ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Повышенная концентрация липопротеида(а) и наличие подфракций мелких плотных липопротеидов низкой плотности как независимые факторы риска ишемической болезни сердца

Афанасьева О.И., Уткина Е.А., Артемьева Н.В., Ежов М.В., Адамова И.Ю., Покровский С.Н.

ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Цель. Изучить взаимосвязь липопротеида(а) (Лп(а)) и подфракционного состава апоВ-содержащих липопротеидов с наличием ишемической болезни сердца (ИБС). Материал и методы. В исследование были включены 187 пациентов, принимавших статины и имеющих результаты инструментальных обследований. Определение показателей липидного состава крови, Лп(а) и подфракций апоВ-содержащих липопротеидов в сыворотке крови проведено всем пациентам. Результаты. Концентрация Лп(а) не связана ни с одним из факторов риска (ФР), уровнем общего холестерина (ОХС), холестерина (ХС) липопротеидов низкой плотности (ХС ЛНП), ХС липопротеидов высокой плотности (ХС ЛВП) и/или подфракциями липопротеидов. В общей группе пациентов наблюдалась взаимосвязь уровня триглицеридов (ТГ) в сыворотке с концентрацией мелких плотных ЛНП (мпЛНП) (r=0,445; р<0,0001) и средним размером частиц ЛНП (r=–0,424; p<0,0001). Однако в подгруппе с Лп(а) ≥30 мг/дл взаимосвязь между концентрацией ТГ и мпЛНП исчезала, тогда как у пациентов с нормальным уровнем Лп(а), наоборот, усиливалась. В общей группе больных наличие ИБС было связано с полом (r=0,325; p<0,0001), концентрацией Лп(а) (r=0,271; p=0,0001) и уровнем ТГ (r=0,159; p=0,030). По результатам многофакторного анализа с включением в модель в качестве предикторов ИБС концентрации Лп(а) и ХС ЛНП уровень ТГ, Лп(а) и мпЛНП являлись независимыми ФР. Присутствие в плазме подфракций мпЛНП более 2 мг/дл (наличие у пациента атерогенного профиля В), а также снижение концентрации подфракций крупных ЛНП достоверно увеличивало вероятность обнаружения ИБС при повышенной концентрации Лп(а). Заключение. Показано, что Лп(а) является независимым ФР развития атеросклероза коронарных артерий, более значимым, чем сдвиги в подфракционном составе апоВ-содержащих липопротеидов. У пациентов с концентрацией Лп(а) не более 30 мг/дл выявлена прямая связь уровней подфракций мпЛНП и ТГ. Уровни мпЛНП и крупных липопротеидов промежуточной плотности (ЛПП-С) напрямую связаны с наличием ИБС, в то же время крупные ЛНП коррелируют с концентрацией ХС ЛВП и, возможно, играют кардиопротективную роль. Наличие мпЛНП (более 2 мг/дл) или гипертриглицеридемии (ТГ более 1,7 ммоль/л) статистически значимо увеличивает вероятность обнаружения подтвержденной ИБС у пациентов с повышенной концентрацией Лп(а) в обследованной группе больных.

Ключевые слова

атеросклероз
липопротеиды
Лп(а)
подфракции ЛНП
ишемическая болезнь сердца

Повышенный уровень холестерина (ХС) липопротеидов низкой плотности (ЛНП) — один из основных факторов риска (ФР) развития атеросклероза и ишемической болезни сердца (ИБС). Согласно последним рекомендациям, уровень ХС ЛНП у пациентов из группы повышенного риска не должен превышать 2,6  ммоль/л, а в некоторых случаях и 1,8 ммоль/л, что достигается с помощью агрессивной гиполипидемической терапии. Однако известно, что ЛНП представляют собой очень гетерогенную популяцию частиц, различающихся по своим физико-химическим свойствам [1].

Липопротеид(а) [Лп(а)] представляет собой сложный надмолекулярный комплекс, состоящий из ЛНП-подобной частицы, в которой молекула белка апоВ100 связана дисульфидной связью с молекулой сильно гликозилированного апобелка(а) [апо(а)]. Согласно многочисленным исследованиям, Лп(а) является независимым ФР возникновения и развития атеросклероза, ИБС и их осложнений [2]. В настоящее время нет ясного представления о метаболизме Лп(а), и в частности, понимания того, как происходит сборка частицы и какие ЛНП участвуют в этом процессе. Предполагают, что сборка Лп(а) может происходить внутриклеточно, на поверхности гепатоцитов или внеклеточно непосредственно в крови человека [3—6].

Известно, что наиболее атерогенными являются мелкие плотные частицы ЛНП [7]; напротив, крупные частицы ЛНП присутствуют у пациентов без клинически значимого поражения коронарного русла [8]. Механизм высокой атерогенности Лп(а) также до конца неясен, несмотря на интенсивные исследования. Данные о связи Лп(а) с подфракциями других апоВ-содержащих липопротеидов, а также об их сочетанном влиянии на развитие атеросклероза и ИБС крайне ограничены [9, 10].

Уровень Лп(а) в плазме крови контролируется генетически и устойчив к медикаментозной терапии, являясь одной из наиболее вероятных причин резидуального риска развития осложнений у пациентов, получающих оптимальную терапию статинами. Кроме того, существующая в настоящее время в клинической практике оценка ХС ЛНП не учитывает вклада Лп(а), что вносит достоверную погрешность в адекватную оценку этих параметров [11]. Таким образом, изучение связи Лп(а) с подфракциями апоВ-содержащих липопротеидов и их совместного влияния на риск развития ИБС представляется актуальной задачей.

Цель исследования: изучить взаимосвязь Лп(а) и под-фракционного состава апоВ-содержащих липопротеидов с наличием ИБС.

Материал и методы

В исследование были включены 187 пациентов (средний возраст 58±9 лет), имеющих не менее одного ФР развития ИБС с уровнем Лп(а) не менее 3 мг/дл. Исходя из цели работы — изучить взаимосвязь Лп(а), подфракций атерогенных липопротеидов и наличия ИБС — в исследование были включены пациенты с условно нормальным (не более 30 мг/дл) и повышенным (более 30 мг/дл) уровнем Лп(а), таким образом, чтобы число лиц в группах было сопоставимо (рис. 1). Были включены мужчины (n=141; средний возраст 57±9 лет) и женщины (n=46; средний возраст 60±9 лет). Уровни общего холестерина (ОХС), триглицеридов (ТГ), ХС липопротеидов высокой плотности (ЛВП) в сыворотке крови определяли ферментативным колориметрическим методом коммерческими наборами «Biocon» (Германия). Содержание ХС ЛНП рассчитывали по формуле Фридвальда: ХС ЛНП = ОХС – ХС ЛВП – ТГ/2,2 (ммоль/л), корригированный уровень ХС ЛНП, учитывающий вклад ХС Лп(а): ХС ЛНПкорр = ХС ЛНП – 0,3×Лп(а)/38,5, где Лп(а) — концентрация Лп(а) в миллиграммах на децилитр [12]. Концентрацию Лп(а) во всех исследуемых образцах измеряли при помощи иммуноферментного анализа с использованием поликлональных антител к Лп(а) [13]. Метод был валидирован относительно коммерческих наборов (Immunozym Lp(a) и (TintElizeTM Lp(a). В качестве референсного стандарта использовали контрольный препарат Лп(а) (Technoclone), одобренный Международной Федерацией клинической химии.

Количественное содержание подфракций липопротеидов определяли с помощью системы (Lipoprint Quantimetrix). При этом образцы сыворотки крови больных для анализа хранили при температуре –70 °С, не допуская повторных циклов замораживания—оттаивания. Данные выражали как концентрацию (мг/дл) ХС в различных подфракциях липопротеидов [14].

Коронарографию проводили в лаборатории рентгенэндоваскулярных методов диагностики и лечения в амбулаторных условиях при научно-диспансерном отделе Института клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова. Количественный анализ ангиограмм осуществляли с помощью интегрированной компьютерной программы Philips Medical Systems. Коронарный атеросклероз подтверждали при наличии стеноза более 50% по диаметру, по крайней мере, в одной магистральной артерии.

Статистическую обработку полученных данных проводили с использованием пакета MedCalc версия 5.00.020. Результаты представлены в виде среднего значения (М)±стандартное отклонение (SD) или 95% доверительный интервал (ДИ). При сравнении количественных показателей двух групп использовали критерий t Стьюдента или его непараметрический аналог — критерий суммы рангов Вилкоксона. Для сравнения частотных данных между группами применяли точный критерий Фишера. В целях установления связи между различными показателями использовали корреляционный анализ по Пирсону и Спирмену. Для оценки значимости связи изучаемых параметров с наличием ИБС в исследованной группе пациентов рассчитывали отношение шансов (ОШ) с 95% ДИ.

Результаты

Все пациенты, включенные в исследование, были разделены на группы по следующим показателям: по уровню Лп(а) менее (n=80) или больше, или равно (n=107) 30 мг/дл, наличию (n=157) или отсутствию (n=30) ИБС, подтвержденной результатами коронарографии (см. рис. 1).

Группа пациентов с ИБС (основная группа) состояла из 128 мужчин и 29 женщин, в ней преобладали пациенты с повышенным уровнем Лп(а): 98 (62%) пациентов с Лп(а)≥30 мг/дл и 77 (49%) с Лп(а) ≥50 мг/дл. Многососудистое поражение коронарного русла и тяжелое течение ИБС имели 104 (82%) пациента. Контрольную группу (пациенты без ИБС) составили 13 мужчин и 17 женщин, среди них с повышенной концентрацией Лп(а) было 8 (27%), из них с уровнем 50 мг/дл и выше — 4 (13%).

Пациенты с ИБС и без ИБС были сопоставимы по возрасту, полу, показателям липидного состава крови и подфракциям атерогенных липопротеидов, за исключением Лп(а), ЛПП-А, подфракций крупных (ЛНП1) и подфракций мелких плотных (мпЛНП) ЛНП (табл. 1, рис. 2).

Концентрация Лп(а) в общей группе обследованных пациентов не была связана ни с одним из ФР, концентрациями ОХС, ЛНП, ЛВП, подфракций липопротеидов. Подгруппы больных с нормальным и повышенным уровнем Лп(а) не различались по возрасту, полу, показателям липидов, среднему размеру частиц ЛНП, концентрациям подфракций ЛНП и ЛПП, а также липопротеидов очень низкой плотности (ЛОНП). Очевидные достоверные различия были обнаружены только по уровню ХС ЛНПкорр, учитывающему уровень ХС, который входит в состав Лп(а).

В общей группе обследованных пациентов наблюдалась взаимосвязь уровня ТГ в плазме с концентрацией мпЛНП (r=0,445; р<0,0001) и средним размером частиц ЛНП (r=–0,424; p<0,0001), максимальная корреляция наблюдалась для подфракций ЛНП3 и ЛНП4 (r=0,431 и r=0,386; p<0,00001 для обеих). Обратная корреляция обнаружена для ЛПП-А (r=–0,161; p=0,027), а прямая для ЛПП-С (r=0,211; р=0,0037). Концентрация крупных ЛНП1 не была связана с уровнем ТГ.

При дальнейшем анализе пациентов с различным уровнем Лп(а) оказалось, что в подгруппе с Лп(а) ≥30 мг/дл взаимосвязи между концентрацией ТГ с мпЛНП исчезают, тогда как у пациентов с нормальным уровнем Лп(а), наоборот, усиливаются.

Аналогично взаимосвязь ХС ЛВП с концентрацией крупных ЛНП1 наблюдалась только в общей группе и подгруппе с нормальным Лп(а) (r=0,186; p=0,010 и r=0,28; p=0,011 соответственно) и исчезала в подгруппе пациентов с Лп(а) более или равно 30 мг/дл. Однако по данным как однофакторного, так и многофакторного анализа с одновременным введением в модель концентрации ОХС, ТГ, ХС ЛНП, ХС ЛВП и Лп(а) в качестве независимых переменных, Лп(а) не был связан с уровнем крупных (ЛНП1 и ЛНП2) или мелких плотных (ЛНП3-7) ЛНП.

Исходя из полученных результатов, мы разделили пациентов на подгруппы в зависимости от уровня Лп(а) и ТГ и проанализировали различия по составу фракций ЛОНП, ЛВП и подфракций ЛНП и ЛПП (табл. 2).

Мы обнаружили, что в подгруппе пациентов с концентрацией Лп(а) менее 30 мг/дл и гипертриглицеридемией наблюдалась максимальная концентрация мпЛНП. Минимальная концентрация крупных подфракций ЛПП-С, а также максимальный средний размер частиц ЛНП выявлены у пациентов с нормальным уровнем Лп(а) и ТГ. Между подгруппами пациентов, имеющих уровень Лп(а) выше 30 мг/дл и различный уровень ТГ, достоверных различий по подфракционному составу ЛНП и ЛПП выявлено не было. Не наблюдалось различий по уровню мелких и средних ЛПП-А и ЛПП-В, а также крупных ЛНП1.

Однофакторный анализ в общей группе больных выявил достоверную положительную связь ИБС только с полом (r=0,325; p<0,0001), концентрацией Лп(а) (r=0,271; p=0,0001) и уровнем ТГ (r=0,159; p=0,030), остальные ФР развития ИБС не были значимыми.

Многофакторный анализ связи подфракций ЛПП и ЛНП с наличием ИБС у пациентов с включением в модель в качестве предикторов концентрации Лп(а) и ХС ЛНПкорр показал значимость содержания крупных ЛНП1 и ЛПП-C только в подгруппе пациентов с нормальным уровнем Лп(а) (табл. 3).

Одновременное включение в модель уровня ТГ и подфракций ЛНП приводило к потере статистической значимости для всех анализируемых параметров, кроме Лп(а), что лишний раз доказывало зависимость данных показателей друг от друга.

По результатам многофакторного анализа с одновременным включением в модель таких ФР развития ИБС, как пол, возраст, уровни ХС ЛНПкорр, ХС ЛВП и Лп(а), концентрация мпЛНП (β=0,131; р<0,05), наряду с Лп(а) (β=0,240; р<0,0001), ХС ЛНПкорр (β=–0,240; р<0,05) и мужским полом (β=0,319; р<0,0001) независимо связана с наличием ИБС у обследованных пациентов. Уровень ТГ также оказался независимым предиктором ИБС, если учитывался отдельно от концентрации мпЛНП (β=0,157; р<0,005). В подгруппе больных с нормальным уровнем Лп(а) концентрация крупных ЛНП1 проявила себя как независимый предиктор ИБС, оказывающий кардиопротективное действие (β=–0,321; р<0,05), более значимый, чем ХС ЛНПкорр.

Таким образом, было показано, что в исследуемой нами когорте пациентов уровни Лп(а) и мпЛНП, как и ТГ, являлись независимыми ФР развития ИБС.

При анализе подгрупп больных, разделенных по квартилям изучаемых показателей, доля больных ИБС возрастала при увеличении концентрации мпЛНП, ТГ и Лп(а) (рис. 3). ОШ наличия ИБС у пациентов из подгрупп верхней квартили относительно нижней квартили каждого из анализируемых показателей составили для Лп(а) 7,27 (при 95% ДИ от 1,92 до 26,7), для ТГ 4,48 (при 95% ДИ от 1,16 до 17,29) и для мпЛНП 2,84 (при 95% ДИ от 0,94 до 8,63).

Согласно ROC-анализу, концентрация мпЛНП более 2 мг/дл была связана с наличием ИБС, как и концентрация крупных подфракций ЛНП (ЛНП1 и ЛНП2) ≤41,8 мг/дл и ЛНП1 ≤35 мг/ дл ассоциировалась с наличием ИБС в обследованной группе пациентов.

Учитывая полученные в многофакторном анализе данные о независимой взаимосвязи Лп(а) и подфракций ЛНП с ИБС, мы проанализировали ОШ наличия ИБС для подгрупп пациентов с различной концентрацией Лп(а), подфракций мелких и крупных ЛНП, наличием и отсутствием гипертри-глицеридемии, а также их сочетанием относительно группы с уровнем Лп(а) <30 4="" p="">

Таким образом, мы показали, что присутствие в плазме подфракций мпЛНП более 2 мг/дл (наличие у пациента атерогенного профиля В), а также статистически значимое снижение концентрации подфракций крупных ЛНП, особенно ЛНП1, достоверно увеличивает вероятность обнаружения инструментально подтвержденной ИБС у больных с повышенной концентрацией Лп(а).

Обсуждение

В нашем исследовании было показано, что концентрация Лп(а) выше 30 мг/дл является независимым ФР развития ИБС, что подтверждает современное представление о роли Лп(а) в развитии сердечно-сосудистых заболеваний (ССЗ) [2].

Взаимосвязь Лп(а) с другими апоВ-содержащими липо-протеидами изучается давно, однако полученные данные крайне противоречивы. Одно из объяснений — влияние ХС, входящего в состав Лп(а), на уровень ОХС и ХС ЛНП, мешающее получению адекватных результатов [11].

Мы не обнаружили корреляций уровня Лп(а) с концентрацией ХС ЛНП, ХС ЛВП, ТГ, ЛОНП, а также ни с одним из исследованных подклассов липопротеидов как в общей группе пациентов, так и в подгруппах больных с ИБС и без ИБС. Данные о взаимосвязи концентрации Лп(а) и мпЛНП ограничены и не согласуются друг с другом. При исследовании, проведенном с участием больных ИБС и практически здоровых добровольцев (109 и 102 человека соответственно), не обнаружено различий по среднему размеру частиц ЛНП и содержанию подфракций мпЛНП в подгруппах пациентов с уровнем Лп(а) больше и меньше 30 мг/дл как среди больных, так и здоровых [10]. При этом, как и в нашей работе, обнаружено достоверное увеличение риска развития ИБС у пациентов с наличием низкомолекулярных изоформ апо(а), ассоциированных с повышенной концентрацией Лп(а) и высоким уровнем мпЛНП. Напротив, в другом исследовании выявлена слабая положительная связь между концентрацией Лп(а) и подфракциями мпЛНП [9].

Одной из важных характеристик, отражающих гетерогенность ЛНП, является их средний диаметр; наиболее атерогенные частицы имеют диаметр менее 25,5 нм [15]. В нашем исследовании средний размер частиц варьировал от 24,7 до 27,7 нм в группе больных ИБС и от 26,3 до 27,6 нм у пациентов без ИБС, также уровень мпЛНП у пациентов с ИБС в 2 раза превышал данный показатель у пациентов без ИБС, но различия в обоих случаях не достигали статистической значимости (см. табл. 1 и рис. 2). Наиболее вероятным объяснением является снижение содержания мпЛНП в плазме всех обследованных пациентов за счет длительной терапии статинами.

Взаимосвязь уровня ТГ с концентрацией мпЛНП показана более 30 лет назад и верифицирована в большинстве работ [1, 8, 16]. Как и в нашей работе, наиболее выраженными эти корреляции были для подфракций ЛНП3 и ЛНП4 [8, 16]. Согласно имеющейся гипотезе, подфракции мпЛНП образуются из обогащенных ТГ частиц ЛОНП в результате липолиза, ослабленного снижением активности фермента липопротеинлипазы, а затем гидролиза оставшихся ТГ печеночной липазой [1, 7], при этом повышенная активность печеночной липазы играет ключевую роль в образовании мпЛНП у пациентов с повышенным уровнем ТГ [17]. Отсутствие связи между ТГ и подфракциями мелких ЛНП у пациентов с повышенной концентрацией Лп(а), обнаруженное в нашей работе, также может свидетельствовать о вовлечении Лп(а) в метаболизм ТГ, обогащенных ЛОНП. Косвенным подтверждением этого может служить способность препаратов, воздействующих на белок — переносчик эфиров ХС, влиять на концентрацию Лп(а) [18].

Показанное в настоящем исследовании увеличение вероятности наличия ИБС у пациентов с повышенной концентрацией Лп(а) и наличием мпЛНП или гипертриглицеридемией согласуется с данными, полученными в трехлетнем проспективном наблюдении, показавшем статистически значимое увеличение риска кардиологических исходов (смерть от ССЗ, нефатальный ИМ и эпизод нестабильная стенокардия, требующая госпитализации) у пациентов с ожирением при уровне Лп(а) более 24 мг/дл (относительный риск 3,94 (95% ДИ 2,11—7,35); р=0,000017). При наличии у таких пациентов однонуклеотидного полиморфизма гена LIPC, связанного с повышенной активностью печеночной липазы, наблюдалось трехкратное увеличение риска, обусловленного повышенной концентрацией Лп(а) [19]. Следует отметить, что как и в нашей работе, собственно повышенная активность печеночной липазы (приводящая к образованию мпЛНП) на фоне низкой концентрации Лп(а) не ассоциировалась с увеличением риска развития осложнений ССЗ.

Обнаруженная обратная взаимосвязь ИБС с концентрацией ЛНП1 независимо от концентрации ХС ЛНП и ХС ЛВП в группе пациентов с нормальным уровнем Лп(а) обусловливает необходимость дальнейших исследований. Учитывая, что все пациенты принимали статины и имели низкий уровень ХС ЛНП, полученные результаты делают актуальным проведение дальнейших исследований по оценке влияния гиполипидемической терапии на крупные частицы ЛНП, поскольку в настоящее время такие данные практически отсутствуют, а имеющиеся противоречивы [20].

Заключение

В результате нашего исследования показано, что липо-протеид (а) является независимым фактором риска развития атеросклероза коронарных артерий, более значимым, чем сдвиги в подфракционном составе апоВ-содержащих липо-протеидов. У пациентов с концентрацией липопротеида(а) не более 30 мг/дл выявляется прямая связь подфракций мелких плотных липопротеидов низкой плотности с концентрацией триглицеридов, а концентрация подфракций мелких плотных липопротеидов низкой плотности, крупных липопротеидов промежуточной плотности класса С напрямую связаны с наличием ишемической болезни сердца; в то же время уровни крупных липопротеидов низкой плотности класса 1 коррелируют с концентрацией холестерина липо-протеидов высокой плотности и, возможно, играют кардиопротективную роль.

Наличие подфракций мелких плотных липопротеидов низкой плотности (более 2 мг/дл) или гипертриглицеридемии (более 1,7 ммоль/л) статистически значимо увеличивало вероятность обнаружения инструментально подтвержденной ишемической болезни сердца у пациентов с повышенной концентрацией липопротеида(а) в обследованной группе больных. В то же время концентрация крупных липопротеидов низкой плотности класса 1 менее 35 мг/дл на фоне повышенной концентрации липопротеида(а) статистически значимо ассоциировалась с наличием ишемической болезни сердца.

Список литературы

  1. Sokolov E.I., Perova N.V., Shchukina G.N. Small dense low density lipoprotein particles: mechanisms of formation, atherogenic properties, possibilities of modification of their content in blood plasma. Kardiologiya 2005;45(10):91–96. Russian (Соколов Е.И., Перова Н.В., Щукина Г.Н. Мелкие плотные частицы липопротеидов низкой плотности: механизмы образования, атерогенные свойства, возможности изменения их содержания в плазме крови. Кардиология 2005;10:91–96).
  2. Nordestgaard B.G., Chapman M.J., Ray K., Borén J., Andreotti F., Watts G.F., Ginsberg H., Amarenco P., Catapano A., Descamps O.S., Fisher E., Kovanen P.T., Kuivenhoven J.A., Lesnik P., Masana L., Reiner Z., Taskinen M.R., Tokgözoglu L., Tybjærg-Hansen A. Lipoprotein(a) as a cardiovascular risk factor: current status. Eur Heart J 2010;31:2844–2853.
  3. White A.L., Lanford R.E. Cell surface assembly of lipoprotein(a) in primary cultures of baboon hepatocytes. J Biol Chem 1994;269:28716–28723.
  4. Koschinsky M.L., Côté G.P., Gabel B.R., van der Hoek Y.Y. Identification of the cysteine residue in apolipoprotein(a) that mediates extracellular coupling with apolipoprotein B-100. J Biol Chem 1993;268:19819–19825.
  5. Becker L., Nesheim M.E., Koschinsky M.L. Catalysis of covalent Lp(a) assembly: evidence for an extracellular enzyme activity that enhances disulfide bond formation. Biochemistry 2006;45:9919–9928.
  6. Frischmann M.E., Ikewaki K., Trenkwalder E., Trenkwalder E., Lamina C., Dieplinger B., Soufi M., Schweer H., Schaefer J.R., König P., Kronenberg F., Dieplinger H. In vivo stable-isotope kinetic study suggests intracellular assembly of lipoprotein(a). Atherosclerosis 2012;225:322–327.
  7. Hirayama S., Miida T. Small dense LDL: An emerging risk factor for cardiovascular disease. Clin Chim Acta 2012;414:215–224.
  8. Ozerova I.N., Metelskaya V.A., Perova N.V., Gavrilova N.E., Chernushevich O.I. Relationship of low densities lipoprotein subfractions with triglycerides level in patients with different grade of coronary arteries stenosis. Ateroskleroz i dislipidemii 2014;2:33–37. Russian (Озерова И.Н., Метельская В.А., Перова Н.В., Гаврилова Н.Е., Чернушевич О.И. Связь субфракционного спектра липопротеинов низких плотностей с уровнем триглицеридов в крови при разной степени стенозов коронарных артерий. Атеросклероз и дислипидемии 2014;2:33–37).
  9. Moon J.Y., Kwon H.M., Kwon S.W., Yoon S.J., Kim J.S., Lee S.J., Park J.K., Rhee J.H., Yoon Y.W., Hong B.K., Rim S.J., Kim H.S. Lipoprotein(a) and LDL particle size are related to the severity of coronary artery disease. Cardiology 2007;108(4):282–289.
  10. Zeljkovic A., Bogavac-Stanojevic N., Jelic-Ivanovic Z., Spasojevic-Kalimanovska V., Vekic J., Spasic S. Combined effects of small apolipoprotein(a) isoforms and small, dense LDL on coronary artery disease risk. Arch Med Res 2009;40(1):29–35.
  11. Enkhmaa B., Anuurad E., Zhang W., Berglund L. Significant associations between lipoprotein(a) and corrected apolipoprotein B-100 levels in African-Americans. Atherosclerosis 2014;235:223–229.
  12. Dahlen G.H. Incidence of Lp(a) among populations. In: Scanu AM, editor. Lipoprotein(a). New York: Academic Press;1990;151–173.
  13. Afanasieva O.I., Adamova I.Yu., Benevolenskaya G.F., Pokrovskii S.N. An immunoenzyme method for determining lipoprotein(a) Bull Exp Biol Med 1995;120(10):398–401. Russian. (Афанасьева О.И., Адамова И.Ю., Беневоленская Г.Ф., Покровский С.Н. Иммуноферментный метод определения липопротеида(а). Бюллетень экспериментальной биологии и медицины 1995;120(10):398–401. doi.org/10.1007/bf02444976).
  14. Hoefner D.M., Hodel S.D., O’Brien J.F., Branum E.L., Sun D., Meissner I., McConnell J.P. Development of a rapid, quantitative method for LDL subfractionation with use of the Quantimetrix Lipoprint LDL System. Clin Chem 2001;47(2):266–274.
  15. Austin M.A., Rodriguez B.L., McKnight B., McNeely M.J., Edwards K.L., Curb J.D., Sharp D.S. Low-density lipoprotein particle size, triglycerides, and high-density lipoprotein cholesterol as risk factors for coronary heart disease in older Japanese-American men. Am J Cardiol 2000;86(4):412–416.
  16. Wang L., Bordi P.L., Fleming J.A., Hill A.M., Kris-Etherton P.M. Effect of a moderate fat diet with and without avocados on lipoprotein particle number, size and subclasses in overweight and obese adults: a randomized, controlled trial. J Am Heart Assoc 2015;4(1):e001355. doi: 10.1161/JAHA.114.001355.
  17. Brunzell J.D., Zambon A, Deeb S.S. The effect of hepatic lipase on coronary artery disease in humans is influenced by the underlying lipoprotein phenotype. Biochimica et Biophysica Acta 2012;1821:365–372.
  18. Cannon C.P., Shah S., Dansky H.M., Davidson M., Brinton E.A., Gotto A.M., Stepanavage M., Liu S.X., Gibbons P., Ashraf T.B., Zafarino J., Mitchel Y, Barter F. Safety of anacetrapib in patients with or at high risk for coronary heart disease. N Engl J Med 2010;363:2406–2415.
  19. Corsetti J.P., Ryan D., Rainwater D.L., Moss A.J., Zareba W., Block R.C., Sparks C.E. Lp(a) and risk of recurrent cardiac events in obese postinfarction patients. Obesity (Silver Spring) 2008;16(12):2717–2722.
  20. Dallmeier D., Koenig W. Strategies for vascular disease prevention: the role of lipids and related markers including apolipoproteins, low-density lipoproteins (LDL)-particle size, high sensitivity C-reactive protein (hs-CRP), lipoprotein-associated phospholipase A2 (Lp-PLA) and lipoprotein(a) (Lp(a)). Best Pract Res Clin Endocrinol Metab 2014;28(3):281–294.

Об авторах / Для корреспонденции

ФГБУ Российский кардиологический научно-производственный комплекс Минздрава РФ, Москва
Институт экспериментальной кардиологии
Афанасьева О.И. - д.биол.н., вед.н.с.
Уткина Е.А. - к.хим.н., ст.н.с.
Адамова И.Ю. - к.биол.н., вед.н.с.
Покровский С.Н. - д.биол.н., проф., руков. лаборатории проблем атеросклероза.
Институт клинической кардиологии им. А.Л. Мясникова
Артемьева Н.В. - аспирант.
Ежов М.В. - д.м.н., вед.н.с.
E-mail: Afanasieva@cardio.ru

Также по теме