ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Эволюция взглядов на липопротеид(а): от биомаркера до терапевтической мишени

Сафарова М.С., Ежов М.В.

Отдел проблем атеросклероза НИИ клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава России, 121552, Москва, Россия, ул. 3-я Черепковская, 15А
Липопротеид(а) [Лп(а)] представляет собой частицу, подобную липопротеиду низкой плотности, в состав которой входит уникальный апобелок(а) — апо(а), обладающий высокой степенью структурной гомологии с молекулой плазминогена. Особенности строения Лп(а) определяют его атеротромбогенный потенциал. Концентрация Лп(а) в крови генетически определена и сохраняется на одном уровне в течение всей жизни человека. Согласно данным экспериментальных, популяционных и генетических исследований, повышенный уровень Лп(а) независимо от традиционных факторов риска развития атеросклероза связан с развитием сердечно-сосудистых заболеваний. В обзоре рассмотрены основные патогенетические звенья участия Лп(а) в атеротромбозе и процессах воспаления. Представлена современная доказательная база в отношении прогностической роли Лп(а) в развитии сердечно-сосудистых осложнений. Приведены результаты исследований по снижению уровня Лп(а) и обсуждается клиническое значение использования Лп(а) как терапевтической мишени у больных с его повышенным уровнем.

Ключевые слова

липопротеид(а)
апобелок(а)
атеросклероз
сердечно-сосудистые заболевания
ишемическая болезнь сердца
биомаркер
фактор риска
прогноз
лечение

Липопротеид(а) — структурная характеристика и особенности метаболизма. Липопротеид(а) (Лп(а)) впервые выделен у человека 50 лет назад норвежским ученым K. Berg и тогда же отнесен к отдельному классу липопротеидов плазмы крови, содержащих апобелок В100 (апоВ100) [1]. Лп(а) представляет собой надмолекулярный комплекс, состоящий из липопротеидной части, похожей по своим свойствам на липопротеид низкой плотности (ЛНП), и апобелка апо(а), связанного с молекулой апоВ100 при помощи одной дисульфидной связи (рисунок, см. цветную вклейку) [2]. Апо(а) представляет уникальный гликопротеиновый фрагмент, состоящий из аминокислотных последовательностей, организованных в петли и получивших название кринглей (по аналогии с датским печеньем).

Сходство Лп(а) с ЛНП заключается в наличии центрального ядра, состоящего из эфиров холестерина (ХС) и триглицеридов (ТГ), окруженных фосфолипидами (ФЛ) и одной молекулой апоВ100. Наличие апо(а) в структуре Лп(а) увеличивает плотность последнего по сравнению с ЛНП и снижает сродство к рецепторам ЛНП. Апо(а) состоит из множества копий последовательностей, сходных с IV кринглем плазминогена, за которыми следуют домены, аналогичные таковым для плазминогена. В отличие от плазминогена протеазный домен апо(а) не активен и не взаимодействует с тканевым и урокиназным активатором плазминогена. Для апо(а) существует до 10 типов IV крингля, из которых 1-й и с 3-го по 10-й типы имеются в одной копии всех изоформ апо(а). Домен IV крингля 2-го типа (КIV-2) варьирует в количестве повторяющихся копий, что служит молекулярной основой гетерогенности изоформ Лп(а). В формировании ковалентной дисульфидной связи с апоВ100 участвует один «непарный» остаток цистеина, находящийся в IV крингле 9-го типа. Число копий КIV-2 определяется различными аллелями гена LPA. У каждого крингля есть свой уникальный участок связывания со специфическим субстратом. Так, КIV-9 связан также с пролиферацией и миграцией гладких мышечных клеток, КIV-6 и КIV-7 участвуют в формировании пенистых клеток, КIV-9 и КIV-10 совместно с КV ингибируют ангиогенез. Адаптировано из [2].

В 1987 г. группа, возглавляемая R. Lawn, показала, что ген LPA, кодирующий синтез апо(а), высоко гомологичен плазминогену и располагается на длинном плече 6-й хромосомы (6q26—27) [3]. Считается, что ген LPA эволюционировал из гена плазминогена PLG около 40 млн лет назад и обнаруживается только у европейского ежа, приматов и человека [4].

В отличие от гена PLG в LPA отсутствуют с 1-го по 3-й крингли, но присутствуют до 10 различных подтипов IV крингля. КIV-2 варьирует в повторах копий от 2 до >40 в одном аллеле, что определяет наличие различных изоформ апо(а) и делает LPA и апо(а) самыми полиморфными геном и белком в природе. Для определения числа копий КIV-2 в различных аллелях используется метод электрофореза в агарозном геле, тогда как подсчет суммы копий в обоих аллелях анализируемого гена проводится с помощью количественной полимеразной цепной реакции. Ген LPA экспрессируется преимущественно в печени [5].

Концентрация Лп(а) в крови является генетически обусловленным фактором и определяется генетической вариацией в 2 аллелях кодирующего гена [6]. В зависимости от используемого генетического метода и изучаемой этнической популяции показано, что от 30 до 90% вариабельности уровня Лп(а) в плазме крови определяется как геном LPA, так и/или количеством повторов КIV-2 [7]. В европейской популяции число повторов КIV-2 объясняет 21—27% вариаций в концентрации Лп(а), дополнительный вклад вносят ряд однонуклеотидных полиморфизмов (ОНП), располагающихся на длинном плече 6-й хромосомы, в том числе такие варианты, как rs3798220, rs10455872, rs9457951, rs41272110 [8]. Количество копий КIV-2 обратно коррелирует с уровнем Лп(а): низкомолекулярные изоформы (малое количество повторов) апо(а) ассоциируются с высоким уровнем Лп(а), в то время как высокомолекулярные изоформы (крупные) – ­с низким уровнем Лп(а) [9].

Концентрация Лп(а) варьирует в широких пределах, различаясь в популяции в 1000 раз — от менее 0,1 до 300 мг/дл и более, тогда как концентрация ЛНП среди людей различается в 5 раз [6,10]. Для концентрации Лп(а) характерно неправильное распределение со смещением в сторону более низких значений без половых различий. Более низкая концентрация Лп(а) от­мечена у европейцев (медиана 12 мг/дл, интерквартильный размах 5—32), китайцев и японцев (13 мг/дл; 5—26 мг/дл), несколько выше уровень Лп(а) у латиноамериканцев (19 мг/дл; 8—43 мг/дл), самые высокие уровни Лп(а) встречаются у представителей негроидной расы (39 мг/дл; 19—69 мг/дл) [11].

В единственном российском исследовании (n=2120) по изучению роли Лп(а) в популяции его концентрация у мужчин составила 16 мг/дл; 5—44 мг/дл, у женщин 16 мг/дл; 6—48 мг/дл [12].

Многие вопросы метаболизма, физиологической и патофизиологической роли Лп(а) остаются пока открытыми. Традиционно считается, что процесс сборки апоВ и апо(а) в частицу Лп(а) складывается из двух этапов [13, 14]. Исходно различные домены апоВ (лизиновые остатки) нековалентно связываются с апо(а) (KIV-7 и -8), и эта стадия является обратимой. Затем происходит формирование дисульфидной связи между цистеиновыми остатками апо(а)-4057 и апоВ-4326 [15]. Являясь олигомерным белковым комплексом, Лп(а) может образовываться в эндоплазматической сети гепатоцита и секретироваться уже как цельная структура [16]. Кроме того, многие авторы, основываясь на экспериментальных моделях, считают, что вновь синтезированный апо(а) может внеклеточно связываться с циркулирующими ЛНП или липопротеидом очень низкой плотности (ЛОНП).

Изучение метаболизма Лп(а) возможно на моделях трансгенных мышей, у которых экспрессируются апо(а) и апоВ, или на обезьянах. Исследования in vivo по кинетике Лп(а) у человека демонстрируют неоднозначные результаты. При использовании стабильных изотопов показан внутриклеточный путь формирования частицы Лп(а) [17]. В 2 более поздних работах показано, что Лп(а) собирается как из образованного в печени, так и из циркулирующего в крови ЛНП [18, 19]. При изучении метаболизма Лп(а) у 9 здоровых мужчин (34±10 лет) со средним уровнем Лп(а) 42 мг/дл на основании полученной разницы между скоростью синтеза апо(а) и апоВ для частиц Лп(а) и для ЛНП при многокомпонентном моделировании сделан вывод о преимущественно (около 92%) внутриклеточной сборке Лп(а) [20]. У пробандов низкомолекулярный фенотип апо(а) ассоциировался не только с более высокой концентрацией Лп(а) в крови, но и с более длительным временем циркуляции апо(а) в плазме по сравнению с лицами с высокомолекулярным фенотипом, что свидетельствует о потенциально большей атерогенности малых изоформ апо(а). После синтеза Лп(а) циркулирует в крови более длительное время, чем ЛНП [9]. Эта разница обусловлена различием в скорости синтеза изоформ разного размера. Малые изоформы секретируются быстрее, чем крупные. Разница в уровне Лп(а) между лицами с одинаковыми размерами изоформ апо(а) также объясняется разностью в скорости синтеза Лп(а), нежели в скорости каталитического распада [21].

В выведении Лп(а) и его компонентов из циркуляторного русла описаны 3 основных пути через рецепторы ЛНП, почки и сосудистую стенку [22]. В деградации Лп(а) принимают участие также печень, селезенка и мышцы [23]. Следует отметить, что у больных с генетическим дефектом рецепторов к ЛНП определяются повышенные значения Лп(а), тогда как на моделях мышей с повышенной экспрессией рецепторов ЛНП уровень Лп(а) снижен [24]. В исследованиях in vivo с радиоактивно меченным Лп(а) у больных гомозиготной и гетерозиготной семейной гиперхолестеринемией (СГХС) был исключен его клиренс через рецепторы к ЛНП как основной путь катаболизма Лп(а) [25].

Таким образом, до настоящего времени до конца не изучены пути, регулирующие синтез и клиренс Лп(а). Несмотря на то что ряд механизмов атерогенного действия Лп(а) был описан, вклад и значимость каждого из них нуждаются в дальнейшем изучении.

Патофизиологическая роль Лп(а). Особенности строения позволяют рассматривать Лп(а) как «мост» между процессами атерогенеза и тромбообразования. В исследованиях in vivo показано, что частицы Лп(а), как и ЛНП, способны проникать внутрь сосудистой стенки как по механизму простого макромолекулярного просеивания и связывания с гликозоаминогликанами, так и по рецепторному механизму, подвергаясь захвату рецепторами эндотелиоцитов к апоВ и к плазминогену [26]. При этом отмечается дозозависимый эффект: чем выше концентрация Лп(а) в плазме, тем интенсивнее происходит его накопление в сосудистой стенке [27]. Апо(а) способен связываться с поврежденными эндотелиальными клетками и экспрессируемыми матриксными белками субэндотелия, тем самым участвуя в доставке ХС для формирования клеточных мембран. При наличии факторов окислительного и воспалительного стресса повышенный уровень Лп(а) начинает проявлять свой патогенный потенциал, участвуя в накоплении ХС в атеросклеротических бляшках и венозных шунтах как в комплексе с апоВ [28, 29], так и в свободной форме [30].

В одном из первых морфологических исследований аорты и коронарных артерий с использованием специфических к апо(а) моноклональных антител показано, что апо(а) и апоВ локализуются в атеросклеротически измененных участках преимущественно во внеклеточном матриксе, и в меньшем количестве оба антигена определялись в пенистых и гладких мышечных клетках [31]. При исследовании участков восходящей аорты, полученных при наложении проксимальных анастомозов во время операции коронарного шунтирования, выявлено отложение Лп(а) в сосудистой стенке, причем показана тесная корреляция между его уровнем в плазме крови и содержанием в стенке [32]. При иммуногистохимическом анализе апо(а) ассоциировался с фиброзными структурами сосудистой стенки. Белки апоВ и апо(а) определялись и в стенке венозных шунтов, но в меньших концентрациях. Авторы сделали вывод, что Лп(а) способен накапливаться в интиме сосудов годами, не подвергаясь значительной деградации. В образцах коронарных артерий у больных как со стабильной, так и с нестабильной стенокардией установлено наличие Лп(а) в атеросклеротических бляшках [33]. Иммуногистохимическое окрашивание образцов, полученных при коронарной эндартерэктомии, у больных с острым инфарктом миокарда (ИМ, n=19), с нестабильной стенокардией (n=12) и со стабильной стенокардией (n=13) показало существенно более высокое содержание ингибитора активатора плазминогена-1 и апо(а) при ИМ и нестабильной стенокардии (11,7±7,1 и 11,1±5,5% соответственно) по сравнению с группой со стабильным течением ишемической болезни сердца — ИБС (3,9±1,5%). Наблюдалась прямая связь между уровнем апо(а) и плотностью распределения макрофагов в бляшке (r=0,56; p<0,001) [34].

В исследованиях in vitro показано, что Лп(а) способен связываться с несколькими белками внеклеточного матрикса, включая фибрин [35] и дефенсины — семейство аминокислотных пептидов, выделяющихся нейтрофилами при воспалении и острой инфекции [36]. Вероятно, дефенсины, как и липопротеинлипаза, выполняют функцию «моста» между Лп(а) и внеклеточным матриксом. Меньшее количество Лп(а) проникает в сосудистую стенку при непосредственном захвате Лп(а) макрофагами с формированием пенистых клеток [37], тогда как данный путь является основным для ЛНП. Следовательно, можно предположить, что роль Лп(а) в формировании атеросклеротической бляшки отличается от таковой для ЛНП.

Лп(а) конкурирует с плазминогеном за связывание с рецепторами эндотелиоцитов, макрофагов, тромбоцитов, с фибрином и тканевым активатором плазминогена (ТАП), тем самым угнетая активацию плазминогена, продукцию плазмина, и наконец, фибринолиз. Продемонстрировано, что Лп(а) ингибирует опосредованную стрептокиназой и урокиназой активацию плазминогена [26]. Усиление коагуляции возможно и за счет прямого подавления функции ингибитора тканевого фактора [38]. По сравнению с большими изоформами (S3 или S4) низкомолекулярные изоформы (B или S1) апо(а) обладают бо'льшим потенциалом ингибировать эндогенный фибринолиз [39].

Длительное пребывание апо(а) в стенке артерии способствует запуску процессов перекисно-радикального окисления и захвату скевенджер-рецепторами макрофагов с образованием пенистых клеток [40]. Между апо(а) и окисленными фосфолипидами (окФЛ) описана ковалентная связь. Считается, что среди других содержащих апоВ липопротеидов частица Лп(а) является основным переносчиком окФЛ в плазме крови человека. Более того, концентрация окФЛ/апоВ в крови существенно коррелирует с уровнем Лп(а) (r=0,9; p<0,0001) [41]. Варианты rs3798220 и rs10455872 гена LPA [42], как и низкомолекулярные изоформы апо(а) [43], ассоциируются с более высокими значениями окФЛ/апоВ. ОкФЛ иммуногенны и накапливаются в атеросклеротических бляшках, приводя к их дестабилизации. Комплекс Лп(а) и окФЛ выявляется в фиброатеромах с тонкой покрышкой, т.е. в бляшках с нестабильным фенотипом [44].

Известно, что окФЛ являются субстратом для действия фосфолипазы А2 (ФЛА2). В плазме крови лиц без гиперлипидемии и с низким уровнем Лп(а), липопротеид-ассоциированная ФЛА2 (Лп-ФЛА2) в основном связана с ЛНП, в меньшей степени с липопротеидами высокой плотности (ЛВП) [45]. При исследовании в эквимолярных концентрациях показано, что по сравнению с ЛНП Лп(а) содержит в 1,5—2 раза больше Лп-ФЛА2 по массе [46] и в несколько раз больше по ее активности [47]. Ряд ученых выделяют Лп(а)-ассоциированную ФЛА2 как высокогликозилированный белок, имеющий сходные физико-химические и каталитические свойства с ЛНП-ассоциированной ФЛА2 [48]. Основная роль в присоединении Лп-ФЛА2 к Лп(а) принадлежит апоВ части Лп(а), но не апо(а). Следует отметить, что у лиц, имеющих низкомолекулярный фенотип апо(а), отмечаются не только повышенная концентрация Лп(а), но и значимое повышение уровня окФЛ и активности Лп-ФЛА2 [49].

Таким образом, экспериментальные данные свидетельствует о том, что благодаря сходству с ЛНП и плазминогеном Лп(а) обладает атеротромбогенным потенциалом и участвует в процессах воспаления. Уровень циркулирующего Лп(а) определяет выраженность атеросклероза и риск развития сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ) на протяжении всей жизни человека. Лп(а) является одним из немногих факторов риска (ФР), участвующих в развитии атеросклероза как на ранних, так и на поздних стадиях. Необходимо дальнейшее изучение механизмов, за счет которых Лп(а) вносит свой вклад в развитие ССЗ.

Прогностическое значение Лп(а). Роль Лп(а) как ФР развития атеротромбоза изучалась в течение многих лет, и в результате были получены данные, демонстрирующие причинную роль повышенного уровня Лп(а) в преждевременном развитии ССЗ. Уровень Лп(а) более 25 мг/дл встречается примерно у 30% представителей европеоидной и у 60—70% негроидной расы [50]. По данным эпидемиологических исследований, около 40% больных с высоким риском развития ИБС имеют повышенный уровень Лп(а), и только в 14% случаев гиперлипопротеидемия(а) (ГЛп(а)) определяется у лиц из группы низкого риска развития ИБС [6].

В рамках проспективных популяционных исследований показано, что высокий уровень Лп(а) имеет непрерывную и независимую связь с повышенным риском развития ССЗ и прогрессированием атеросклероза различных сосудистых бассейнов. В крупном мета-анализе 36 проспективных исследований (n=126 634) Лп(а) в диапазоне 50–200 мг/дл независимо ассоциировался с увеличением риска развития нефатального ИМ и сердечно-сосудистой смерти на 15—25% [51]. В мета-анализе 31 проспективного исследования, включившего 9870 случаев ИБС, продемонстрировано увеличение риска развития коронарных осложнений у лиц с повышенным уровнем Лп(а) в 1,5 раза [52]. В исследовании Physicians' Health Study продемонстрировали 4-кратное увеличение риска развития стенокардии у мужчин с уровнем Лп(а) более 60 мг/дл (>95-го процентиля) [53]. В течение 10 лет наблюдения за 27 000 женщин в исследовании Women’s Health Study (WHS) уровень Лп(а) более 44 мг/дл ассоциировался с увеличением риска развития сердечно-сосудистых осложнений (ССО) в 2 раза [54]. В исследовании Copenhagen City Heart Study у 9330 лиц из общей популяции отмечалось неуклонное увеличение риска развития ИМ при уровне Лп(а) более 30 мг/дл. При сроке наблюдения менее 10 лет и уровне Лп(а) более 120 мг/дл (95-й процентиль) риск развития ИМ возрастал в 3—4 раза [55]. В мета-анализе 11 исследований по вторичной профилактике с участием в общей сложности 18 978 больных наибольший вклад повышенного уровня Лп(а) в развитие ишемических осложнений наблюдался у лиц с уровнем ХС ЛНП >3,4 ммоль/л (отношение шансов — ОШ — 1,5 при 95% доверительном интервале — ДИ — от 1,23 до 1,73; р<0,001), при низких уровнях ХС ЛНП связь между Лп(а) и ССО не достигала статистической значимости [56].

В российском проспективном исследовании длительностью до 15 лет установлена прогностическая значимость Лп(а) в отношении развития ИМ, смертельных исходов, обострений стенокардии с госпитализацией при консервативном, эндоваскулярном и хирургическом лечении ИБС. Было показано, что при хронической форме ИБС частота высокого (более 30 мг/дл) уровня Лп(а) среди мужчин достигает 39%, у женщин — 48%, тогда как у больных без ИБС она составляет 12—15%. Уровень Лп(а) более 30 мг/дл ассоциировался с более ранним развитием ИБС как у мужчин (в среднем на 1,2 года), так и у женщин (на 2,7 года). В работе не выявлено связи между Лп(а) и такими классическими ФР, как возраст, артериальная гипертония, семейный анамнез ИБС, курение, ожирение, сахарный диабет, концентрация фибриногена и С-реактивного белка. Наличие повышенного Лп(а) ассоциировалось с увеличением риска развития ССО в 1,5 раза в течение 6 лет после эндоваскулярного лечения. В группе консервативного лечения при высоком уровне Лп(а) отмечено увеличение риска развития ССО в 2,5 раза. При наблюдении за больными в течение первого года после чрескожных коронарных вмешательств обнаружена прямая связь между уровнем Лп(а) и прогрессированием атеросклероза в нативных коронарных артериях, а также развитием рестеноза внутри стентов без лекарственного покрытия [57]. При наблюдении за 102 больными с возвратом стенокардии в течение первого года после операции коронарного шунтирования установлено, что повышенный уровень Лп(а) ассоциируется с окклюзирующим поражением венозных анастомозов: 24 мг/дл (17—42 мг/дл) по сравнению с 12 мг/дл (6—24 мг/дл) у больных с проходимыми шунтами (p<0,01) [58]. При дальнейшем наблюдении за 361 больным с хронической формой ИБС в сроки до 10 лет после операции коронарного шунтирования высокий уровень Лп(а) являлся независимым предиктором ССО, увеличивая риск в 3,2 раза [59].

В исследовании ARIC высокий уровень Лп(а) был связан с развитием ССО у афроамериканцев (n=3467), в такой же степени, как и у лиц европеоидной расы (n=9851) [11]. В  течение 20 лет наблюдения было зарегистрировано 676 ССО у представителей негроидной расы и 1821 — у европеоидной. После поправки на расу риск развития ИБС увеличивался на 11 и 10%, риск ишемического инсульта — на 21 и 7% соответственно. Несколько парадоксальным является то, что в 3 раза более высокая концентрация Лп(а) у представителей негроидной расы ассоциировалась с таким же риском развития ССО, наблюдаемым у представителей европеоидной расы.

В исследованиях с участием больных с СГХС повышенный уровень Лп(а) увеличивал риск развития ССО дополнительно к повышенному уровню ХС ЛНП. Более того, у больных данной категории уровень Лп(а) был в 2—3 раза выше, чем у контрольных лиц с соответствующими изоформами, в связи чем ГЛп(а) может рассматриваться как клиническое проявление СГХС [60]. В крупном канадском исследовании у больных с гетерозиготной СГХС (n=388) уровень Лп(а) ≥56 мг/дл ассоциировался с увеличением риска развития ССО в 2,6 раза (р<0,001), независимо от традиционных ФР [61]. В исследовании у 2400 больных СГХС из 27 голландских липидных клиник уровень Лп(а) >30 мг/дл приводил к увеличению риска развития ишемических осложнений на 50% [62]. В ретроспективном анализе исследования FATS среди всех оцениваемых параметров, в том числе традиционных ФР, наиболее сильная связь с исходной выраженностью поражения коронарного русла получена для Лп(а) (r=0,45; р<0,01) [63].

В исследовании 4S у больных ИБС, имевших более высокий уровень Лп(а), чаще развивались коронарные осложнения и смерть, несмотря на терапию симвастатином, по сравнению с группой с более низкими уровнями Лп(а) [64]. В крупном ангиографическом исследовании из программы GeneBank уровень Лп(а) >30 мг/дл был связан с увеличением вероятности стенозирующего поражения коронарного русла в 2,3 раза, риска трехсосудистого поражения в 1,5 раза, а также с риском развития ишемических осложнений (смерть, ИМ, инсульт, реваскуляризации) при уровне ХС ЛНП более 1,8 ммоль/л [65]. Важно подчеркнуть, что в исследовании AIM-HIGH на фоне интенсивной гиполипидемической терапии, включавшей симвастатин, эзетимиб и ниацин, у больных с уровнем ХС ЛНП <1,8 ммоль/л повышенный уровень Лп(а) сохранял свою связь с риском развития ССО [66]. В исследовании JUPITER у лиц, принимавших розувастатин 20 мг (n=9612), Лп(а) был связан с увеличением риска развития ССО на 27%, независимо от уровня ХС ЛНП [67].

Изоформы апо(а) независимо от концентрации Лп(а) вносят самостоятельный вклад в риск развития ССО. Так, в мета-анализе 40 исследований (11 000 случаев и 46 000 лиц контрольной группы) у лиц с низкомолекулярным фенотипом апо(а) риск развития ИБС и инсульта был повышен в 2 раза по сравнению с таковым у лиц, имеющих крупные изоформы апо(а) (KIV-2 >22 повторов, молекулярная масса ≥640 kDa) [49]. В мета-анализе 3 популяционных исследований максимальный риск развития ССО был отмечен у лиц в верхнем квартиле КIV-2 (41—99 повторов) апо(а) по сравнению с нижним квартилем (6—30 повторов) [68].

Таким образом, повышенный уровень Лп(а) имеет прямую непрерывную и независимую связь с повышенным риском развития ИБС. В проспективных исследованиях показано, что наличие низкомолекулярного фенотипа апо(а) служит значимым предиктором ССО. Лп(а) является одним из компонентов остаточного риска, наблюдаемого на фоне терапии статинами.

Генетические исследования связи Лп(а) с атеросклерозом.Генетические исследования, выполненные в последние 2 десятилетия, продемонстрировали, что Лп(а) является наиболее значимым из исследуемых генетических ФР развития коронарной болезни. В гене LPA обнаружены несколько ОНП, ассоциирующихся с ИБС, выраженностью коронарного атеросклероза и высоким уровнем Лп(а), из которых наибольшее значение имели 2 варианта — rs3798220 и rs10455872. Аллель rs3798220 локализован в участке, кодирующем протеазный домен апо(а), и является миссенс-вариантом, кодирующим аминокислотную замену Ile4399 на Met; ОНП rs10455872 не приводит к аминокислотной замене [69].

С помощью генетических методов доказано, что повышенный уровень Лп(а) является не следствием выраженности атеросклероза и его клинических проявлений, а непосредственным причинным фактором, лежащим в основе заболевания. Так, низкомолекулярные изоформы (11—22 повторов IV крингля) ответственны за повышенный уровень Лп(а) на 50%, и совместно с повышенным Лп(а) имеют прямую значимую связь с развитием ИБС [60].

В исследовании PROCARDIS, включившем 3145 больных ИБС и 3352 лица контрольной группы, проведено генотипирование 49000 ОНП в 2100 генах-кандидатах ССЗ [69]. Два аллеля, связанные с полиморфизмом КIV-2 апо(а), показали самую тесную корреляцию с ИБС. Эти аллели обнаруживались у 1 из 6 участников исследования и объясняли 36% вариабельности уровня Лп(а) в плазме. ОШ наличия ИБС составило 1,51 (при 95% ДИ от 1,38 до 1,66) в присутствии одного аллеля и 2,57 (при 95% ДИ от 1,80 до 3,67) при наличии 2 аллелей. Оба варианта (rs10455872, распространенность 6,2% и rs3798220, распространенность 1,4%) ассоциировались с повышенным уровнем Лп(а) и малым размером апо(а). С этими данными согласуются результаты исследования, в котором было проверено 12 000 ОНП различных генов, и только один, расположенный в гене, ответственном за синтез апо(а), имел достоверную связь с тяжелым коронарным атеросклерозом [70]. У носителей варианта rs3798220 медиана концентрации Лп(а) была в 5 раз выше, а ОШ наличия ИБС составило 3,14.

В мета-анализе 16 исследований с rs3798220 и 6 исследований с rs10455872 показано, что минорный аллель G rs10455872 увеличивает риск развития ИБС на 42%, тогда как замена на метионин в 4399-й позиции (rs3798220) ассоциируется с повышением риска на 57% у его носителей [71].

В анализе с применением менделевской рандомизации, который включил 40 000 лиц из 3 крупных когортных датских исследований (Copenhagen City Heart Study, CCHS; Copenhagen General Population Study, CGPS; Copenhagen Ischemic Heart Disease Study, CIHDS), показано, что генетически обусловленный повышенный уровень Лп(а) связан с повышенным риском развития ИМ, что отражает причинную связь Лп(а) в развитии ИМ в популяции [68]. При многофакторном анализе результатов исследования CCHS (n=7524) показано неуклонное увеличение риска развития ИМ в зависимости от концентрации Лп(а): при уровне Лп(а) 5—29 мг/дл относительный риск был равен 1,2 (при 95% ДИ от 0,9 до 1,6); при уровне 30—76 мг/дл отмечалось значительное увеличение риска развития ИМ в 1,6 (95% ДИ от 1,1 до 2,2) раза; при уровне Лп(а) в диапазоне 77—117 мг/дл — в 1,9 (95% ДИ от 1,2 до 3,0) раза, наконец, при уровне Лп(а) >117 мг/дл – в 2,6 (95% ДИ от 1,6 до 4,1) раза. Связь между уровнем Лп(а) и риском развития ИМ не зависела от возраста, пола, концентрации ХС (после коррекции на уровень Лп(а)), ТГ, индекса массы тела, наличия менопаузы, сахарного диабета, курения, липидснижающей и гормональной терапии. Во всех возрастных группах (29—93 года) отмечена обратная связь между числом повторов КIV-2 и уровнем Лп(а). В исследовании CCHS средние уровни Лп(а) для первого (6—30 повторов), второго (31—35), третьего (36—40) и четвертого (41—99) квартилей распределения повторов КIV-2 составили 56, 31, 20 и 15 мг/дл соответственно. В исследовании CGPS соответствующие уровни Лп(а) достигали 60, 34, 22 и 19 мг/дл [68]. В исследуемой популяции у 10% лиц имелись крайне высокие уровни Лп(а), для них было характерно увеличение риска развития ИМ в 2—3 раза.

Была изучена связь описанных риск-аллелей с сосудистыми заболеваниями, такими как ишемический инсульт (n=9396), периферический атеросклероз (n=5215), аневризмы брюшной аорты (n=4572), венозные тромбозы (n=4607), интракраниальные аневризмы (n=1328), коронарный атеросклероз (n=12716). В 35 исследованиях случай—контроль оценивалась «нагрузка» геном LPA, которая была определена как число малых аллелей rs10455872 и rs3798220. Была получена статистически значимая связь между «нагрузкой» геном LPA и ишемическим инсультом, риск развития которого увеличивался на 10% (р=0,016), риск развития периферического атеросклероза и аневризм брюшной аорты увеличивался на 47 и 36% соответственно. Была подтверждена связь между коронарным атеросклерозом и «нагрузкой» геном LPA у представителей европеоидной расы (ОШ 1,32 при 95% ДИ от 1,24 до 1,42) и афроамериканцев (ОШ 2,49 при 95% ДИ от 1,08 до 5,72; р=0,03). Напротив, несмотря на подтвержденное участие Лп(а) в тромбообразовании в исследованиях in vitro, связь между «нагрузкой» LPA и венозными тромбозами не обнаружена (р=0,63) [72]. Кроме того, не выявлено связи между уровнем Лп(а) и частотой формирования внутричерепных аневризм. При корреляции «нагрузки» LPA с возрастом манифестации ИБС каждый из риск-аллелей ассоциировался с выявлением ИБС в возрасте в среднем на 1,6 года моложе, чем в их отсутствие [73].

В другом мета-анализе (n=41 321) с использованием менделевской рандомизации также не выявлено связи между уровнем Лп(а), генотипом LPA и частотой развития венозных тромбозов, однако определялась взаимосвязь с наличием стенозирующего атеросклероза коронарных, сонных и бедренных артерий, и что важно, с риском развития ИМ [74].

Таким образом, результаты генетических исследований подтверждают причинную роль повышенного уровня Лп(а) в преждевременном развитии атеросклероза и его осложнений. Статистически значимая связь Лп(а) с частотой развития ИБС и, в частности, ИМ, показана во всех исследованиях, изучавших следующие показатели: 1) количество повторов КIV-2 методом гель-электрофореза в пульсирующем поле; 2) суммы повторов КIV-2 методом полимеразной цепной реакции в реальном времени; 3) изоформы апо(а); 4) ОНП гена LPA; 5) общегеномного анализа гаплотипа. Результаты этих исследований служат важной предпосылкой для следующего этапа доказательства атерогенности Лп(а) с коррекцией высокого уровня Лп(а) с целью снижения риска развития ССО.

Место Лп(а) в современных рекомендациях. По мнению экспертов Европейского общества по атеросклерозу (EAS), однократное измерение уровня Лп(а) следует выполнить у больных молодого возраста с ИБС, у лиц с СГХС, с отягощенным по ИБС семейным анамнезом и/или при наличии повышенного уровня Лп(а) у ближайших родственников, у лиц с риском ≥3% по шкале SCORE и ≥10% по Фрамингемской шкале [75]. Эксперты пришли к соглашению о необходимости снижать уровень Лп(а) менее 80-го процентиля (<50 мг/дл) с помощью ниацина 1—3 г/сут. В совместных рекомендациях EAS и Европейского общества кардиологов (ESC) по лечению дислипидемий отмечено, что Лп(а) следует определять у лиц с высоким риском развития ССЗ и отягощенным семейным анамнезом — уровень IIа, класс С [76], тогда как в общей популяции скрининг на Лп(а) нецелесообразен. У лиц с повышенным уровнем Лп(а) рекомендовано более интенсивно проводить коррекцию традиционных ФР. Авторы американского руководства по клинической липидологии под редакцией C. Ballantyne считают оправданным определение уровня Лп(а) у больных из группы умеренного риска развития ССЗ с целью рестратификации риска. Лица с уровнем Лп(а) >30 мг/дл (75 нмоль/л) должны подвергаться более интенсивной модификации ФР развития ССЗ [2]. В американских рекомендациях (версия 2013 г.) по коррекции нарушений липидного обмена не указана целесообразность снижения высокого уровня Лп(а) [77]. В консенсусе американских экспертов-липидологов (2011 г.) Лп(а) рекомендовано определять у больных с отягощенным семейным анамнезом и рецидивирующими коронарными осложнениями, кроме того, рассмотреть вопрос измерения Лп(а) у всех больных ИБС и ее эквивалентами, а также у лиц из группы промежуточного риска развития ССО [78]. Предложено выделять группу низкого риска при уровне Лп(а) <5 мг/дл, умеренного риска — при Лп(а) 5—49 мг/дл и высокого риска — при Лп(а) ≥50 мг/дл. В канадских рекомендациях уровень Лп(а) >30 мг/дл рассматривается как ФР, ассоциированный с развитием ССЗ [79]. Нам представляется наиболее корректным считать высокой концентрацию Лп(а) при превышении 75-го процентиля [80].

Вопрос ведения лиц с повышенным уровнем Лп(а) освещен в рекомендациях нескольких международных обществ по терапевтическому аферезу, которые считают обоснованным более активное лечение больных с данной формой наследственной дислипидемии. Основным показанием к назначению афереза липопротеидов могут быть прогрессирующее течение ССЗ и уровень Лп(а) >60 мг/дл. Так, британская рабочая группа HEART-UK рекомендует аферез липо-протеидов у больных, подходящих под указанные критерии и имеющих уровень ХС ЛНП >3,2 ммоль/л, несмотря на максимально переносимую гиполипидемическую терапию [81]. Согласно документу Американского общества по аферезу, целесообразно снижать уровень Лп(а) на 40—60% у больных СГХС с недостигнутым целевым уровнем ХС ЛНП на фоне медикаментозной терапии [82]. Наиболее полные рекомендации предложены Комитетом специалистов Германии, из которых следует, что аферез липопротеидов необходимо проводить у больных, у которых в течение 3 мес адекватная диета и медикаментозная липидснижающая терапия не привели к нормализации уровня ХС ЛНП и Лп(а): в первичной профилактике у больных СГХС при уровне ХС ЛНП >160 мг/дл (4,2 ммоль/л) и ССО у ближайших родственников; во вторичной профилактике у больных с прогрессирующим течением ССЗ и уровнем ХС ЛНП >120—130 мг/дл (3,1—3,4 ммоль/л), а также в случаях изолированного повышения уровня Лп(а) >60 мг/дл [83]. Согласно российским Рекомендациям, одним из показаний к проведению афереза является ИБС у больных, перенесших операцию по реваскуляризации миокарда, при уровне Лп(а) ≥60 мг/дл (IIа С) [84].

В крупном исследовании с использованием Фра­мин­гемской шкалы было показано, что из 100 000 взрослых старше 40 лет 15 436 находились в категории умеренного риска. Дополнительное определение уровня Лп(а) привело к переходу в категорию высокого риска 4,1% лиц, что уже требовало назначения статинов [85]. Недавно опубликованы данные о значении включения Лп(а) в стратификационные шкалы. В популяционном исследовании с периодом наблюдения до 17 лет среди 8720 датчан старше 20 лет уровень Лп(а) >47 мг/дл позволил дополнительно реклассифицировать 23% случаев ИМ и 12% случаев ИБС. Наибольшая польза от использования Лп(а) наблюдалась у лиц категории промежуточного риска, что позволяло с высокой долей достоверности провести их рестратификацию в категорию высокого риска в отсутствие ложноположительных или ложноотрицательных результатов [86]. У больных с острым коронарным синдромом без подъема сегмента ST (n=115, 64±11 лет) клинически значимыми предикторами ССО оказались ИМ в анамнезе (ОШ 2,97 при 95% ДИ от 1,41 до 6,24) и уровень Лп(а) (6,28 при 95% ДИ от 1,36 до 28,93). При включении уровня Лп(а) в шкалу GRACE Лп(а) оставался независимым предиктором неблагоприятного прогноза в течение 1 года (2,59 при 95% ДИ от 1,40 до 4,78) [87]. При учете количества повторов KIV-2 ≤29, реклассификации по ИМ и ИБС были подвергнуты дополнительно 12 и 4% пациентов соответственно; для носителей rs10455872 (13% носители) ­16 и 2% соответственно; умеренный результат был получен для носителей rs3798220 (2% носители) ­– 15 и 10% соответственно.

Таким образом, включение в классические модели оценки риска развития ИМ и ИБС в ближайшие 10 лет повышенного уровня Лп(а) приводит к статистически значимому улучшению их прогностической оценки. Наиболее выраженный результат реклассификации наблюдался в группе лиц с умеренным 10-летним риском коронарных осложнений. Оптимальная реклассификация наблюдается при включении в традиционные стратификационные шкалы повышенного уровня Лп(а) и числа повторов KIV-2 или rs10455872 [88].

Ограничения формулы Фридвальда у лиц с повышенным уровнем Лп(а). При определении уровня ХС ЛНП учитывается также ХС, входящий в состав Лп(а), вследствие чего у лиц с повышенным уровнем Лп(а) происходит завышение значений ХС ЛНП. Учитывая, что Лп(а) состоит приблизительно на 45% из ХС, завышение содержания ЛНП может быть незначимым, например, на 4,5 мг/дл (0,1 ммоль/л) при уровне Лп(а) 10 мг, но возможна его существенная переоценка на 45 мг/дл (1,16 ммоль/л) при Лп(а) 100 мг/дл [60]. Поэтому одним из объяснений недостаточного эффекта от терапии статинами является повышенный уровень Лп(а) [89]. Так, в общегеномном исследовании, включившем данные исследований CARDS и ASCOT, показано, что в выраженности снижения концентрации ХС ЛНП на фоне лечения статинами играют роль 2 гена — ­APOE (rs445925 иrs4420638) и LPA (rs10455872) [90]. Следует заметить, что терапия статинами одинаково влияла на прогноз ССЗ как при высоких, так и при низких уровнях Лп(а). Авторы сделали вывод о целесообразности измерения Лп(а) у больных с недостаточным гиполипидемическим эффектом статинов.

В популяции больных с нефротическим синдромом (n=481) Лп(а) являлся предиктором плохого ответа на терапию статинами [91]. У больных основной группы со средним уровнем Лп(а) 60 мг/дл уровень ХС ЛНП, корригированный по уровню Лп(а), был на 0,7 ммоль/л ниже. В группе контроля при среднем уровне Лп(а) 20 мг/дл уровень ХС ЛНП без коррекции превышал истинные значения лишь на 0,2 ммоль/л. Известно, что у больных с гетерозиготной СГХС терапевтический ответ на прием статинов зависит от мутации гена и исходного уровня ХС ЛНП [92]. В исследовании с участием 49 больных СГХС, получавших лечение аторвастатином 20 мг, выявлена отрицательная связь между уровнем Лп(а) и степенью снижения ХС ЛНП (r=­0,5; p=0,006). Это свидетельствует о том, что уровень Лп(а) является независимым фактором, влияющим на гиполипидемический эффект статинов [93].

Целесообразность снижения высокого уровня Лп(а). Для доказательства патогенности Лп(а) необходимо соблюдение следующих условий: 1) высокая концентрация Лп(а) должна быть связана с развитием ССО; 2) снижение повышенного уровня Лп(а) должно приводить к улучшению течения заболевания [60]. Ключевой вопрос в науке об Лп(а) в настоящее время: ­приведет ли изолированное снижение Лп(а) к улучшению сердечно-сосудистого прогноза в первичной или вторичной профилактике или только в отдельных группах?

В арсенале средств, влияющих на уровень Лп(а) из одобренных к клиническому применению, есть две возможности — ниацин и аферез липопротеидов. Никотиновая кислота снижает уровень информационной РНК LPA как у трансгенных мышей, так и в клеточной линии гепатоцитов [94]. Кроме того, ниацин ингибирует синтез ТГ за счет внутриклеточной деградации апоВ на этапе синтеза (блокада диацилглицеринацилтрансферазы 2) [95, 96]. Ниацин дозозависимо снижает уровень Лп(а) от 7 до 40% [97]. В рандомизированном исследовании среди больных ИБС снижение уровня Лп(а) с 84±40 до 67±37 мг/дл через 6 мес лечения ниацином в комбинации с аторвастатином (n=30) сопровождалось значимым уменьшением толщины интимы—медии (ТИМ) общей сонной артерии (ОСА) в среднем на 0,06 мм с 0,82±0,18 мм (р<0,01) [98]. Корреляционный анализ показал, что уменьшение ТИМ ОСА было связано со снижением концентрации Лп(а) (r=0,42; p=0,04), но не с изменениями уровня ХС ЛВП и ХС ЛНП. В рамках исследовании AIM-HIGH у больных с уровнем ХС ЛНП от 1,0 до 2,1 ммоль/л на фоне монотерапии симвастатином или в комбинации с эзетимибом снижение уровня Лп(а) на 21% в группе ниацина (n=1427) не влияло на риск развития ССО в течение 1 года наблюдения [66]. Различия между группами (ниацин или плацебо) по уровню Лп(а) были умеренными и составили в среднем ­19,4%, что выражалось в сопоставимом количестве осложнений в группах. Возможно, негативный результат исследования явился следствием недостаточного снижения уровня Лп(а) и отсутствия анализа по изоформам апо(а). Так, в пилотной работе с участием 30 мужчин с риском по шкале SCORE 1—5% и уровнем Лп(а) >20 мг/дл применение ниацина 1,5—2 г/сут сопровождалось статистически значимым снижением уровня Лп(а) только при наличии низкомолекулярных изоформ апо(а) (в среднем на 28%; n=16), тогда как у лиц, имевших крупные изоформы апо(а), уровень Лп(а) не изменялся [99].

В культуре гепатоцитов было показано, что ацетилсалициловая кислота (АСК) снижает экспрессию мРНК апо(а) до 85% [100]. В ретроспективном анализе исследования по первичной профилактике (WHS, n=25131) отмечено, что влияние АСК на прогноз ССЗ существенно зависело от наличия аллели rs3798220 гена LPA [101]. Так, у носителей данной риск-аллели ОР развития ССО на фоне приема АСК был на 56% ниже, чем у женщин, принимавших плацебо. Напротив, в группе женщин, не имевших данной аллели, различия между группами АСК и плацебо по влиянию на прогноз отсутствовали. Более того, при анализе исследований, в которых больные принимали АСК, риск развития ИБС, связанный с носительством rs3798220, терял статистическую значимость, тогда как исключение лиц, принимавших АСК, приводило к увеличению риска на 69% при наличии полиморфизма. В недавнем мета-анализе проспективных исследований и исследований случай—контроль отмечено снижение риска развития ИБС на 12% у носителей риск-аллели на фоне приема АСК по сравнению с лицами, не принимавшими препарат [72].

В настоящее время имеются результаты лишь 2 крупных исследований у больных с высоким уровнем Лп(а), оценивающих прогноз ССЗ. Проведение ЛНП афереза различными методами у 120 больных с ИБС и уровнем Лп(а) 118±42 мг/дл на фоне максимально переносимой гиполипидемической терапии привело к снижению уровня Лп(а) в среднем на 73% до 30 мг/дл и ХС ЛНП с 3,26±1,27 до 1,17±0,60 ммоль/л за процедуру. Это сопровождалось снижением частоты развития коронарных осложнений на 86% (р<0,0001) за 5 лет лечения по сравнению с таким же периодом до начала терапии аферезом. Исследователями был сделан вывод о безопасности длительного снижения высокого уровня Лп(а) и необходимости воздействия на него с целью улучшения прогноза у больных ИБС [102]. Аналогичные данные получены в немецком многоцентровом исследовании Pro(a)LiFe, в котором регулярное проведение ЛНП афереза в течение 2 лет у 170 больных с прогрессирующим атеросклеротическим поражением сосудов на фоне максимально переносимой гиполипидемической терапии при исходном уровне Лп(а) 105 мг/дл привело к статистически значимому снижению частоты развития ишемических осложнений в среднем на 78% [103]. Следует отметить, что основным ограничением этих работ является использование неспецифичных методов афереза липопротеидов, снижающих все атерогенные липопротеиды.

В период с 2009 по 2011 г. нами проведено проспективное контролируемое исследование у больных с хронической формой ИБС (n=30, 54±8 лет) и уровнем Лп(а) ≥50 мг/дл (105±37 мг/дл), получавших стабильную оптимальную медикаментозную терапию с поддержанием ХС ЛНП на уровне 2,2 ммоль/л [104]. Специфический Лп(а) аферез на колонках «Лп(а) Липопак» [105] приводил к снижению концентрации Лп(а) в среднем на 73% до 29 мг/дл за процедуру в отсутствие статистически значимой динамики других показателей липидного состава крови. Еженедельное проведение Лп(а) афереза в течение 18 мес сопровождалось значимым уменьшением процента стеноза по диаметру в среднем на 5%, тогда как в контрольной группе на фоне монотерапии аторвастатином произошло увеличение этого показателя на 5%. Уменьшение диаметра стеноза коронарных артерий имело прямую связь со снижением уровня Лп(а) (r=0,3; p<0,05), независимую от динамики уровней ХС ЛНП, ХС ЛВП и ТГ.

Ряд липотропных препаратов новых классов также оказывает влияние на уровень Лп(а).

На фоне антисенсового ингибитора апоВ100 уровень Лп(а) снижался до 50%, моноклональных антител к пропротеин конвертазе субтилизин/кексин 9-го типа — до 35%, блокаторов белка переносчика эфиров ХС — ­до 36%, ингибиторов микросомального белка переносчика ТГ — до 20% [106, 107]. Однако, как и ниацин, исследуемые препараты оказывают неспецифическое влияние на Лп(а) и уменьшают его уровень опосредованно. Механизмы, за счет которых наблюдается снижение Лп(а), не установлены.

Наибольшие надежды в настоящее время возлагаются на антисмысловой олигонуклеотид ASO 144367, подавляющий синтез апо(а). В экспериментальной модели у трансгенных мышей, экспрессирующих апо(а) и апоВ100, парентеральное введение этого препарата в дозе 25—50 мг/кг 1—2 раза в неделю привело к снижению экспрессии мРНК апо(а) на 52—87% (р<0,02). К 6-й неделе лечения уровень Лп(а) снижался до 32% [108]. Препарат успешно прошел I фазу клинических испытаний, в которой 31 доброволец получал плацебо или препарат (100/200/300 мг) в течение 4 нед, в результате чего было отмечено высокоспецифичное дозозависимое снижение уровня Лп(а) до 95% [109].

Еще одним потенциальным терапевтическим направлением может являться вакцина против апо(а), направленная на 12 аминокислот КIV-2 апо(а). В эксперименте с трансгенными мышами, у которых проводилось лигирование сонных артерий, внутримышечное введение вакцины сопровождалось статистически значимым снижением выраженности образования неоинтимы сосуда в поврежденных участках [110]. Накопление Лп(а) и миграция макрофагов в стенке артерии также были существенно ниже в группе вакцинации по сравнению с контролем.

Таким образом, проведение исследований с изолированным снижением уровня Лп(а) необходимо для определения его роли у больных с клиническими проявлениями атеросклероза. Остаются нерешенными следующие вопросы: показания к терапии, целевые уровни Лп(а), а также влияние изоформ апо(а) и наличие других ФР на эффективность лечения.

Заключение и перспективы

В последние 5 лет вновь вырос интерес к изучению Лп(а). Доказательная база, созданная в результате эпидемиологических и генетических исследований, свидетельствует о непрерывной и прямой связи уровня Лп(а) с прогрессированием атеросклероза и риском развития его осложнений. Генетически детерминированный уровень Лп(а) определяет риск развития ССО на протяжении всей жизни человека, однако биологическая функция и патофизиологическая роль Лп(а) остаются невыясненными. Необходимо отметить, что повышенный уровень Лп(а) способствует развитию атеросклероза за счет накопления ХС, входящего в его состав, в интиме сосудов, привлечения воспалительных клеток к очагу поражения и связывания окисленных фосфолипидов. Апо(а) вмешивается в фибринолиз, стабилизируя тромб, и усиливает коагулогические свойства крови вследствие подавления ингибитора тканевого фактора. Следует измерять концентрацию Лп(а) в крови у следующих категорий больных: 1) с прогрессирующим течением ИБС на фоне оптимальной медикаментозной терапии; 2) перенесших ишемические осложнения (ИМ, инсульт, реваскуляризация по причине стенозирующего атеросклероза) в отсутствие традиционных ФР, особенно у лиц молодого возраста; 3) из группы умеренного риска с возможностью его рестратификации; 4) с наследственными формами нарушений липидного обмена, в частности, у больных СГХС; 5) при рефрактерности к терапии статинами. В большинстве исследований, в том числе в России, уровень Лп(а) ≥30 мг/дл был определен как пороговый, в связи с чем именно его целесообразно считать повышенным при оценке риска развития ишемических осложнений в популяции, тогда как коррекцию необходимо проводить при уровне Лп(а) ≥50 мг/дл.

Вопрос о необходимости снижения повышенного уровня Лп(а) остается открытым. Для подтверждения значимости Лп(а) как ФР развития ССЗ необходимо проведение контролируемых исследований с его избирательным снижением и оценкой прогноза. У больных с прогрессирующим течением ИБС и уровнем ХС ЛНП >1,8 ммоль/л на фоне максимально переносимой терапии статинами рекомендуется применение никотиновой кислоты (1,5—2 г/сут) или афереза липопротеидов. При достижении целевых уровней ХС ЛНП с помощью статинов у больных ИБС с уровнем Лп(а) ≥60 мг/дл целесообразно проведение специфического Лп(а) афереза.

Авторы данной публикации не имеют конфликта интересов и финансовой поддержки касательно информации, изложенной в тексте.

Авторы благодарят за помощь в подготовке рукописи д.б.н. О.И. Афанасьеву, вед.н.с. Лаборатории проблем атеросклероза Института экспериментальной кардиологии ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава России

Список литературы

  1. Berg K. A new serum type system in man - the Lp-system. Acta Pathol Microbiol Scand 1963;59:369–382.
  2. Koschinsky M., Marcovina S.M. Lipoprotein(a). In: Ballantyne C, ed. Clinical Lipidology: A Companion to Braunwauld’s Heart Disease. Philadelphia: Saunders Elsevier; 2009. pp.130–143.
  3. McLean J.W., Tomlinson J.E., Kuang W.J. cDNA sequence of human apolipoprotein(a) is homologous to plasminogen. Nature 1987;330:132–137.
  4. Utermann G. Lipoprotein(a). In: Scriver C.R., Beaudet A.L., Sly W.S., Valle D., eds. The Metabolic and Molecular Bases of Inherited Disease. 8th ed. New York: McGraw-Hill; 2001. p 2753–2787.
  5. Lippi G., Guidi G. Lipoprotein(a): From ancestral benefit to modern pathogen? Q J Med 2000;93:75–84.
  6. Marcovina S.M., Koschinsky M.L., Albers J.J., Skarlatos S. Report of the National Heart, Lung, and Blood Institute Workshop on Lipoprotein(a) and Cardiovascular Disease: recent advances and future directions. Clin Chem 2003;49:1785–1796.
  7. Kraft H.G., Kochl S., Menzel H.J., Sandholzer C., Utermann G. The apolipoprotein (a) gene: a transcribed hypervariable locus controlling plasma lipoprotein (a) concentration. Hum Genet 1992;90:220–230.
  8. Lackner C., Cohen J.C., Hobbs H.H. Molecular definition of the extreme size polymorphism in apolipoprotein(a). Hum Mol Genet 1993;2:933–940.
  9. Kronenberg F., Trenkwalder E., Lingenhel A., Friedrich G., Lhotta K., Schober M., Moes N., König P., Utermann G., Dieplinger H. Renovascular arteriovenous differences in Lp
  10. Matthews K.A., Sowers M.F., Derby C.A., Stein E., Miracle-McMahill H., Crawford S.L., Pasternak R.C. Ethnic differences in cardiovascular risk factor burden among middle-aged women: Study of Women’s Health Across the Nation (SWAN). Am Heart J 2005;149:1066–1073.
  11. Virani S.S., Brautbar A., Davis B.C., Nambi V., Hoogeveen R.C., Sharrett A.R., Coresh J., Mosley T.H., Morrisett J.D., Catellier D.J., Folsom A.R., Boerwinkle E., Ballantyne C.M. Associations between lipoprotein(a) levels and cardiovascular outcomes in black and white subjects: the Atherosclerosis Risk in Communities (ARIC) Study. Circulation 2012;125:241–249.
  12. Ezhov M.V., Safarova M.S., Afanasieva O.I., Kukharchuk V.V., Pokrovsky S.N. Lipoprotein(a) level and apolipoprotein(a) phenotype as predictors of long-term cardiovascular outcomes after coronary artery bypass grafting. Atherosclerosis 2014;235:477–482.
  13. Brunner C., Kraft H.G., Utermann G., Müller H.J. Cys4057 of apolipoprotein(a) is essential for lipoprotein(a) assembly. Proc Natl Acad Sci USA 1993;90:11643–11647.
  14. Trieu V.N., McConathy W.J. A two-step model for lipoprotein(a) formation. J Biol Chem 1995;270:15471–15474.
  15. McCormick S.P., Ng J.K., Taylor S., Flynn L.M., Hammer R.E., Young S.G. Mutagenesis of the human apolipoprotein B gene in a yeast artificial chromosome reveals the site of attachment for apolipoprotein(a). Proc Natl Acad Sci USA 1995;92:10147–10151.
  16. Gething M.J., Sambrook J. Protein folding in the cell. Nature 1992;355:33–45.
  17. Gaubatz J.W., Nava M.N., Guyton J.R., Hoffman A.S., Opekun A.R., Hachey D.L., Morrisett J.D. Metabolism of apo(a) and apoB-100 in human lipoprotein(a). In: Catapano A., Gotto Jr. A.M., Smith L.C., Paoletti R., editors. Drugs affecting lipid metabolism. Dordrecht, The Netherlands: Kluwer Academic Publishers and Fondazione Giovanni Lorenzini; 1993. p.161–167.
  18. Demant T., Seeberg K., Bedynek A., Seidel D. The metabolism of lipoprotein(a) and other apolipoprotein B-containing lipoproteins: a kinetic study in humans. Atherosclerosis 2001;157:325–339.
  19. Jenner J.L., Seman L.J., Millar J.S., Lamon-Fava S., Welty F.K., Dolnikowski G.G., Marcovina S.M., Lichtenstein A.H., Barrett P.H., deLuca C., Schaefer E.J. The metabolism of apolipoproteins (a) and B-100 within plasma lipoprotein (a) in human beings. Metabolism 2005;54:361–369.
  20. Frischmann M.E., Ikewaki K., Trenkwalder E., Lamina C., Dieplinger B., Soufi M., Schweer H., Schaefer J.R., König P., Kronenberg F., Dieplinger H. In vivo stable-isotope kinetic study suggests intracellular assembly of lipoprotein(a). Atherosclerosis 2012; 225:322–327.
  21. Rader D.J., Cain W., Ikewaki K., Talley G., Zech L.A., Usher D., Brewer H.B. Jr. The inverse association of plasma lipoprotein(a) concentrations with apolipoprotein(a) isoform size is not due to differences in Lp(a) catabolism but to differences in production rate. J Clin Invest 1994;93:2758–2763.
  22. Cai A., Li L., Zhang Y., Mo Y., Mai W., Zhou Y. Lipoprotein(a): a promising marker for residual cardiovascular risk assessment. Dis Markers 2013;35:551–559.
  23. Kostner K.M., März W., Kostner G.M. When should we measure lipoprotein (a)? Eur Heart J 2013;34:3268–3276.
  24. Utermann G., Hoppichler F., Dieplinger H., Seed M., Thompson G., Boerwinkle E. Defects in the low density lipoprotein receptor gene affect lipoprotein (a) levels: multiplicative interaction of two gene loci associated with premature atherosclerosis. Proc Natl Acad Sci USA 1989;86:4171–4174.
  25. Rader D.J., Mann W.A., Cain W., Kraft H.G., Usher D., Zech L.A., Hoeg J.M., Davignon J., Lupien P., Grossman M. The low density lipoprotein receptor is not required for normal catabolism of Lp(a) in humans. J Clin Invest 1995;95:1403–1408.
  26. Koschinsky M.L., Marcovina S.M. Structure–function relationships in apolipoprotein(a): insights into lipoprotein(a) assembly and pathogenicity. Curr Opin Lipidol 2004;15:167–174.
  27. Nielsen L.B., Nordestgaard BG., Steinder S., Niendorf A., Kjeldsen K. Transfer of lipoprotein (a) and LDL into aortic intima in normal and in cholesterol-fed rabbits. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1995;15:1492–1502.
  28. Cushing G.L., Gaubatz J.W., Nava M.L., Burdick B.J., Bocan T.M., Guyton J.R., Weilbaecher D., DeBakey M.E., Lawrie G.M., Morrisett J.D. Quantitation and localization of apolipoproteins
  29. Rath M., Niendorf A., Reblin T., Dietel M., Krebber H.J., Beisiegel U. Detection and quantification of lipoprotein(a) in the arterial wall of 107 coronary bypass patients. Arteriosclerosis 1989;9:579–592.
  30. Reblin T., Meyer N., Labeur C., Henne-Bruns D., Beisiegel U. Extraction of lipoprotein(a), apo B, and apo E from fresh human arterial wall and atherosclerotic plaques. Atherosclerosis 1995;13:179–188.
  31. Niendorf A., Rath M., Wolf K., Peters S., Arps H., Beisiegel U., Dietel M. Morphological detection and quantification of lipoprotein(a) deposition in atheromatous lesions of human aorta and coronary arteries. Virchows Arch A Pathol Anat Histopathol 1990;417:105–111.
  32. Beisiegel U., Niendorf A., Wolf K., Reblin T., Rath M. Lipoprotein(a) in the arterial wall. Eur Heart J 1990;11SupplE:174–183.
  33. Dangas G., Mehran R., Harpel P.C., Sharma S.K., Marcovina S.M., Dube G., Ambrose J.A., Fallon J.T. Lipoprotein (a) and inflammation in human coronary atheroma: association with the severity of clinical presentation. J Am Coll Cardiol 1998;32:2035–2042.
  34. Shindo J., Ishibashi T., Kijima M., Nakazato K., Nagata K., Yokoyama K., Hirosaka A., Sato E., Kunii H., Yamaguchi N., Watanabe N., Saito T., Maehara K., Maruyama Y. Increased plasminogen activator inhibitor-1 and apolipoprotein (a) in coronary atherectomy specimens in acute coronary syndromes. Coron Artery Dis 2001;12:573–579.
  35. Lundstam U., Hurt-Camejo E., Olsson G., Sartipy P., Camejo G., Wiklund O. Proteoglycans contribution to association of Lp(a) and LDL with smooth muscle cell extracellular matrix. Arterioscler Thromb Vasc Biol 1999;19:1162–1167.
  36. Bdeir K., Cane W., Canziani G., Chaiken I., Weisel J., Koschinsky M.L., Lawn R.M., Bannerman P.G., Sachais B.S., Kuo A., Hancock M.A., Tomaszewski J., Raghunath P.N., Ganz T., Higazi A.A., Cines D.B. Defensin promotes the binding of lipoprotein(a) to vascular matrix. Blood 1999;94:2007–2019.
  37. Poon M., Zhang X., Dunsky K.G., Taubman M.B., Harpel P.C. Apolipoprotein(a) induces monocyte chemotactic activity in human vascular endothelial cells. Circulation 1997;96:2514–2519.
  38. Pan S., Kleppe L.S., Witt T.A., Mueske C.S., Simari R.D. The effect of vascular smooth muscle cell-targeted expression of tissue factor pathway inhibitor in a murine model of arterial thrombosis. Thromb Haemost 2004;92:495–502.
  39. Hervio L., Girard-Globa A., Durlach V., Anglés-Cano E. The antifibrinolytic effect of lipoprotein(a) in heterozygous subjects is modulated by the relative concentration of each of the apolipoprotein(a) isoforms and their affinity for fibrin. Eur J Clin Invest 1996;26:411–417.
  40. Lawn R.M., Pearle A.D., Kunz L.L., Rubin E.M., Reckless J., Metcalfe J.C., Grainger D.J. Feedback mechanism of focal vascular lesion formation in transgenic apolipoprotein(a) mice. J Biol Chem 1996;271:31367–31371.
  41. Tsimikas S., Witztum J.L. The role of oxidized phospholipids in mediating lipoprotein(a) atherogenicity. Curr Opin Lipidol 2008;19:369–377.
  42. Arai K., Luke M.M., Koschinsky M.L., Miller E.R., Pullinger C.R., Witztum J.L., Kane J.P., Tsimikas S. The I4399M variant of apolipoprotein(a) is associated with increased oxidized phospholipids on apolipoproteinB-100 particles. Atherosclerosis 2010;209:498–503.
  43. Tsimikas S., Kiechl S., Willeit J., Mayr M., Miller E.R., Kronenberg F., Xu Q., Bergmark C., Weger S., Oberhollenzer F., Witztum J.L. Oxidized phospholipids predict the presence and progression of carotid and femoral atherosclerosis and symptomatic cardiovascular disease: five-year prospective results from the Bruneck study. J Am Coll Cardiol 2006;47:2219–2228.
  44. Leibundgut G., Arai K., Orsoni A., Yin H., Scipione C., Miller E.R., Koschinsky M.L., Chapman M.J., Witztum J.L., Tsimikas S. Oxidized phospholipids are present on plasminogen, affect fibrinolysis, and increase following acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol 2012;59:1426–1437.
  45. Tselepis A.D., Chapman M.J. Inflammation, bioactive lipids and atherosclerosis: potential roles of a lipoprotein-associated phospholipase A2, platelet activating factor-acetylhydrolase. Atherosclerosis 2002;3(suppl):57–68.
  46. Tsironis L.D., Katsouras C.S., Lourida E.S., Mitsios J.V., Goudevenos J., Elisaf M., Tselepis A.D. Reduced PAF-acetylhydrolase activity associated with Lp (a) in patients with coronary artery disease. Atherosclerosis 2004;177:193–201.
  47. Blencowe C., Hermetter A., Kostner G.M., Deigner H.P. Enhanced association of platelet-activating factor acetylhydrolase with lipoprotein (a) in comparison with low density lipoprotein. J Biol Chem 1995;270:31151–31157.
  48. Karabina S-A.P., Elisaf M.C., Goudevenos J., Siamopoulos K.C., Sideris D., Tselepis A.D. PAF-acetylhydrolase activity on Lp(a) before and during Cu2+-induced oxidative modification in vitro. Atherosclerosis 1996;125:121–134.
  49. Erqou S., Thompson A., DiAngelantonio E., Saleheen D., Kaptoge S., Marcovina S., Danesh J. Apolipoprotein(a) isoforms and the risk of vascular disease: systematic review of 40 studies involving 58,000 participants. J Am Coll Cardiol 2010;55:2160–2167.
  50. Tsimikas S., Hall J.L. Lipoprotein(a) as a potential causal genetic risk factor of cardiovascular disease: a rationale for increased efforts to understand its pathophysiology and develop targeted therapies. J Am Coll Cardiol 2012;60:716–721.
  51. Emerging Risk Factors Collaboration, Erqou S., Kaptoge S., Perry P.L., Di Angelantonio E., Thompson A., White I.R., Marcovina S.M., Collins R., Thompson S.G., Danesh J..Lipoprotein(a) concentration and the risk of coronary heart disease, stroke, and nonvascular mortality. JAMA 2009;302:412–423.
  52. Bennet A., Di A.E., Erqou S., Eiriksdottir G., Sigurdsson G., Woodward M., Rumley A., Lowe G.D., Danesh J., Gudnason V. Lipoprotein(a) levels and risk of future coronary heart disease: large-scale prospective data. Arch Intern Med 2008;168:598–608.
  53. Rifai N., Ma J., Sacks F.M., Ridker P.M., Hernandez W.J., Stampfer M.J., Marcovina S.M. Apolipoprotein(a) size and lipoprotein(a) concentration and future risk of angina pectoris with evidence of severe coronary atherosclerosis in men: the physicians’ health study. Clin Chem 2004;50:1364–1371.
  54. Danik J.S., Rifai N., Buring J.E., Ridker P.M. Lipoprotein(a), measured with an assay independent of apolipoprotein(a) isoform size, and risk of future cardiovascular events among initially healthy women. JAMA 2006;296:1363–1370.
  55. Kamstrup P.R., Benn M., Tybjærg-Hansen A., Nordestgaard B.G. Extreme lipoprotein(a) levels and risk of myocardial infarction in the general population: the Copenhagen City Heart Study. Circulation 2008;117:176–184.
  56. O’Donoghue M.L., Morrow D.A., Tsimikas S., Sloan S., Ren A.F., Hoffman E.B., Desai N.R., Solomon S.D., Domanski M., Arai K., Chiuve S.E., Cannon C.P., Sacks F.M., Sabatine M.S. Lipoprotein(a) for risk assessment in patients with established coronary artery disease. J Am Coll Cardiol 2014;63:520–527.
  57. Ezhov M.V., Safarova M.S., Matchin Y.G., Soboleva D.I., Afanasieva O.I., Pokrovsky S.N. Association of high lipoprotein(a) level with coronary angiographic patency within the first year after percutaneous coronary intervention. Klinitsist 2011;1:18–24. Russian (Ежов М.В., Сафарова М.С., Матчин Ю.Г., Соболева Д.И., Афанасьева О.И., Покровский С.Н. Связь высокого уровня липопротеида(а) с проходимостью коронарных артерий в течение первого года после чрескожных коронарных вмешательств. Клиницист 2011;1:18–24).
  58. Pokrovsky S.N., Ezhov M.V., Il'ina L.N., Afanasieva OI, Sinitsyn VY, Shiriaev AA, Akchurin R.S. Association of lipoprotein(a) excess with early vein graft occlusions in patients undergoing coronary artery bypass surgery. Journal Thorac Cardiovasc Surg 2003;126:1071–1075.
  59. Ezhov M.V., Safarova M.S., Afanasieva O.I. Il'ina L.N., Liakishev A.A., Pokrovskiĭ S.N. High level of lipoprotein (a) as a predictor of poor long-term prognosis after coronary artery bypass surgery. Kardiologiia 2011;51(1):18–23. Russian (Ежов М.В., Сафарова М.С., Афанасьева О.И., Ильина Л.Н., Лякишев А.А., Покровский С.Н. Липопротеид(а) как предиктор неблагоприятного прогноза в отдаленные сроки после операции коронарного шунтирования. Кардиология 2011;1:18–23).
  60. Kronenberg F., Utermann G. Lipoprotein(a): resurrected by genetics. J Intern Med 2013;273:6–30.
  61. Holmes D.T., Schick B.A., Humphries K.H., Frohlich J. Lipoprotein(a) is an independent risk factor for cardiovascular disease in heterozygous familial hypercholesterolemia. J Clin Chem 2005;51:2067–2073.
  62. Jansen A.C., van Aalst-Cohen E.S., Tanck M.W., Trip M.D., Lansberg P.J., Liem A.H., van Lennep H.W., Sijbrands E.J., Kastelein J.J. The contribution of classical risk factors to cardiovascular disease in familial hypercholesterolaemia: data in 2400 patients. J Intern Med 2004;256:482–490.
  63. Maher V.M., Brown B.G., Marcovina S.M. et al. Effects of lowering elevated LDL cholesterol on the cardiovascular risk of lipoprotein(a). JAMA 1995;274:1771–1774.
  64. Berg K., Dahlén G., Christophersen B., Cook T., Kjekshus J., Pedersen T. Lp(a) lipoprotein level predicts survival and major coronary events in the Scandinavian Simvastatin Survival Study. Clin Genet 1997;52:254–261.
  65. Nicholls S.J., Tang W.H., Scoffone H., Brennan D.M., Hartiala J., Allayee H., Hazen S.L. Lipoprotein(a) levels and long-term cardiovascular risk in the contemporary era of statin therapy. J Lipid Res 2010;51:3055–3061.
  66. Albers J.J., Slee A., O’Brien K.D., Robinson J.G., Kashyap M.L., Kwiterovich P.O. Jr, Xu P., Marcovina S.M. Relationship of Apolipoproteins A-1 and B, and Lipoprotein(a) to Cardiovascular Outcomes in the AIM-HIGH Trial. J Am Coll Cardiol 2013;62:1575–1579.
  67. Khera AV, Everett BM, Caulfield MP, Hantash F.M., Wohlgemuth J., Ridker P.M., Mora S. Lipoprotein(a) concentrations, rosuvastatin therapy, and residual vascular risk: an analysis from the JUPITER Trial (Justification for the Use of Statins in Prevention: an Intervention Trial Evaluating Rosuvastatin). Circulation 2014;129:635–642.
  68. Kamstrup P.R., Tybjaerg-Hansen A., Steffensen R., Nordestgaard B.G. Genetically elevated lipoprotein(a) and increased risk of myocardial infarction. JAMA 2009;301:2331–2339.
  69. Clarke R., Peden J.F., Hopewell J.C., Kyriakou T., Goel A., Heath S.C., Parish S., Barlera S., Franzosi M.G., Rust S., Bennett D., Silveira A., Malarstig A., Green F.R., Lathrop M., Gigante B., Leander K., de Faire U., Seedorf U., Hamsten A., Collins R., Watkins H., Farrall M.; PROCARDIS Consortium. Genetic variants associated with Lp(a) lipoprotein level and coronary disease. N Engl J Med 2009;361:2518–2528.
  70. Luke M.M., Kane J.P., Liu D.M., Rowland C.M., Shiffman D., Cassano J., Catanese J.J., Pullinger C.R., Leong D.U., Arellano A.R., Tong C.H., Movsesyan I., Naya-Vigne J., Noordhof C., Feric N.T., Malloy M.J., Topol E.J., Koschinsky M.L., Devlin J.J., Ellis S.G. A polymorphism in the protease-like domain of apolipoprotein(a) is associated with severe coronary artery disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2007;27:2030–2036.
  71. Li Y., Luke M.M., Shiffman D., Devlin J.J. Genetic variants in the apolipoprotein(a) gene and coronary heart disease. Circ Cardiovasc Genet 2011;4:565–573.
  72. Helgadottir A., Gretarsdottir S., Thorleifsson G., Holm H., Patel R.S., Gudnason T., Jones G.T., van Rij A.M., Eapen D.J., Baas A.F., Tregouet D.A., Morange P.E., Emmerich J., Lindblad B., Gottsäter A., Kiemeny L.A., Lindholt J.S., Sakalihasan N., Ferrell R.E., Carey D.J., Elmore J.R., Tsao P.S., Grarup N., Jørgensen T., Witte D.R., Hansen T., Pedersen O., Pola R., Gaetani E., Magnadottir H.B., Wijmenga C., Tromp G., Ronkainen A., Ruigrok Y.M., Blankensteijn J.D., Mueller T., Wells P.S., Corral J., Soria J.M, Souto J.C., Peden J.F., Jalilzadeh S., Mayosi B.M., Keavney B., Strawbridge R.J., Sabater-Lleal M., Gertow K., Baldassarre D., Nyyssönen K., Rauramaa R., Smit A.J., Mannarino E., Giral P., Tremoli E., de Faire U., Humphries S.E., Hamsten A., Haraldsdottir V., Olafsson I., Magnusson M.K., Samani N.J., Levey A.I., Markus H.S., Kostulas K., Dichgans M., Berger K., Kuhlenbäumer G., Ringelstein E.B., Stoll M., Seedorf U., Rothwell P.M., Powell J.T., Kuivaniemi H., Onundarson P.T., Valdimarsson E., Matthiasson S.E., Gudbjartsson D.F., Thorgeirsson G., Quyyumi A.A., Watkins H., Farrall M., Thorsteinsdottir U., Stefansson K. Apolipoprotein(a) genetic sequence variants associated with systemic atherosclerosis and coronary atherosclerotic burden but not with venous thromboembolism. J Am Coll Cardiol 2012;60:722–729.
  73. Boffa M.B., Koschinsky M.L. Update on lipoprotein(a) as a cardiovascular risk factor and mediator. Curr Atheroscler Rep 2013;15:360.
  74. Kamstrup P.R., Tybjærg-Hansen A., Nordestgaard B.G. Genetic evidence that lipoprotein(a) associates with atherosclerotic stenosis rather than venous thrombosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2012;32:1732–1741.
  75. Nordestgaard B.G., Chapman M.J., Ray K., Borén J., Andreotti F., Watts G.F., Ginsberg H., Amarenco P., Catapano A., Descamps O.S., Fisher E., Kovanen P.T., Kuivenhoven J.A., Lesnik P., Masana L., Reiner Z., Taskinen M.R., Tokgözoglu L., Tybjærg-Hansen A.; European Atherosclerosis Society Consensus Panel. Lipoprotein(a) as a cardiovascular risk factor: current status. Eur Heart J 2010;31:2844–2853.
  76. European Association for Cardiovascular Prevention & Rehabilitation, Reiner Z., Catapano A.L., De Backer G., Graham I., Taskinen M.R., Wiklund O., Agewall S., Alegria E., Chapman M.J., Durrington P., Erdine S., Halcox J., Hobbs R., Kjekshus J., Filardi P.P., Riccardi G., Storey R.F., Wood D.; ESC Committee for Practice Guidelines (CPG) 2008-2010 and 2010-2012 Committees. ESC/EAS Guidelines for the management of dyslipidaemias: the Task Force for the management of dyslipidaemias of the European Society of Cardiology (ESC) and the European Atherosclerosis Society (EAS). Eur Heart J 2011;32:1769–1818.
  77. Stone N.J., Robinson J., Lichtenstein A.H., Bairey Merz C.N., Blum C.B., Eckel R.H., Goldberg A.C., Gordon D., Levy D., Lloyd-Jones D.M., McBride P., Schwartz J.S., Shero S.T., Smith S.C. Jr, Watson K., Wilson P.W.; American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines. 2013 ACC/AHA Guideline on the Treatment of Blood Cholesterol to Reduce Atherosclerotic Cardiovascular Risk in Adults: A Report of the American College of Cardiology/American Heart Association Task Force on Practice Guidelines. J Am Coll Cardiol. 2014;63(25 Pt B):2889–2934.
  78. Davidson M.H., Ballantyne C.M., Jacobson T.A., Bittner V.A., Braun L.T., Brown A.S., Brown W.V., Cromwell W.C., Goldberg R.B., McKenney J.M., Remaley A.T., Sniderman A.D., Toth P.P., Tsimikas S., Ziajka P.E., Maki K.C., Dicklin M.R. Clinical utility of inflammatory markers and advanced lipoprotein testing: advice from an expert panel of lipid specialists. J Clin Lipidol 2011;5:338–367.
  79. Anderson T.J., Grégoire J., Hegele R.A., Couture P., Mancini G.B., McPherson R., Francis G.A., Poirier P., Lau D.C., Grover S., Genest J. Jr, Carpentier A.C., Dufour R., Gupta M., Ward R., Leiter L.A., Lonn E., Ng D.S., Pearson G.J., Yates G.M., Stone J.A., Ur E. 2012 update of the Canadian Cardiovascular Society guidelines for the diagnosis and treatment of dyslipidemia for the prevention of cardiovascular disease in the adult. Can J Cardiol 2013;29:151–167.
  80. Brown W.V., Ballantyne C.M., Jones P.H., Marcovina S. Management of Lp(a). J Clin Lipidol 2010;4:240–247.
  81. Thompson G.R., Barbir M., Davies D., Dobral P., Gesinde M., Livingston M., Mandry P., Marais A.D., Matthews S., Neuwirth C., Pottle A., le Roux C., Scullard D., Tyler C., Watkins S.. Recommendations for the use of LDL apheresis. Atherosclerosis 2008;198:247–255.
  82. Szczepiorkowski Z.M., Winters J.L., Bandarenko N., Kim H.C., Linenberger M.L., Marques M.B., Sarode R., Schwartz J., Weinstein R., Shaz B.H; Apheresis Applications Committee of the American Society for Apheresis. Guidelines on the use of therapeutic apheresis in clinical practice-evidence-based approach from the Apheresis Applications Committee of the American Society for Apheresis. J Clin Apher 2010;25:83–177.
  83. Schettler V., Neumann C.L., Hulpke-Wette M., Hagenah G.C., Schulz E.G., Wieland E.; German Apheresis Working Group. Current view: indications for extracorporeal lipid apheresis treatment. Clin Res Cardiol Suppl 2012;7:15–19.
  84. Kukharchuk V.V., Konovalov G.A., Susekov A.V., Sergienko I.V., Semenova A.E., Gorniakova N.B., Solovieva E.Y., Zubareva M.Y. Guidelines for the management of dyslipidaemias lipid disorders for the prevention and treatment of atherosclerosis. V revision. 2012. Russian (Кухарчук В.В., Коновалов Г.А., Сусеков А.В., Сергиенко И.В., Семенова А.Е., Горнякова Н.Б., Соловьева Е.Ю., Зубарева М.Ю. Диагностика и коррекция нарушений липидного обмена с целью профилактики и лечения атеросклероза. V пересмотр. 2012 г.)
  85. Emerging Risk Factors Collaboration, Di Angelantonio E., Gao P., Pennells L., Kaptoge S., Caslake M., Thompson A., Butterworth A.S., Sarwar N., Wormser D., Saleheen D., Ballantyne C.M., Psaty B.M., Sundström J., Ridker P.M., Nagel D., Gillum R.F., Ford I., Ducimetiere P., Kiechl S., Koenig W., Dullaart R.P., Assmann G., D'Agostino R.B. Sr, Dagenais G.R., Cooper J.A., Kromhout D., Onat A., Tipping R.W., Gómez-de-la- A., Rosengren A., Sutherland S.E., Gallacher J., Fowkes F.G., Casiglia E., Hofman A., Salomaa V., Barrett-Connor E., Clarke R., Brunner E., Jukema J.W., Simons L.A., Sandhu M., Wareham N.J., Khaw K.T., Kauhanen J., Salonen J.T., Howard W.J., Nordestgaard B.G., Wood A.M., Thompson S.G., Boekholdt S.M., Sattar N., Packard C., Gudnason V., Danesh J.Emerging Risk Factors Collaboration. Lipid-related markers and cardiovascular disease prediction. JAMA. 2012;307:2499–2506.
  86. Kamstrup P.R., Tybjærg-Hansen A., Nordestgaard B.G. Extreme lipoprotein(a) levels and improved cardiovascular risk prediction. J Am Coll Cardiol 2013;61:1146–1156.
  87. Guler E., Gecmen C., Guler G.B., Karaca O., Agus H.Z., Gunes H.M., Batgerel U., Elveran A., Esen A.M. Adding lipoprotein(a) levels to the GRACE score to predict prognosis in patients with non-ST elevation acute coronary syndrome. Kardiol Pol 2013;71:695–701.
  88. Emerging Risk Factors Collaboration, Di Angelantonio E., Gao P., Pennells L., Kaptoge S., Caslake M., Thompson A., Butterworth A.S., Sarwar N., Wormser D., Saleheen D., Ballantyne C.M., Psaty B.M., Sundström J., Ridker P.M., Nagel D., Gillum R.F., Ford I., Ducimetiere P., Kiechl S., Koenig W., Dullaart R.P., Assmann G., D’Agostino R.B. Sr, Dagenais G.R., Cooper J.A., Kromhout D., Onat A, Tipping R.W., Gómez-de-la-Cámara A., Rosengren A., Sutherland S.E., Gallacher J., Fowkes F.G., Casiglia E., Hofman A., Salomaa V., Barrett-Connor E., Clarke R., Brunner E., Jukema J.W., Simons L.A., Sandhu M., Wareham N.J., Khaw K.T., Kauhanen J., Salonen J.T., Howard W.J., Nordestgaard B.G., Wood A.M., Thompson S.G., Boekholdt S.M., Sattar N., Packard C., Gudnason V., Danesh J. Lipid-related markers and cardiovascular disease prediction. JAMA 2012;307:2499–2506.
  89. Scanu A.M., Hinman J. Issues concerning the monitoring of statin therapy in hypercholesterolemic subjects with high plasma lipoprotein(a) levels. J Lipids 2002;37:439–444.
  90. Deshmukh H.A., Colhoun H.M., Johnson T. McKeigue P.M., Betteridge D.J., Durrington P.N., Fuller J.H., Livingstone S., Charlton-Menys V., Neil A., Poulter N., Sever P., Shields D.C., Stanton A.V., Chatterjee A., Hyde C., Calle R.A., Demicco D.A., Trompet S., Postmus I., Ford I., Jukema J.W., Caulfield M., Hitman G.A.; CARDS, ASCOT, and PROSPER Investigators. Genome-wide association study of genetic determinants of LDL-c response to atorvastatin therapy: importance of Lp(a). J Lipid Res 2012;53:1000–1011.
  91. Kronenberg F., Lingenhel A., Lhotta K., Rantner B., Kronenberg M.F., König P., Thiery J., Koch M., von Eckardstein A., Dieplinger H. Lipoprotein(a)- and low-density lipoprotein-derived cholesterol in nephrotic syndrome: Impact on lipid-lowering therapy? Kidney Int 2004;66:348–354.
  92. Miltiadous G., Xenophontos S., Bairaktari E., Ganotakis M., Cariolou M., Elisaf M. Genetic and environmental factors affecting the response to statin therapy in patients with molecularly defined familial hypercholesterolaemia. Pharmacogenet Genomics 2005;15:219–225.
  93. Miltiadous G., Saougos V., Cariolou M., Elisaf M.S. Plasma lipoprotein(a) levels and LDL-cholesterol lowering response to statin therapy in patients with heterozygous familial hypercholesterolemia. Ann Clin Lab Sci 2006;36:353–355.
  94. Chennamsetty I., Kostner K.M., Claudel T., Vinod M., Frank S., Weiss T.S., Trauner M., Kostner G.M.. Nicotinic acid inhibits hepatic APOA gene expression: studies in humans and in transgenic mice. J Lipid Res. 2012;53:2405–2412.
  95. Kamanna V.S., Kashyap M.L. Mechanism of action of niacin. Am J Cardiol 2008;101(8A):20B–26B.
  96. Ganji S.H., Kamanna V.S., Kashyap M.L. Niacin and cholesterol: role in cardiovascular disease (review). J Nutr Biochem 2003;14:298–305.
  97. Scanu A.M., Bamba R. Niacin and lipoprotein(a): facts, uncertainties, and clinical considerations. Am J Cardiol 2008;101(8A):44B–47B.
  98. Safarova M.S., Trukhacheva E.P., Ezhov M.V., Afanas’eva OI, Afanas’eva M.I., Tripoten’ M.I., Liakishev A.A., Pokrovskiĭ S.N. Pleiotropic effects of nicotinic acid therapy in men with coronary heart disease and elevated lipoprotein(a) levels. Kardiologiia 2011;51(5):9–16. Russian (Сафарова М.С., Трухачева Е.П., Ежов М.В, Афанасьева О.И., Афанасьева М.И., Трипотень М.И., Лякишев А.А., Покровский С.Н. Плейотропные эффекты никотиновой кислоты у мужчин с ишемической болезнью сердца и высоким уровнем липопротеида(а). Кардиология 2011:51(5): 9–16).
  99. Safarova M.S., Artemeva N.V., Ezhov M.V., Afanasieva O.I., Dmitrieva O., Pokrovsky S.N. Response to niacin treatment in men with lipoprotein(a) excess is depended to apolipoprotein(a) isoforms. Circulation 2013;128:A15909.
  100. Kagawa A., Azuma H., Akaike M., Kanagawa Y., Matsumoto T.Aspirin reduces apolipoprotein(a) (apo(a)) production in human hepatocytes by suppression of apo(a) gene transcription. J Biol Chem 1999;274:34111–34115.
  101. Chasman D.I., Shiffman D., Zee R.Y., Louie J.Z., Luke M.M., Rowland C.M., Catanese J.J., Buring J.E., Devlin J.J., Ridker P.M. Polymorphism in the apolipoprotein(a) gene, plasma lipoprotein(a), cardiovascular disease, and low-dose aspirin therapy. Atherosclerosis 2009;203:371–376.
  102. Jaeger B.R., Richter Y., Nagel D., Heigl F., Vogt A., Roeseler E., Parhofer K., Ramlow W., Koch M., Utermann G., Labarrere C.A., Seidel D.; Group of Clinical Investigators. Longitudinal cohort study on the effectiveness of lipid apheresis treatment to reduce high lipoprotein(a) levels and prevent major adverse coronary events. Nat Clin Pract Cardiovasc Med 2009;6:229–239.
  103. Leebmann J., Roeseler E., Julius U., Heigl F., Spitthoever R., Heutling D., Breitenberger P., Maerz W., Lehmacher W., Heibges A., Klingel R.; Pro(a)LiFe Study Group. Lipoprotein apheresis in patients with maximally tolerated lipid-lowering therapy, lipoprotein(a)-hyperlipoproteinemia, and progressive cardiovascular disease: prospective observational multicenter study. Circulation 2013;128:2567–2576.
  104. Safarova M.S., Ezhov M.V., Afanasieva O.I., Dmitrieva O.A., Pokrovsky S.N. Effect of specific lipoprotein (a) apheresis on coronary atherosclerosis regression assessed by quantitative coronary angiography. Atheroscler Suppl 2013;14;93–99.
  105. Susekov A.V., Afanasieva O.I., Adamova I.Y., Lyakishev A.A., Kukharchuk V.V., Pokrovsky S.N. Use of immunosorption for selective decrease of lipoprotein(a) levels in patients with coronary atherosclerosis atherosclerosis. Kardiologiia 1992;32(11-12):52–56. Russian (Сусеков А.В., Афанасьева О.И., Адамова И.Ю., Лякишев А.А., Кухарчук В.В., Покровский С.Н. Применение иммуносорбента для селективного снижения уровня липопротеида(а) у больных с коронарным атеросклерозом. Кардиология 1993;32:52–56).
  106. Dubé J.B., Boffa M.B., Hegele R.A., Koschinsky M.L. Lipoprotein(a): more interesting than ever after 50 years. Curr Opin Lipidol 2012;23:133–140.
  107. Norata G.D., Ballantyne C.M., Catapano A.L. New therapeutic principles in dyslipidaemia: focus on LDL and Lp(a) lowering drugs. Eur Heart J 2013;34:1783–1789.
  108. Merki E., Graham M., Taleb A., Leibundgut G., Yang X., Miller E.R., Fu W., Mullick A.E., Lee R., Willeit P., Crooke R.M., Witztum J.L., Tsimikas S. Antisense oligonucleotide lowers plasma levels of apolipoprotein (a) and lipoprotein (a) in transgenic mice. J Am Coll Cardiol 2011;57:1611–1621.
  109. Viney N., Graham M., Crooke R., Highes S., Singleton W. Evaluation of Isis apo(a) Rx, an antisense inhibitor to apolipoprotein(a), in healthy volunteers. Circulation 2013;128:A14196.
  110. Kyutoku M., Nakagami H., Koriyama H., Nakagami F., Shimamura M., Kurinami H., Tomioka H., Miyake T., Katsuya T., Morishita R. Inhibition of neointima formation through DNA vaccination for apolipoprotein(a): a new therapeutic strategy for lipoprotein(a). Sci Rep 2013;3:1600.

Об авторах / Для корреспонденции

Сведения об авторах:
НИИ клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова ФГБУ «Российский кардиологический научно-производственный комплекс» Минздрава России
Отдел проблем атеросклероза
Сафарова М.С. - к.м.н., мл.н.с. отдела.
Ежов М.В. - д.м.н., вед.н.с. отдела.
E-mail: Dr.Safarova@gmail.com

Также по теме