосовместимости II класса CD4+Т-зависимая лимфоцитарная реакция [7].­

В связи с этим особый интерес представляет популяция Т-регуляторных клеток CD4+CD25+, которые участвуют в поддержании иммунологической аутотолерантности и иммунного гомеостаза, подавляя аномальный иммунный ответ.

В какой степени профиль циркулирующих кардиоспецифических ААТ и количество Т-регуляторных клеток CD4+CD25+ отражают тяжесть морфологических и иммуногистохимических изменений у больных лимфоцитарным миокардитом и как это связано с клиническими проявлениями заболевания? На эти вопросы мы попытались ответить ­в настоящей работе.

Цель исследования: оценить клиническое и прогностическое значение циркулирующих кардиоспецифических ААТ­ и Т-регуляторных клеток CD4+ у больных миокардитом.

Материал и методы

Исследование проводилось на базе ФГБУ «СЗФМИЦ им. В.А. Алмазова» с сентября 2011 по ноябрь 2013 г. ­ и носило проспективный характер. Обследованы 47 пациентов с лимфоцитарным миокардитом, документированным ­на основании анализа гистологических и иммуногистохимических данных в соответствии с утвержденными положениями Рабочей группы по заболеваниям миокарда и перикарда Европейского общества кардиологов [8]. В исследуемую группу вошли 18 больных активным и 29 пациентов с пограничным лимфоцитарным миокардитом.

Контрольную группу составили 30 практически здоровых лиц, доноров крови (17 мужчин, 13 женщин, средний возраст 33,8±9,3 года).

Исследование было одобрено этическим комитетом ФГБУ «ФМИЦ им. В.А. Алмазова». Перед включением в исследование все пациенты подписывали информированное согласие. Клиническая характеристика групп представлена в табл. 1.

Всем пациентам проводили ЭхоКГ на аппарате Vivid 7 ­(GE, США), определяли размеры камер сердца, толщину межжелудочковой перегородки в диастолу, толщину задней стенки левого желудочка (ЛЖ) в диастолу, фракцию выброса (ФВ) ЛЖ по Симпсону.

Биоптаты миокарда фиксировали 10% забуференным формалином. Парафиновые срезы 2—3 мкм окрашивали гематоксилином и эозином по ван Гизону и азур-эозином для оценки воспалительных инфильтратов. Дополнительно выполняли ШИК-реакцию для исключения гликогенозов, а также окраску конго красным и окраску по Перлсу для исключения амилоидоза и гемохроматоза у пациентов старше 50 лет [9]. ­

Для выявления воспалительных изменений в миокарде проводили иммуногистохимическое исследование с антителами к HLA-DR (clone LN3, Leica, 1:300), CD-3 (поликлональные антитела, DAKO, 1:800), CD45 (clone 2B11+PD7/26, DAKO, 1:1200), CD-68 (clone PG-M1, DAKO, 1:1000). Экспрессию HLA-DR оценивали в баллах: 1 балл — экспрессия антигена ­ на единичных клетках воспалительного инфильтрата; 2 балла —­ на всех клетках инфильтрата; 3 балла — на всех клетках инфильтрата и на эндотелии некоторых сосудов; 4 балла — ­ на всех клетках инфильтрата, на эндотелии всех сосудов и вдоль­ всех капилляров. Активный миокардит диагностировали при наличии некроза кардиомиоцитов и воспалительного инфильтрата, включающего не менее 14 лейкоцитов на 1 мм2, из них не более 4 моноцитов и ≥7 Т-лимфоцитов CD3+ на 1 мм2 [8].

С помощью стандартизованных иммуноферментных тест-систем группы ЭЛИ-ТЕСТ в сыворотке крови пациентов анализировали профили иммунореактивности маркерных кардиотропных ААТ, направленных к антигену цитоскелета кардиомиоцитов CoM-02, цитоплазматическому антигену кардиомиоцитов CoS-05-40, антигену NO-синтетазы (NOS) и коллагену. Все белковые антигены выделяли на базе лаборатории МИЦ «Иммункулус» с помощью общепринятых хроматографических методов. Кроме того, определяли содержание ААТ к двум пептидным фрагментам белка — переносчика адениновых нуклеотидов (ANT-1 и ANT-2) – белку р53, миозинсвязывающему белку MyBP, М2-холинорецепторам ­и фрагменту внеклеточной петли β1-адренорецептора. Синтез пептидных фрагментов белков был выполнен компанией «Peptide 2.0 Inc» (Chantilly, США). Пептидный фрагмент внеклеточной петли β1-адренорецептора предоставлен проф. С.Н. Покровским (Институт клинической кардиологии ­им. А.Л. Мясникова, Москва). Среднюю индивидуальную иммунореактивность сывороток и нормализованное содержание ААТ к каждому из антигенов оценивали согласно инструкции производителя, используя компьютерную программу, прилагаемую к тест-наборам. В работе оценивали индивидуальные особенности «профилей» (паттерн интегральной аутореактивности пациента) [10—12].

Число циркулирующих Т-лимфоцитов CD4+CD25+ ­и CD4+CD25+FoxP3+ оценивали методом проточной цитометрии с использованием моноклональных антител к CD4, меченных флюоресцеин-изотиоциантом (FITC, R&D™), CD25 фикоэритрином (PE, R&D™) и FoxP3 аллофикоцианином (АРС, R&D™).

Уровень высокочувствительного С-реактивного белка определяли иммунотурбидиметрическим методом, тропонина I —­ иммуноферментным методом. Для оценки концентрации N-концевого мозгового пропептида (NT-proBNP) в сыворотке крови применяли электрохемилюминесцентный метод с использованием стандартных тест-систем и анализатора.

Статистическую обработку данных проводили с использованием пакета прикладных программ Statistica версия 10.0. Статистический анализ полученных результатов проводили ­с помощью методов непараметрической статистики (критерии Манна—Уитни, Крускала—Уоллиса. χ2-критерий). Результаты представлены в виде среднего арифметического значения (М), стандартного отклонения (σ) или медианы (Ме) и первого и третьего квартилей (Q25; Q75), а также числа признаков в группе (n). Для анализа комбинированной конечной точки (сердечно-сосудистая летальность и потребность в трансплантации сердца) за начало отсчета была принята дата выполнения ЭМБ, подтверждающей диагноз миокардита, а за окончание — дата смерти пациента или дата трансплантации сердца. Выживаемость пациентов с миокардитом анализировали с помощью кривых Каплана—Мейера. Различия считали статистически значимыми при p<0,05.

Результаты

В дебюте заболевания у 23% пациентов с морфологически документированным миокардитом встречался болевой синд­ром (кардиалгии или ангинозоподобные боли). С симптомами прогрессирующей сердечной недостаточности (СН) ­к врачу обратились 60% обследованных больных (см. табл. 1). Желудочковые и наджелудочковые нарушения ритма регистрировались у 86% больных, в том числе в 55% случаев –­ опасные для жизни желудочковые нарушения ритма: желудочковая тахикардия или фибрилляция желудочков. ­

У 60% пациентов с миокардитом выявлено повышение уровня тропонина I в сыворотке крови — 1,08 (0; 0,299) нг/мл. Уровень С-реактивного белка у обследованных пациентов варьировался от 1,83 до 10,8 мг/л.

Диагноз миокардита по результатам ЭМБ верифицирован на основании Далласских критериев и критериев Ассоциации сердечно-сосудистых патологов Европы [8, 13]. Согласно Далласским критериям, у 18 пациентов имелся активный миокардит и у 29 — пограничный миокардит (табл. 2). При гистологическом исследовании у 32 больных выявлены фиброзные изменения в миокарде, что свидетельствовало ­о хронизации воспалительного процесса.

На выраженность воспалительных изменений указывало число клеток воспаления (CD3+, CD45+, CD68+) на единицу площади миокарда (мм2). Достоверных различий между активным и пограничным миокардитом по числу клеток воспаления, инфильтрирующих миокард, не получено. Высокая экспрессия антигена HLA-DR отмечена как в группе больных активным, так и пограничным миокардитом.

Среди факторов, определяющих прогноз больных лимфоцитарным миокардитом, ключевое значение имели наличие клинически выраженной СН в дебюте заболевания (рис. 1),­ а также степень снижения ФВ ЛЖ. У больных с ФВ ЛЖ более 40% частота фатального исхода и потребностьв трансплантации сердца были достоверно ниже (p=0,004). При анализе комбинированной конечной точки (сердечно-сосудистая летальность и потребность в трансплантации сердца) выявлена тенденция, свидетельствующая о том, что прогноз у пациентов с пограничным миокардитом был хуже, чем у пациентов с активным воспалительным процессом (рис. 2). Подтверждением этому служили и более высокие концентрации мозгового натрийуретического пропептида в сыворотке крови у пациентов с пограничным миокардитом.

Уровень ААТ в сыворотке крови может быть ранним ­и весьма специфическим маркером возникновения патологического процесса в том или ином органе. Прямым доказательством этого могут быть результаты настоящего исследования, в соответствии с которыми пациенты с миокардитом имели специфический по сравнению с группой практически здоровых доноров крови «профиль» ААТ (табл. 3). Отличительной особенностью больных активным миокардитом было появление пиков иммунореактивности ААТ к саркомерным, цито­скелетным и цитоплазматическим белкам кардиомиоцитов, ­а также пиков ААТ к различным эпитопам белка — переносчика адениновых нуклеотидов ANT, свидетельствующих ­о наличии митохондриальных нарушений в клетках миокарда. Напротив, у больных пограничным миокардитом чаще повышался уровень ААТ к β1-адренорецепторам, что, вероятно, связано с большей частотой как клинически выраженной СН, так и нарушений ритма сердца. Более того, повышенный уровень ААТ к β1-адренорецепторам был независимым предиктором неблагоприятного исхода у больных лимфоцитарным миокардитом (рис. 3). На наличие повреждения миокарда как в группе больных активным (44%), так и в группе пациентов ­с пограничным миокардитом (26%) указывало появление пиков иммунореактивности ААТ к проапоптотическому белку р53.­

Однонаправлено в обеих подгруппах менялся и уровень ААТ к NO-синтазе, свидетельствующий о развитии дисфункции эндотелия у больных миокардитом. Выявлено, что повышение уровня циркулирующих кардиоспецифических ААТ может отражать патологическое ремоделирование миокарда у пациентов с воспалительными заболеваниями. В частности, повышенный уровень ААТ к сердечному миозину был ассоциирован с увеличением конечного систолического размера ЛЖ (р=0,02), а повышение уровня ААТ к коллагену — со снижением ФВ ЛЖ (rs=-0,446; p=0,008). Появление кардиоспецифических ААТ может быть не только отражением патологического процесса.­

Нельзя исключить, что ААТ в ряде случаев выполняют защитную функцию. Например, между величиной ФВ ЛЖ и содержанием ААТ к цитоплазматическому антигену кардиомиоцитов CoS-05-40 (rs=0,419; p=0,014) и NO-синтазе (rs=0,340; p<0,05) выявлена положительная корреляция.

В многочисленных клинических и экспериментальных исследованиях показано, что между развитием воспалительных изменений в миокарде и активацией Т-регуляторных клеток существует обратная связь. В отличие от традиционных представлений о том, что число Т-регуляторных клеток снижается при развитии аутоиммунных заболеваний, в настоящем исследовании у больных лимфоцитарным миокардитом выявлено увеличение популяции клеток CD4+CD25+ и клеток CD4+CD25bright+FOXP3+ по сравнению с контрольной группой.

Рост популяции Т-регуляторных клеток CD4+CD25+ ассоциирован с повышением концентрации NT-proBNP, который служит маркером тяжести и прогноза у больных СН (rs=0,426; p=0,019). Наряду с этим выявлена обратная корреляция между содержанием ААТ к эпитопу ECS белка – переносчика адениновых нуклеотидов ANT, кардиоспецифичному миозину ­и уровнем циркулирующих Т-регуляторных клеток CD4+CD25+ (β=-0,644; p=0,00001 и rs=-0,361; p=0,026 соответственно) (рис. 4).­

Обсуждение

В патогенезе воспалительных заболеваний миокарда наряду с прямым повреждающим действием инфекции или токсического фактора и продукцией провоспалительных цитокинов, важную роль отводят нарушениям клеточного и гуморального аутоиммунитета. Доказательством участия CD4+ Т-лимфоцитов в патогенезе воспалительных заболеваний миокарда служит ставшая классической модель экспериментального аутоиммунного миокардита, в которой показано, что снижение уровня Т-клеток CD4+ препятствует развитию миокардита, а введение этих клеток от заболевшей особи здоровым животным способствует его возникновению [14]. Таким образом, CD4+ Т-клетки — необходимое и достаточное условие для развития миокардита [7]. Функциональное и фенотипическое разделение CD4+ T-клеток осуществляют по характеру секретируемых цитокинов на так называемые клетки Th1 и Th2 в зависимости от продукции ими интерферона γ (ИФН-γ) и интерлейкина-4 (ИЛ-4) соответственно [15].­

Существуют убедительные доказательства как в эксперименте, так и в клинике участия ИФН-γ и клеток Th1 в патогенезе миокардита, вызванного кардиотропными вирусами [16, 17]. Вместе с тем блокада продукции ИФН-γ приводила не к подавлению воспалительных изменений в миокарде, а к их парадоксальной активации, вплоть до развития тяжелой СН [18]. Дело в том, что в ряде исследований продемонстрированы защитные функции ИФН-γ, в том числе в отношении контроля апоптоза ауторегуляторных Т-лимфоцитов [19].

Впервые Т-регуляторные клетки охарактеризованы S. Sakaguchi и соавт. в середине 90-х гг. XX века как популяция клеток CD4+, дополнительно экспрессирующих рецептор ИЛ-2 CD25 [20]. Позднее в Х-хромосоме был найден ­ген FOXP3, экспрессия которого связана с продукцией фактора, необходимого для контроля развития и функционирования Т-регуляторных клеток [21, 22]. Несмотря на то что механизмы, вызывающие экспрессию FOXP3, хорошо изучены, четких представлений о том, каким образом контролируются Т-регуляторные клетки, пока нет. В последние годы получены доказательства, что иммунорегуляторная функция этих клеток осуществляется благодаря продукции ингибиторных цитокинов, таких как ИЛ-10 и трансформирующий β-фактор роста, конкуренции за ИЛ-2, а также за счет контактного взаимодействия клеток [23, 24].

Данные о представительстве Т-регуляторных клеток ­в периферической крови больных аутоиммунными заболеваниями широко варьируются и во многом зависят от фенотипических маркеров, которые используются для характеристики этих клеток. На сегодняшний день FOXP3 рассматривается как наиболее специфический внутриклеточный маркер Т-регуляторных клеток. В клинических исследованиях, включавших больных сахарным диабетом 1-го типа, системной красной волчанкой, ревматоидным артритом ­и рассеянным склерозом, продемонстрировано как снижение числа циркулирующих Т-регуляторных клеток СD4+CD25+, так и отсутствие принципиальных различий по сравнению с контролем [25]. Не выявлено корреляций между темпами прогрессирования периферического и коронарного атеро­склероза и числом циркулирующих CD4+CD25+ и экспрессией мРНК FOXP3 [26]. Напротив, в нашем исследовании выявлено увеличение числа циркулирующих Т-регуляторных клеток CD4+CD25+ и CD4+CD25bright+FOXP3+, что, вероятно, носит компенсаторный характер. Данный факт подтверждается наличием положительной корреляции между представительством клеток CD4+CD25+ и уровнем NT-proBNP. Однако повышение уровня циркулирующих ААТ было ассоциировано с первичным или вторичным снижением числа ­и/или нарушением функции Т-регуляторных клеток.

Повреждение миокарда служит пусковым механизмом развития аутоиммунных реакций при сердечно-сосудистых заболеваниях, ключевым звеном которых являются феномен «молекулярной мимикрии» и перекрестная иммунореактивность. Кардиоспецифические ААТ могут оказывать дополнительное воздействие на структурно-функциональные изменения в сердце. В частности, ААТ к β1-адренорецепторам могут индуцировать апоптоз кардиомиоцитов, тем самым способствуя дилатации полостей сердца [27]. Хотя наличие ААТ к β1-адренорецепторам ассоциировано с высоким риском развития и прогрессирования СН, четкие данные о распространенности, частоте появления и кинетике этих ААТ в периферической крови пациентов с СН различного генеза по-прежнему отсутствуют. Решить существующую проблему предполагается в рамках многоцентрового клинического исследования ETiCS, начавшегося в 2010 г. [28].­

В настоящем исследовании повышенный уровень ААТ ­к β1-адренорецепторам зарегистрирован у 58% больных пограничным миокардитом, что согласуется с ранее опубликованными данными отдаленного прогноза у больных активным и пограничным миокардитом, в которых пограничный миокардит ассоциировался с большей дилатацией ЛЖ [29].

Как правило, появление ААТ к β1-адренорецепторам сопряжено с ростом уровня аутоантител к М2-холинорецепторам. Последние оказывают негативные хроно- и инотропное действия, а также ингибирующее влияние на активность аденилатциклазы [30]. Появление аутоантител­ к М2-холинорецепторам ассоциировано со снижением глобальной сократительной способности ЛЖ у больных ДКМП, что способствует прогрессированию СН [31].

Роли антимитохондриальных ААТ при различных заболеваниях посвящены многочисленные исследования. Появление ААТ к белку — переносчику адениновых нуклеотидов ANT, у больных ДКМП впервые продемонстрировано в работе Н.Р. Schultheiss и соавт. [32]. Дело в том, что аминокислотная последовательность ANT до некоторой степени повторяет последовательность белка энтеровируса Коксаки В3 — одного из основных кардиотропных вирусов, приводящих к развитию миокардита [33]. На экспериментальной модели аутоиммунного миокардита показано, что при нейтрализации циркулирующего ИЛ-17 уровень ААТ ­к ANT снижается. Высказано предположение, что возможный протективный эффект, связанный с подавлением воспаления, ассоциированного с ИЛ-17, реализуется за счет ингибирования пролиферации В-клеток CD19+ и уменьшения продукции ААТ к ANT [34, 35]. Подтверждением данной гипотезы служат данные о снижении уровня ААТ к ANT ­в зависимости от тяжести поражения миокарда, полученные в настоящем исследовании.

Аутоиммунитет можно рассматривать как важнейший инструмент удаления поврежденных собственных клеток и вредных продуктов обмена, что обеспечивает перманент­ную продукцию естественных ААТ у каждого здорового человека [36]. Поэтому синтез ААТ определенной специфичности компенсаторно повышается при возникновении первичного патологического процесса в определенном органе или ткани. Такие саногенные аутоиммунные реакции обеспечивают локальную активацию клиренса пораженного органа. Поэтому повышение уровня циркулирующих ААТ может носить защитную функцию. ­

Эту гипотезу подтверждают результаты настоящего исследования о более высоких значениях ФВ ЛЖ у больных миокардитом и повышенным уровнем циркулирующих ААТ ­к цитоплазматическому антигену кардиомиоцитов, а также данные A.O. Doesch и соавт. об улучшении выживаемости больных ДКМП, имеющих повышенный уровень ААТ ­к тропонину I [37].

Таким образом, результаты настоящего исследования подтверждают, что нарушения в системе аутоиммунитета играют ключевую роль не только в патогенезе, но и в прогнозе воспалительных заболеваний миокарда. Вместе с тем изменения профиля циркулирующих кардиоспецифических ААТ и Т-регуляторных клеток могут носить защитную функцию, что нуждается в дальнейшем изучении.

Авторы выражают искреннюю благодарность профессору А.В. Полетаеву за помощь в организации исследования профиля аутоантител.

Работа выполнена в рамках государственного задания ФГБУ «СЗФМИЦ им. В.А. Алмазова» «Метаболомные и транскриптомные маркеры развития фиброза миокарда».

Список литературы

  1. Richardson P., McKenna W., Bristow M., Maisch B., Mautner B., O’Connell J., Olsen E., Thiene G., Goodwin J., Gyarfas I., Martin I., Nordet P. Report of the 1995 World Health Organization/International Society and Federation of Cardiology Task Force on the Definition and Classification of Cardiomyopathies. Circulation 1996;93(5):841–842.
  2. Caforio A.L., Tona F., Bottaro S., Vinci A., Dequal G., Daliento L., Thiene G., Iliceto S. Clinical implications of anti-heart autoantibodies ­in myocarditis and dilated cardiomyopathy. Autoimmunity 2008;41(1):35–45.
  3. Leuschner F., Li J., Gцser S., Reinhardt L., Ottl R., Bride P., Zehelein .J, Pfitzer G., Remppis A., Giannitsis E., Katus H.A., Kaya Z. Absence of auto-antibodies against cardiac troponin I predicts improvement ­of left ventricular function after acute myocardial infarction. Eur Heart J 2008;29(16):49–55.
  4. Diepenhorst G.M., Ciurana C.L., Diaz Padilla N., Boekholdt S.M., Krijnen P.A., Lagrand W.K., Niessen H.W., Hack C.E. IgM antibodies against apoptotic cells and phosphorylcholine in patients with acute myocardial infarction in relation to infarct size and inflammatory response. Adv Clin Exp Med 2012;21(4):455–467.
  5. Caforio A.L., Mahon N.G., Baig M.K., Tona F., Murphy R.T., Elliott P.M., McKenna WJ. Prospective familial assessment in dilated cardiomyopathy: cardiac autoantibodies predict disease development ­in asymptomatic relatives. Circulation 2007;115(1):76–83.
  6. Caforio A.L., Mahon N.J., Tona F., McKenna W.J. Circulating cardiac autoantibodies in dilated cardiomyopathy and myocarditis: pathogenetic and clinical significance. Eur J Heart Fail 2002;4(4):411–417.
  7. Barin J.G., Čiháková D. Control of inflammatory heart disease by CD4+ ­T-cells. Ann N Y Acad Sci 2013;1285:80–96.
  8. Caforio A.L., Pankuweit S., Arbustini E., Basso C., Gimeno-Blanes J., Felix S.B., Fu M., Heliö T., Heymans S., Jahns R., Klingel K., Linhart A., Maisch B., McKenna W., Mogensen J., Pinto Y.M., Ristic A., Schultheiss H.P., Seggewiss H., Tavazzi L., Thiene G., Yilmaz A.,­ Charron P., Elliott P.M.; European Society of Cardiology Working Group on Myocardial and Pericardial Diseases. Current state of knowledge ­on aetiology, diagnosis, management, and therapy of myocarditis: a position­ statement of the European Society of Cardiology Working Group on Myocardial and Pericardial Diseases. Eur Heart J 2013;34(33):2636–2648.
  9. Cunningham K.S., Veinot J.P., Butany J. An approach to endomyocardial biopsy interpretation. J Clin Pathol 2006;59(2):121–129.
  10. Poletaev A.B. Physiologic immunology (natural autoantibodies and problems of nanomedicine). Moscow: MICLOSH 2010; 218 p. Russian (Полетаев А.Б. Физиологическая иммунология (естественные аутоантитела и проблемы наномедицины). Москва: МИКЛОШ 2010; 218 c.).
  11. Quintana F.J., Getz G., Hed G., Domany E., Cohen I.R. Cluster analysis of human autoantibody reactivities in health and in type 1 diabetes mellitus: a bio-informatic approach to immune complexity. J Autoimmun 2003;21:65–75.
  12. Meroni P.L., De Angeles V., Tedesco F. Future trends. In: Shoenfeld Y., Gershwin M. E., Meroni P.L., eds. Autoantibodies. Elsevier, Amsterdam 2007: 823–826.
  13. Aretz H.T., Billingham M.E., Edwards W.D., Factor S.M., Fallon J.T., Fenoglio J.J. Jr., Olsen E.G., Schoen F.J. Myocarditis: a histopathologic definition and classification. Am J Cardiovasc Pathol 1987;1(1):3–14.
  14. Smith S.C., Allen P.M. The role of T cells in myosin-induced autoimmune myocarditis. Clin Immunol Immunopathol 1993;68(2):100–106.
  15. Mosmann T.R., Coffman R.L. TH1 and TH2 cells: different patterns ­of lymphokine secretion lead to different functional properties. Annu Rev Immunol 1989;7:145–173.
  16. Schmidtke M., Glück B., Merkle I., Hofmann P., Stelzner A., Gemsa D.­ Cytokine profiles in heart, spleen, and thymus during the acute stage ­of experimental coxsackievirus B3-induced chronic myocarditis. J Med Virol 2000;61(4):518–526.
  17. Luppi P., Rudert W., Licata A., Riboni S., Betters D., Cotrufo M., Frati G., Condorelli G., Trucco M. Expansion of specific alphabeta+ T-cell subsets in the myocardium of patients with myocarditis and idiopathic dilated cardiomyopathy associated with Coxsackievirus B infection. Hum. Immunol 2003;64(2):194–210.
  18. Afanasyeva M., Georgakopoulos D., Belardi D.F., Bedja D., Fairweather D., Wang Y., Kaya Z., Gabrielson K.L., Rodriguez E.R., Caturegli P., Kass D.A., Rose N.R. Impaired up-regulation of CD25 ­on CD4+ Tcells in IFN-gamma knockout mice is associated with progression of myocarditis to heart failure. Proc Natl Acad Sci USA 2005;102(1):180–185.
  19. Barin J.G., Talor M.V., Baldeviano G.C., Kimura M., Rose N.R., Čiháková D. Mechanisms of IFN gamma regulation of autoimmune myocarditis. Exp Mol Pathol 2010;89(2):83–91.
  20. Sakaguchi S., Sakaguchi N., Asano M., Itoh M., Toda M. Immunologic self-tolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor a-chains (CD25).Breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases. J Immunol 1995;155(3):1151–1164.
  21. Yarilin A.A., Donetskova A.D. Natural regulatory T cells and factor FOXP3.Immunology 2006;3:176–188. Russian (Ярилин А.А., Донецкова А.Д. Естественные регуляторные Т-клетки и фактор FOXP3. Иммунология 2006;3:176–188).
  22. Oda J.M., Hirata B.K., Guembarovski R.L., Watanabe M.A. Genetic polymorphism in FOXP3 gene: imbalance in regulatory T-cell role and development of human diseases. J Genet 2013;92(1):163–171.
  23. Von Boehmer H. Mechanisms of suppression by suppressor T cells. ­Nat Immunol 2005;6(4):338–344.
  24. Bettini M., Vignali D.A.A. Regulatory T cells and inhibitory cytokines ­in autoimmunity. Curr. Opin. Immunol 2009;21(6):612–618.
  25. Buckner J.H. Mechanisms of impaired regulation by CD4+CD25+FOXP3+ regulatory T cells in human autoimmune diseases. Nat Rev Immunol 2010;10(12):849–859.
  26. Ammirati E., Cianflone D., Banfi M., Vecchio V., Palini A., De Metrio M.,­ Marenzi G., Panciroli C., Tumminello G., Anzuini A., Palloshi A., ­Grigore L., Garlaschelli K., Tramontana S., Tavano D., Airoldi F.,­ Manfredi A.A., Catapano A.L., Norata G.D. Circulating CD4+CD25оhiCD127lo regulatory T-cells levels do not reflect the extent or severity of carotid and coronary atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2010;30(9):1832–1841.
  27. Jane-wit D., Altuntas C.Z., Johnson J.M., Yong S., Wickley P.J., Clark P., Wang Q., Popovič Z.B., Penn M.S., Damron D.S., Perez D.M., Tuohy V.K. Beta 1-adrenergic receptor autoantibodies mediate dilated cardiomyopathy by agonistically inducing cardiomyocyte apoptosis. Circulation 2007;24(4):399–410.
  28. Deubner N., Berliner D., Schlipp A., Gelbrich G., Caforio A.L., Felix S.B., Fu M., Katus H., Angermann C.E., Lohse M.J., Ertl G., Störk S., Jahns R.; Etiology, Titre-Course, and Survival-Study Group. Cardiac beta1-adrenoceptor autoantibodies in human heart disease: rationale and design of the Etiology, Titre-Course, and Survival (ETiCS) Study. Eur J Heart Fail 2010;12(7):753–762.
  29. Angelini A., Crosato M., Boffa G.M., Calabrese F., Calzolari V., Chioin R., Daliento L., Thiene G. Active versus borderline myocarditis: clinicopathological correlates and prognostic implications. Heart 2002;87(3):210–215.
  30. Matsui S., Fu M.L., Shimizu M., Fukuoka T., Teraoka K., Takekoshi N., Murakami E., Hjalmarson A. Dilated cardiomyopathy defines serum autoantibodies against G-protein-coupled cardiovascular receptors. Autoimmunity 1995;21(2):85–88.
  31. Stavrakis S., Kem D.C., Patterson E., Lozano P., Huang S., Szabo B., Cunningham M.W, Lazzara R., Yu X. Opposing cardiac effects ­of autoantibody activation of beta-adrenergic and M2 muscarinic receptors in cardiac-related diseases. Int J Cardiol 2011;148(3):331–336.
  32. Schultheiss H.P, Bolte H.D. Immunological analysis of auto-antibodies against the adenine nucleotide translocator in dilated cardiomyopathy. ­J Mol Cell Cardiol 1985;17(6):603–617.
  33. Ventйo L., Bourlet T., Renois F., Douche-Aourik F., Mosnier J.F., Maison G.L., Pluot M., Pozzetto B., Andreoletti L. Enterovirus-related activation of the cardiomyocyte mitochondrial apoptotic pathway ­in patients with acute myocarditis. Eur Heart J 2010;31(6):728–736.
  34. Baldeviano G.C., Barin J.G., Talor M.V., Srinivasan S., Bedja D., Zheng D., Gabrielson K., Iwakura Y., Rose N.R., Cihakova D. Interleukin-17A is dispensable for myocarditis but essential for the progression to dilated cardiomyopathy. Circ Res 2010;106(10):1646–1655.
  35. Yuan J., Yu M., Lin Q.W., Cao A.L., Yu X., Dong J.H., Wang J.P., Zhang J.H., Wang M., Guo H.P., Liao Y.H. Neutralization of IL-17 inhibits the production of anti-ANT autoantibodies in CVB3-induced acute viral myocarditis. Int Immunopharmacol 2010;10(3):272–276.
  36. Zaichik A., Churilov L.P., Utekhin V.J. Autoimmune regulation ­of genetically determined cell functions in health and disease. Pathophysiology 2008;15(3):191–207.
  37. Doesch A.O., Mueller S., Nelles M., Konstandin M., Celik S., Frankenstein L., Goeser S., Kaya Z., Koch A., Zugck C., Katus H.A. Impact of troponin I-autoantibodies in chronic dilated and ischemic cardiomyopathy. Basic Res Cardiol 2011;106(1):25–35.

Об авторах / Для корреспонденции

ФГБУ Северо-Западный федеральный медицинский исследовательский центр им. В.А. Алмазова Минздрава РФ,
Санкт-Петербург
Хащевская Д.А. - аспирант НИО некоронарогенных заболеваний сердца.
Митрофанова Л.Б. - д.м.н., зав. НИЛ патоморфологии.
Белякова Е.А. - врач проточной цитометрии.
Бещук О.В. - мл.н.с. НИЛ патоморфологии.
Зверев Д.А. - к.м.н., зав. НИЛ интервенционной кардиологии.
Лебедев Д.С. - д.м.н., зав. НИО аритмологии.
Моисеева О.М. - д.м.н., зав. НИО некоронарогенных заболеваний сердца.
E-mail: moiseeva@almazovcentre.ru

Также по теме