Syndrome of increased epithelial permeability of the intestine in real clinical practice


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2020.8.174-185

Trukhan D.I., Chusova N.A.

1) Omsk State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia; 2) A.I. Evdokimov Moscow State University of Medicine and Dentistry of the Ministry of Healthcare of Russia
Currently, the role of increased intestinal permeability is discussed not only in the development of gastroenterological diseases, but also in the pathology of other organs and systems of the body. The first part of this review discusses the structure of the intestinal barrier, physiological and pathological regulators of intestinal permeability, issues of diagnosing permeability disorders, discusses the possible relationship between syndrome of increased epithelial permeability and cardiovascular diseases. The second part of the review is devoted to rebamipide, the only drug to date has been proven to act on intestinal permeability and tight contact system. This review of studies demonstrates the ability of rebamipide to restore the barrier function of the intestine at all its three levels. Increasing the protective properties of the barrier of the mucous membranes of the body using rebamipide allows us to consider it as a promising drug in the complex treatment of comorbid patients during the COVID-19 pandemic.

Синдром повышенной эпителиальной проницаемости (СПЭП) слизистой оболочки желудочно-кишечного тракта (ЖКТ), в первую очередь кишечника, – один из наиболее изучаемых патогенетических синдромов в ХХI в. [1–4]. В англоязычной литературе для его обозначения широко используется термин the leaky gut syndrome («синдром протекающей, или дырявой, кишки») [5].

Повышенная кишечная проницаемость служит индикатором дисфункции кишечного барьера. В настоящее время она признана основным патогенным фактором воспалительных заболеваний кишечника (ВЗК). Широко обсуждается участие СПЭП в развитии других заболеваний и патологических состояний ЖКТ: целиакии, инфекционного энтероколита, избыточного бактериального роста в тонком кишечнике, пищевой аллергии и непереносимости компонентов пищи, поражения печени (алкогольный/неалкогольный гепатит, неалкогольная жировая болезнь печени, первичный билиарный холангит, первичный склерозирующий холангит, цирроз печени) и поджелудочной железы (острый панкреатит), а также функциональных гастроинтестинальных расстройств (синдром раздраженного кишечника и др.) [4, 6–8].

Из заболеваний иных органов и систем обсуждается возможное участие СПЭП в развитии сахарного диабета (СД) 1 типа, ревматоидного артрита, иммунодефицитных состояний, рассеянного склероза, болезни Альцгеймера, атеросклероза, артериальной гипертензии (АГ), хронической сердечной (ХСН) и почечной недостаточности, хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ), поведенческих расстройств (депрессия, шизофрения, аутизм), синдрома хронической усталости, патологии сосудов сетчатки [5, 6, 8].

СТРУКТУРА КИШЕЧНОГО БАРЬЕРА

ЖКТ занимает глобальную поверхность площадью более 200 м2 и является наиболее уязвимой системой нашего организма, контактируя с тысячами различных компонентов из продуктов питания и связанных с ними микроорганизмов из внешнего окружения [9]. Это предполагает наличие сложной защитной системы («кишечного барьера»), которая отделяет содержимое кишечника от тканей хозяина и регулирует абсорбцию питательных веществ, обеспечивая взаимодействие между резидентной микробиотой и иммунной системой кишечника, управляя кишечной транслокацией бактериальных соединений из внешнего во внутренний мир [10].

«Кишечный барьер» состоит из эпителиального барьера слизистой оболочки, микробиоты, слоев слизи, врожденной и адаптивной иммунной системы, связанной со слизистой оболочкой кишечника, сосудистой/лимфатической, эндокринной и энтеральной нервной (нейроэнтеральной) систем кишечника, а также ферментативной системы [4].

Внешний слой «кишечного барьера» включает кишечную микробиоту, которая конкурирует с патогенами за пространство и ресурсы, вырабатывает молекулы, необходимые для поддержания целостности слизистой оболочки, и модулирует иммунологические паттерны нижнего барьера. Необходимо отметить, что внешний слой включает не только бактерии, но и грибы, археи, дрожжи и вирусы, которые имеют взаимные отношения с бактериями, друг с другом и со своим хозяином, взаимодействуя с энтероцитами в симбиотических отношениях. Большинство бактерий принадлежит к двум основным типам – Bacteroidetes и Firmicutes, за которыми следуют Proteobacteria, Actinobacteria и Fusobacteria. Качественный и количественный состав микробиоты варьируется в зависимости от возраста и генетических особенностей макроорганизма-хозяина, диеты, местной среды (pH и содержание кислорода) [11, 12].

Микробиота кишечника участвует в регуляции барьерной и трофической функции слизистой оболочки, метаболизма питательных веществ, лекарственных средств и токсинов. Она помогает в переваривании энергетических субстратов, производстве витаминов и гормонов, защите хозяина от патогенных микроорганизмов. Кроме того, микробиота выступает ключевым элементом поддержания баланса врожденной и адаптивной иммунной системы в кишечнике. Кишечный эпителий – самая древняя часть врожденной иммунной системы. Это всего один слой клеток (производные энтодермы), который, по сути, отделяет стерильный макроорганизм от изобилующего микроорганизмами кишечного содержимого [13].

Кишечная микробиота находится в тесном контакте с кишечной слизью – первым физическим барьером, с которым встречаются бактерии в кишечном тракте. Он отделяет эндолюминальное содержимое от внутреннего слоя кишечного барьера и содержит антимикробные продукты и секреторный IgA. Бокаловидные клетки продуцируют такие факторы, как trefoil-factor («трилистник»-фактор) и резистиноподобную молекулу-β, которые могут стабилизировать полимеры муцина и таким образом поддерживать целостность барьера [14].

Слизистая часть барьера представлена в желудке и тонкой кишке одинарным, а в толстой кишке – двойным слоем связанных с мембраной муцинов (MUC 1, 13, 17) и секретируемых муцинов (MUC 2).

Слизь состоит из двух слоев. Внутренний плотно прикреплен к эпителиальным клеткам, непроницаем для бактерий и функционирует в качестве защитного барьера для поверхности эпителиальных клеток и менее липкого внешнего слоя. Оба слоя организованы вокруг сильно гликозилированного муцина MUC2, секретируемого бокаловидными клетками и образующего аморфное полимероподобное покрытие. Слизь, выстилающая кишечный эпителий на всем его протяжении, препятствует непосредственному контакту потенциально вредных веществ и патогенов с клетками кишечника [15–17].

Внутренний слой состоит из сложной сети других клеток человека. Эпителиальный/кишечный барьер слизистой оболочки включает эпителиальные клетки (энтероциты), которые покрывают всю кишечную поверхность, организованную в ворсинки и круговые складки. Энтероциты отображают на апикальной поверхности микроворсинки или щеточную кайму. В микроворсинках находится большое количество активных ферментов, участвующих в расщеплении и всасывании пищевых продуктов.

Пристеночный слой слизи обеспечивает первую линию защиты и сохранение в околоэпителиальной зоне секреторных IgA и антибактериальных субстанций, в том числе дефензинов, лизоцима, рибонуклеаз. Таким образом, эпителиальная ткань не только служит барьером между внешней и внутренней средой, но также выполняет секреторную и абсорбирующую функции [18].

Соединение между энтероцитами управляется адгезивными соединениями (AJ) и плотными соединениями (TJ), в том числе кадгеринами, клаудинами, окклюдинами, белками соединительной молекулы адгезии, а также межклеточными белками, которые образуют мостики между клетками и уплотняют соседние клетки, образуя их физический барьер, не проницаемый для бактерий или других веществ. TJ – это динамические структуры/ворота, которые постоянно разрушаются, обновляются и могут мобилизировать белки клаудины в ответ на физиологические, или патологические, воздействия (пищевые компоненты, бактериальные продукты, воспалительные молекулы, алкоголь и лекарства) [4, 19, 20].

Сложная система работы эпителиального слоя и цепей белков плотных контактов до сих пор остается предметом анализа, механизмы их взаимодействия с теми или иными физиологическими и патогенными агентами находятся в стадии изучения.

Иммунные клетки слизистой оболочки кишечника организованы в специализированную и компартментализированную систему, известную как «кишечно-ассоциированная лимфоидная ткань», или GALT. Кишечник – один из крупнейших лимфоидных органов, который определяет иммунные реакции на патогенные микроорганизмы и иммунную толерантность к комменсальным бактериям. Эта способность опосредована дендритными клетками и М-клетками в Пейеровых бляшках; они способны усваивать микроорганизмы и макромолекулы, презентируя антигены «наивным» Т-лимфоцитам, которые дифференцируются и регулируют иммунные ответы, включая продукцию нескольких типов цитокинов [21].

Кишечная сосудистая/лимфатическая система (кишечно-сосудистый барьер) ответственна за предотвращение транслокации бактерий или микробных компонентов, сумевших пробраться через все предшествующие барьеры [22, 23].

Таким образом, можно выделить 3 уровня защиты слизистой оболочки кишечника и других отделов ЖКТ [24]:

1) преэпителиальный (слой слизи и бикарбонатов, покрывающий эпителий);

2) эпителиальный (плотные межклеточные контакты и высокая регенерация эпителия);

3) субэпителиальный, или постэпителиальный (нормальный кровоток, способствующий быстрой регенерации клеток).

ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ РЕГУЛЯТОРЫ КИШЕЧНОЙ ПРОНИЦАЕМОСТИ

Гомеостаз кишечного эпителия и регуляция полярности кишечных эпителиальных клеток поддерживаются через сложное взаимодействие множества регуляторных механизмов, таких как сигнальные пути Wnt, Notch, Hippo, трансформирующий фактор роста-β (TGF-β)/костный морфогенетический белок (BMP) и Hedgehog – сигнальный путь. Эти сигнальные пути поддерживают архитектуру крипты-ворсинки и регулируют множество самообновляющихся органов макроорганизма. Комплексы AJ и TJ также играют важную роль в регуляции клеточной поляризации, пролиферации и дифференцировки [3, 25].

Внутриклеточные домены этих трансмембранных белков взаимодействуют с цитозольными белками каркаса, такими как zonula occludens, которые, в свою очередь, привязывают трансмембранные белки к актиновому цитоскелету. Плотные, или замыкающие, контакты (zonula occludens) – участки, на которых мембраны двух соседних (эпителиальных) клеток тесно сближены и образуют барьер, практически непроницаемый для растворенных веществ [26].

Взаимодействие белков плотных контактов (TJ) с актиновым цитоскелетом способствует целостности кишечного барьера. В этом случае микробиота кишечника имеет решающее значение в регуляции кишечной проницаемости, выступая в физиологических условиях позитивным стабилизирующим фактором.

Большое влияние на кишечную проницаемость оказывают и питательные вещества. Ряд диетических компонентов, таких как полиненасыщенные жирные кислоты (ПНЖК) омега-6, длинноцепочечные насыщенные жирные кислоты, белок и легкоусваиваемые углеводы, связаны с воспалением кишечника и повышенной кишечной проницаемостью. Напротив, ПНЖК омега-3, витамин D, триглицериды со средней длиной цепи, биоактивные пищевые пептиды, некоторые пробиотики и пребиотики и неперевариваемые углеводы способствуют снижению проницаемости и улучшению здоровья кишечника.

Простагландины стимулируют и содействуют функционированию почти всех механизмов защиты слизистой оболочки кишечника и других отделов ЖКТ:

1) ингибируют желудочную секрецию;

2) увеличивают кровоток;

3) усиливают слизе-бикарбонато-фосфолипидный барьер;

4) ускоряют эпителиальную репарацию и заживление язв и эрозий;

5) восстанавливают нарушенные плотные контакты между эпителиальными клетками слизистой оболочки кишечника и других отделов ЖКТ [27, 28].

ПАТОЛОГИЧЕСКИЕ РЕГУЛЯТОРЫ КИШЕЧНОЙ ПРОНИЦАЕМОСТИ

Кишечная проницаемость может быть изменена цитокин-опосредованной дисфункцией, что приводит к иммунной активации и воспалению тканей. В частности, интерферон гамма (IFN-γ) увеличивает параклеточную проницаемость в эпителиальных клетках кишечника за счет перераспределения и экспрессии белков TJ и перестройки актинового цитоскелета.

Другие мощные и провоспалительные цитокины связаны с нарушением TJ через несколько механизмов: так, фактор некроза опухоли-альфа (TNF- α) индуцирует апоптоз эпителиальных клеток кишечника, а IL-1β инициирует апоптоз других клеток. Интерлейкин-10 (IL-10), четко определенный противовоспалительный цитокин, с другой стороны, оказывает защитное действие на TJ in vitro, а также в экспериментальной системе in vivo, противодействуя провоспалительному действию TNF-α и IFN-γ.

Мощным индуктором дисфункции кишечного барьера является старение. Фактически оно изменяет сократимость гладких мышц кишечника, а также нервную иннервацию мускулатуры ЖКТ и сенсорную передачу по сигнальным путям. Стресс прямо и опосредованно увеличивает кишечную проницаемость, что нашло подтверждение в экспериментальных работах [29, 30].

Повышенная физическая нагрузка, а также использование ряда лекарственных средств, прежде всего нестероидных противовоспалительных препаратов (НПВП), также связаны с повышенной проницаемостью кишечника [31, 32].

СВЯЗЬ СИНДРОМА ПОВЫШЕННОЙ ЭПИТЕЛИАЛЬНОЙ ПРОНИЦАЕМОСТИ И СЕРДЕЧНО-СОСУДИСТЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ

В американском исследовании Sumida K. et al., включившем более 3,3 млн человек, было показано, что наличие запора независимо, от всех других изучаемых факторов, ассоциировано со смертностью от всех причин, наступлением кардиоваскулярных событий, ишемического инсульта [33]. Возможным промежуточным звеном между этими состояниями могут быть именно нарушения кишечной проницаемости, поскольку наличие запора ассоциировано с более высокими показателями проницаемости кишечника и системным вялотекущим воспалением [34, 35].

Интересные данные о возможной связи запоров с сердечно-сосудистыми заболеваниями (ССЗ) были получены в когортном японском исследовании Ohsaki, в котором приняло участие 45 112 мужчин и женщин в возрасте 40–79 лет. В течение 13,3 лет наблюдения 2028 участников умерли от ССЗ. По сравнению с участниками в группе с частотой стула ≥1 раз/сут риск общей смертности от ССЗ был достоверно выше в группах с частотой стула 1 раз/2–3 сут и ≤1 раз/4 сут; многовариантные отношения рисков (95% доверительный интервал) в группах 1 раз/2–3 сут и ≤1 раз/4 сут составляли 1,21 (95% ДИ: 1,08–1,35) и 1,39 (95% ДИ: 1,06–1,81) соответственно [36].

Для пациентов с ВЗК, которые имеют достоверно высокую проницаемость кишечного барьера, характерен более высокий риск развития ССЗ, что особенно выражено в отсутствие адекватного контроля и успешной терапии ВЗК.

В настоящее время широко обсуждается возможная роль повышенной проницаемости слизистой оболочки кишечника в развитии ССЗ, таких как АГ, ХСН, атеросклеротическое поражение артерий, а также изучается связь между повышенной кишечной проницаемостью и эндотелиальной дисфункцией [37]. Так, в американском исследовании зафиксировано значимое повышение уровня маркера кишечной проницаемости зонулина у пациентов с АГ [38].

В развитии атеросклероза в последнее десятилетие рассматривается участие синтезируемого некоторыми кишечными бактериями триметиламина и его оксида. Повышение концентрации триметиламина и его негативное влияние на сосудистый эндотелий и кардиомиоциты может быть обусловлено повышенной проницаемостью кишечной стенки в сочетании с избыточным ростом бактерий, способных его производить, большинство из которых относятся к условным патогенам [39, 40].

В совместных исследованиях швейцарских/итальянских [41] и немецких/английских [42] ученых продемонстрировано, что у больных ХСН нарушается нормальный сосудистый барьер. Это приводит к еще большему увеличению уровня липополисахаридов в крови и дальнейшей активации системного вялотекущего воспаления («воспаление, ассоциированное со старением»), которое, в свою очередь, усугубляет течение сердечной недостаточности.

Но если вопросы патогенетической связи нарушения кишечной проницаемости и ССЗ находятся в стадии изучения, то вопросы лекарственной безо­пасности, связанные с приемом кардиологическими пациентами малых доз ацетилсалициловой кислоты (АСК), других антитромбоцитарных препаратов, а также варфарина и новых пероральных антикоагулянтов (НОАК), которые увеличивают кишечную проницаемость и соответственно повышают риск желудочно-кишечных кровотечений, являются актуальными для реальной клинической практики. Не менее острым остается вопрос безопасной терапии НПВП, а именно гастро- и энтеропротекция у пациентов с различной патологией, включая ССЗ, принимающих эту группу препаратов.

ДИАГНОСТИКА НАРУШЕНИЙ ПРОНИЦАЕМОСТИ КИШЕЧНОГО БАРЬЕРА

Одним из давно используемых неинвазивных методов измерения проницаемости кишечной стенки служит тест с неметаболизируемыми сахарами разного размера, например маннитолом и лактулозой. В течение 6–12 ч после перорального употребления измеряется их экскреция с мочой. Считается, что в первые 6 ч возможна оценка проницаемости верхних отделов кишечника, в последующие часы – проксимальных отделов тонкой кишки или толстого кишечника. Соотношение сахаров различной молекулярной массы в моче отражает степень проницаемости кишечника [43].

Другой маркер кишечной проницаемости – содержание в кале зонулина [44]. Этот белок, синтезируемый в клетках кишечника и печени, модулирует проницаемость плотных контактов между клетками стенки пищеварительного тракта. Высокие уровни зонулина ассоциированы с увеличенной кишечной проницаемостью, поскольку он вызывает разрушение плотных соединений между эпителиальными клетками кишечника. Уровень зонулина может повышаться как в кале, так и в крови у пациентов с аутоиммунными заболеваниями, в том числе с СД 1 типа, болезнью Крона, целиакией, ревматоидным артритом, а также заболеваниями, на первый взгляд далекими от кишечника: шизофренией, рассеянным склерозом, хронической болезнью почек [44].

ВОССТАНОВЛЕНИЕ НАРУШЕНИЙ КИШЕЧНОЙ ПРОНИЦАЕМОСТИ

На сегодняшний день из препаратов, доказанно действующих на кишечную проницаемость и систему плотных контактов, доступным является только ребамипид.

Ребамипид – производное хинолинона, разработан японской фирмой Otsuka Pharmaceutical Company и используется в клинической практике с 1990 г. В силу ряда причин (связанных с маркетинговой политикой производителей) препарат применяется в основном в странах Азии (Япония, Китай и Южная Корея), где сложилась позитивное отношение к препарату как действенному и безопасному средству для лечения заболеваний пищеварительной системы [45–49].

Ребамипид открывает новое направление в фармакотерапии кислотозависимых заболеваний, в том числе НПВП-ассоциированных гастропатий и энтеропатий. Препарат быстро всасывается при приеме внутрь, Cmax достигается через 2 ч, T1/2 составляет около 1 ч, связь с белками плазмы – около 98%. Ребамипид не аккумулируется в тканях организма, до 10% лекарственного средства выводится почками в неизмененном виде.

Являясь хинолоновым производным, ребамипид повышает синтез простагландинов в слизистой ЖКТ, что сопровождается стимуляцией кровотока и синтеза защитной слизи. В экспериментальных исследованиях показано, что репаративное действие ребамипида реализуется за счет индукции синтеза простагландинов посредством экспрессии циклооксигеназы 2 (ЦОГ-2) [50, 51] и блокады соответствующих рецепторов [52].

Ребамипид также активирует факторы роста EGF, VEGF и HGF [53–55], оказывает цитопротекторное действие за счет индукции секреции слизи [56, 57]. Противовоспалительное действие препарата осуществляется через утилизацию свободных радикалов [58], ингибирование активации нейтрофилов и их миграции [59, 60], а также подавление продукции цитокинов лейкоцитами и эпителиальными клетками желудка [61, 62]. Антихеликобактерный эффект ребамипида обусловлен снижением уровня колонизации слизистой H. pylori и ингибированием его адгезии к эпителию желудка [63, 64].

В экспериментальной работе японских ученых показана способность ребамипида восстанавливать секрецию энтеропротективного пептида дефензина-5, которая угнетается при приеме НПВП [65]. Под воздействием ребамипида отмечается нормализация кишечной микробиоты: увеличение внутрикишечного числа грамположительных лактобацилл и уменьшение грамотрицательных бактероидов и клостридий [65]. Продемонстрирована способность ребамипида нормализовать экспрессию генов матриксных металлопротеиназ, активированных приемом НПВП, и тем самым уменьшать выраженность воспалительного повреждения слизистой кишечника [66].

Ребамипид доказал свою эффективность в предупреждении эрозивно-язвенных поражений верхних отделов ЖКТ в ряде рандомизированных клинических исследований (РКИ) при приеме малых доз ацетилсалициловой кислоты (АСК), а также селективных и неселективных НПВП [49, 67–70]. При этом цитопротективный эффект ребамипида не ограничивается верхними отделами ЖКТ. Так, в нескольких РКИ при помощи капсульной эндоскопии была доказана способность препарата в 4 раза снижать риск развития повреждений тонкого кишечника у здоровых добровольцев, принимавших диклофенак под прикрытием ингибиторов протонной помпы (ИПП) [71, 72].

В РКИ [73] на здоровых добровольцах была показана способность ребамипида предупреждать изъязвления слизистой кишечника при приеме низких доз АСК и ИПП. Исследователи отметили достоверно меньшее количество петехий и эрозий в группе ребамипида (15,5%) в сравнении с группой плацебо (48,4%).

В многоцентровом двойном слепом плацебо-контролируемом РКИ [74] эффективность и переносимость ребамипида в очень высокой дозе (300 мг 3 раза/сут в течение 8 нед) оценивалась у пациентов с не менее 3 эрозиями или язвой тонкой кишки (по данным капсульной эндоскопии), которые ≥3 мес принимали низкие дозы АСК. Согласно полученным данным, активная терапия обеспечила заживление эрозий и язв у 32% пациентов, тогда как в группе плацебо – только у 7,7%. Тройная доза ребамипида была безопасна и хорошо переносилась пациентами [74].

В метаанализе 4 РКИ было продемонстрировано почти трехкратное превосходство ребамипида над плацебо в предупреждении НПВП-индуцированной энтеропатии. При этом отмечена безопасность ребамипида и редкое развитие побочных эффектов, которые у подавляющего большинства пациентов не потребовали прекращения лечения [49].

Из более 10 тыс. пациентов, принимавших ребамипид, нежелательные реакции, включая отклонение лабораторных показателей от нормы, были выявлены у 54 (0,54%). Побочные явления преимущественно были связаны с ЖКТ: запором, метеоризмом, тошнотой, диареей [48].

При изучении возможного влияния системы цитохрома Р450 на ребамипид в печени человека было установлено, что препарат не оказывает ингибирующего действия на CYP1A2, 2C9-, 2C19-, 2D6, 2E1- и 3A4-катализаторы метаболизма. Метаболическое воздействие CYP3A4 считается незначительным для фармакокинетических превращений ребамипида в организме человека. Полученные результаты позволили исследователям сделать вывод: лекарственные взаимодействия с ферментами цитохрома Р450 не участвуют ни в метаболизме ребамипида, ни в метаболизме других препаратов, одновременно вводимых с ребамипидом [75].

Таким образом, любые НПВП и низкие дозы АСК вызывают у большинства больных НПВП-индуцированное повреждение кишечника. Назначение антисекреторных препаратов не только не защищает, но может усиливать повреждение кишечника в отличие от верхних отделов ЖКТ. Ребамипид же является доступным, эффективным и безопасным препаратом, способным не только предотвратить повреждение слизистой оболочки кишечника, но и лечить НПВП-энтеропатию [76–79].

В ряде исследований было продемонстрировано, что ребамипид способен восстанавливать барьерную функцию кишечника на всех ее трех уровнях. Так, на уровне преэпителиальной защиты ребамипид значительно повышает продукцию MUC-2 в культурах клеток и тем самым может способствовать восстановлению слизистого барьера кишечника. Кроме этого, ребамипид стимулирует секрецию гликопротеинов (на 53–60%) и бикарбонатов, что в итоге создает условия для увеличения толщины слоя слизи [80, 81].

На уровне эпителиальной защиты ребамипид увеличивает экспрессию белков плотных контактов окклюдина и клаудина, стимулирует продукцию эпидермального фактора роста и гликозамингликанов, что снижает проницаемость эпителиального барьера [18, 80, 82, 83].

Наконец, на субэпителиальном уровне ребамипид проявляет противовоспалительное действие (способствует нейтрализации свободных радикалов, ингибирует активацию нейтрофилов, снижает уровень IL-8), стимулирует ангиогенез и улучшает кровоснабжение собственно эпителиального слоя [3, 54, 81, 84].

У пациентов кардиологического профиля в клинических исследованиях ребамипид продемонстрировал эффективность в профилактике повреждений слизистой оболочки ЖКТ на фоне применения АСК с энтеросолюбильным покрытием [70, 74], двойной антиагрегантной терапии (АСК + клопидогрел) [85], дабигатрана этексилата [86], а также НПВП (в случае сопутствующей терапии коморбидной патологии) [87]. Это существенно расширяет диапазон его применения в реальной клинической практике.

Ребамипид может восстанавливать целостность эпителиального барьера и в самом начале ЖКТ за счет снижения выраженности химиотерапевтического орального мукозита. Благодаря этому препарат можно рассматривать как потенциальный протектор барьерных функций слизистых оболочек всего организма [88]. Ребамипид широко применяется в офтальмологии для лечения глазных заболеваний и с целью защиты глазной поверхности от воздействия повреждающих агентов [89].

ЗАЩИТА И ВОССТАНОВЛЕНИЕ СЛИЗИСТЫХ В ПЕРИОД ПАНДЕМИИ COVID-19

Прием ребамипида не только защищает слизистые оболочки от повреждающего воздействия различных агентов, но и способствует восстановлению эпителиоцитов и заживлению возникших повреждений. Этот эффект препарата может оказаться чрезвычайно востребованным и полезным в условиях пандемии новой коронавирусной инфекции (COVID-19) для защиты слизистых оболочек дыхательных путей и ЖКТ от проникновения вируса [90–92].

Результаты ранее выполненных исследований свидетельствуют о том, что ребамипид восстанавливает барьерные функции слизистых оболочек (нормализация количественного и качественного состава слизи как ЖКТ, так и дыхательных путей), обладает потенциалом для уменьшения интенсивности воспалительных процессов в легких путем ингибирования активации эпидермального фактора роста и снижения содержания провоспалительных цитокинов (IL-1, IL-6, IL-8, MCP-1, MIP-1, TNF-ɑ), уровень которых повышен при COVID- 19, а также способствует сохранению альвеолярного и мышечных слоев [91, 93–95]. Помимо этого, имеются данные о способности ребамипида восстанавливать саливацию, что особенно актуально с учетом значимости фекально-орального пути заражения коронавирусной инфекцией [96].

В целом применение ребапимида за счет повышения защитно-барьерных свойств слизистых оболочек организма позволяет достигнуть и поддерживать у пациента клиническую ремиссию гастроэнтерологического заболевания, а также в силу влияния препарата на содержание целого ряда цитокинов может оказать влияние на снижение риска тяжелого течения COVID-19 [90, 91]. Возможность приема ребамипида целесообразно рассматривать у пациентов из группы риска, имеющих хронические заболевания ЖКТ, сердечно-сосудистой и дыхательной систем, а также у лиц, постоянно принимающих НПВП [90, 92].

ВЫБОР ПРЕПАРАТА РЕБАМИПИДА

Оригинальный препарат ребамипида Mucosta Tabletes 100 mg (с 2017 г. – Rebamipide Tabletes 100 mg Otsuka) японской компании Otsuka Pharmaceutical Co Ltd отсутствует на российском фармрынке. Первый препарат ребамипида, зарегистрированный в РФ в 2016 г., – Ребагит®. Его появление способствовало проведению большого числа отечественных исследований ребамипида, подтвердивших его эффективность и безопасность в лечении и профилактике эрозивно-язвенных поражений верхних и нижних отделов ЖКТ [78, 97–102]. И в настоящее время ребамипид включен в рекомендации ведущих профильных сообществ России (Ассоциация ревматологов России, Российское научное медицинское общество терапевтов, Научное общество гастроэнтерологов России, Российская гастроэнтерологическая ассоциация, Российской ассоциации геронтологов и гериатров, Российское общество по изучению боли, Ассоциация травматологов-ортопедов России и др.) и рекомендован к применению не только в составе комплексной терапии язвенной болезни, хронического гастрита с повышенной секреторной функцией желудка, эрозивного гастрита и других кислотозависимых заболеваний, не только для повышения эффективности антихеликобактерной терапии, но и для предотвращения повреждений слизистой оболочки на фоне приема НПВП.

При этом необходимо отметить, что у других генерических препаратов ребамипида данные о клинических исследованиях отсутствуют [103].

Препарат Ребагит® принимается внутрь по 100 мг 3 раза/сут. Курс лечения составляет 2–4 нед и в случае необходимости может быть продлен до 8 нед.

Наличие в арсенале практического врача препарата Ребагит® не только предоставляет возможность проводить полноценную патогенетическую терапию кислотозависимых заболеваний, включая НПВП-индуцированное поражение ЖКТ, но и позволяет расширить спектр его применения в реальной клинической практике у коморбидных пациентов, в том числе с заболеваниями сердечно-сосудистой системы.


Literature



  1. Arrieta M.C., Bistritz L., Meddings J.B. Alterations in intestinal permeability. Gut. 2006; 55(10): 1512–20. doi: 10.1136/gut.2005.085373.

  2. Turner J.R. Intestinal mucosal barrier function in health and disease. Nat Rev Immunol. 2009; 11: 799–809. DOI: 10.1038/nri2653.

  3. Odenwald M.A., Turner J.R. Intestinal permeability defects: Is it time to treat? Clin Gastroenterol Hepatol. 2013; 11(9): 1075–83. doi: 10.1016/j.cgh.2013.07.001.

  4. Graziani C., Talocco C., De Sire R. et al. Intestinal permeability in physiological and pathological conditions: major determinants and assessment modalities. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2019; 23(2): 795–810. doi: 10.26355/eurrev_201901_1689.

  5. Sturgeon C., Fasano A. Zonulin, a regulator of epithelial and endothelial barrier functions, and its involvement in chronic inflammatory diseases. Tissue Barriers. 2016; 4: e1251384. doi: 10.1080/21688370.2016.1251384.

  6. Chang J., Leong R.W., Wasinger V.C. et al. Impaired intestinal permeability contributes to ongoing bowel symptoms in patients with inflammatory bowel disease and mucosal healing. Gastroenterology. 2017; 153: 723–31. doi: 10.1053/j.gastro.2017.05.056.

  7. Eutamene H., Beaufrand C., Harkat C., Theodorou V. The role of mucoprotectants in the management of gastrointestinal disorders. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 2018; 12(1): 83–90. doi: 10.1080/17474124.2018.1378573.

  8. Fukui H. Increased intestinal permeability and decreased barrier function: does it really influence the risk of inflammation? Inflamm Intest Dis. 2016; 1(3): 135–45 doi: 10.1159/000447252.

  9. Scaldaferri F., Pizzoferrato M., Gerardi V. et al. The gut barrier: new acquisitions and therapeutic approaches. J Clin Gastroenterol. 2012; 46 Suppl: 12–17. doi: 10.1097/MCG.0b013e31826ae849.

  10. Lopetuso R., Scaldaferri F., Bruno G. et al. The therapeutic management of gut barrier leaking: the emerging role for mucosal barrier protectors. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2015; 19(6): 1068–76.

  11. Jandhyala S.M., Talukdar R., Subramanyam C. et al. Role of the normal gut microbiota. World J Gastroenterol. 2015; 21(29): 8787–803. doi: 10.3748/wjg.v21.i29.8787.

  12. Browne H.P., Neville B.A., Forster S.C., Lawley T.D. Transmission of the gut microbiota: spreading of health. Nat Rev Microbiol. 2017; 15: 531–43. doi: 10.1038/nrmicro.2017.50.

  13. Nguyen H., Loustaunau C., Facista A. et al. Deficient Pms2, ERCC1, Ku86, CcOI in field defects during progression to colon cancer. J Vis Exp. 2010; 41: 1931. doi: 10.3791/1931.

  14. Greenwood-Van Meer Veld B., Johnson A.C., Grundy D. Gastrointestinal physiology and function. Handb Exp Pharmacol. 2017; 239: 1–16. doi: 10.1007/164_2016_118.

  15. Van der Sluis M., De Koning B.A., De Bruijn A.C. et al. Muc2-deficient mice spontaneously develop colitis, indicating that MUC2 is critical for colonic protection. Gastroenterology. 2006; 131(1): 117–29. doi: 10.1053/j.gastro.2006.04.020.

  16. Johansson M.E., Sjovall H., Hansson G.C. The gastrointestinal mucus system in health and disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2013; 10(6): 352–61. doi: 10.1038/nrgastro.2013.35.

  17. Johansson M.E., Phillipson M., Petersson J. et al. The inner of the two Muc2 mucin-dependent mucus layers in colon is devoid of bacteria. Proc Natl Acad Sci USA. 2008; 105(39): 15064–69. doi: 10.1073/pnas.0803124105.

  18. Suzuki T., Yoshida N., Nakabe N. et al. Prophylactic effect of rebamipide on aspirin–induced gastric lesions and disruption of tight junctional protein zonula occludens-1 distribution. J Pharmacol Sci. 2008; 106(3): 469–77. doi: 10.1254/jphs.fp0071422.

  19. Guttman J.A., Finlay B.B. Tight junctions as targets of infectious agents. Biochim Biophys Acta. 2009; 1788(4): 832–41. doi: 10.1016/j.bbamem.2008.10.028.

  20. Van Itallie C.M., Tietgens A.J., Anderson J.M. Visualizing the dynamic coupling of claudin strands to the actin cytoskeleton through ZO-1. Mol Biol Cell. 2017; 28(4): 524–34. doi: 10.1091/mbc.E16-10-0698.

  21. Lopetuso L., Graziani C., Guarino A. et al. Gelatin tannate and tyndallized probiotics: a novel approach for treatment of diarrhea. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2017; 21(4): 873–83.

  22. Spadoni I., Pietrelli A., Pesole G., Rescigno M. Gene expression profile of endothelial cells during perturbation of the gut vascular barrier. Gut Microbes. 2016; 7(6): 540–48. doi: 10.1080/19490976.2016.1239681.

  23. Spadoni I., Fornasa G., Rescigno M. Organ-specific protection mediated by cooperation between vascular and epithelial barriers. Nat Rev Immunol. 2017; 17(12): 761–73. doi: 10.1038/nri.2017.100.

  24. Antoni L., Nuding S., Wehkamp J., Stange E.F. Intestinal barrier in inflammatory bowel disease. World J Gastroenterol. 2014; 20(5): 1165–79. doi: 10.3748/wjg.v20.i5.1165.

  25. Jeon M.K., Klaus C., Kaemmerer E., Gassler K. Intestinal barrier: molecular pathways and modifiers. World J Gastrointest Pathophysiol. 2013; 4: 94–99. doi: 10.4291/wjgp.v4.i4.94.

  26. Lee S.H. Intestinal permeability regulation by tight junction: implication on inflammatory bowel diseases. Intest Res. 2015; 13: 11–18. doi: 10.5217/ir.2015.13.1.11.

  27. Lee K., Lee S.H., Kim T.H. The biology of prostaglandins and their role as a target for allergic airway disease therapy. Int J Mol Sci. 2020; 21(5): 1851. doi: 10.3390/ijms21051851.

  28. Ивашкин В.Т., Трухманов А.С., Гоник М.И. Применение ребамипида в лечении гастроэзофагеальной рефлюксной болезни. Терапевтический архив. 2020; 4: 98–104. [Ivashkin V.T., Trukhmanov A.S., Gonik M.I. Rebamipide using in gastroesophageal reflux disease treatment. Terapevticheskiy arkhiv. 2020; 4: 98–104 (In Russ.)]. doi: 10.26442/00403660.2020.04.000568.

  29. Saunders P.R., Kosecka U., Mckay D.M., Perdue M.H. Acute stressors stimulate ion secretion and increase epithelial permeability in rat intestine. Am J Physiol. 1994; 267: 794–99. doi: 10.1152/ajpgi.1994.267.5.G794.

  30. Wilson l.M., Baldwin A.L. Environmental stress causes mast cell degranulation, endothelial and epithelial changes, and edema in the rat intestinal mucosa. Microcirculation. 1999; 6: 189–98.

  31. Pals K.L., Chang R.T., Ryan A.J., Gisolfi C.V. Effect of running intensity on intestinal permeability. J Appl Physiol 1997; 82: 571–76. doi: 10.1152/jappl.1997.82.2.571.

  32. Lambert G.P., Broussard L.J., Mason B.L. et al. Gastrointestinal permeability during exercise: effects of aspirin and energy–containing beverages. J Appl Physiol. 2001; 90: 2075–80. doi: 10.1152/jappl.2001.90.6.2075.

  33. Sumida K., Molnar M.Z., Potukuchi P.K. et al. Constipation and risk of death and cardiovascular events. Atherosclerosis. 2019; 281: 114–20. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2018.12.021.

  34. Khalif I.L., Quigley E.M., Konovitch E.A., Maximova I.D. Alterations in the colonic flora and intestinal permeability and evidence of immune activation in chronic constipation. Dig Liver Dis. 2005; 37(11): 838–49. doi: 10.1016/j.dld.2005.06.008.

  35. Rungoe C., Basit S., Ranthe M.F. et al. Risk of ischaemic heart disease in patients with inflammatory bowel disease: a nationwide Danish cohort study. Gut. 2013; 62(5): 689–94. doi: 10.1136/gutjnl–2012-303285.

  36. Honkura K., Tomata Y., Sugiyama K. et al. Defecation frequency and cardiovascular disease mortality in Japan: The Ohsaki cohort study. Atherosclerosis. 2016; 246: 251–56. doi: 10.1016/j.atherosclerosis.2016.01.007.

  37. Воробьева Н.М., Ткачева О.Н. Повышенная проницаемость кишечной стенки и ее роль в возникновении сердечно-сосудистых заболеваний. Фарматека. 2020; 27(3): 122–128. [Vorobyova N.M., Tkacheva O.N. Increased intestinal permeability and its role in the development of cardiovascular diseases. Farmateka. 2020; 27(3): 122–128 (In Russ)]. doi: https: //dx.doi.org/10.18565/pharmateca.2020.3.00-00.

  38. Kim S., Goel R., Kumar A. et al. Imbalance of gut microbiome and intestinal epithelial barrier dysfunction in patients with high blood pressure. Clin Sci (Lond). 2018; 132(6): 701–18. doi: 10.1042/CS20180087.

  39. Heianza Y., Ma W., Manson J.E. et al. Gut microbiota metabolites and risk of major adverse cardiovascular disease events and death: a systematic review and meta-analysis of prospective studies. J Am Heart Assoc. 2017; 6(7): e004947. doi: 10.1161/JAHA.116.004947.

  40. Jin M., Qian Z., Yin J. et al. The role of intestinal microbiota in cardiovascular disease. J Cell Mol Med. 2019; 23(4): 2343–50. doi: 10.1111/jcmm.14195.

  41. Rogler G., Rosano G. The heart and the gut. Eur Heart J. 2014; 35(7): 426–30. doi: 10.1093/eurheartj/eht271.

  42. Sandek A., Bjarnason I., Volk H.D. et al. Studies on bacterial endotoxin and intestinal absorption function in patients with chronic heart failure. Int J Cardiol. 2012; 157(1): 80–85. doi: 10.1016/j.ijcard.2010.12.016.

  43. Wang L., Llorente C., Hartmann P. et al. Methods to determine intestinal permeability and bacterial translocation during liver disease. J Immunol Methods. 2015; 421: 44–53. doi: 10.1016/j.jim.2014.12.015.

  44. Fasano A. Zonulin, regulation of tight junctions, and autoimmune diseases. Ann NY Acad Sci. 2012; 1258(1): 25–33. doi: 10.1111/j.1749-6632.2012.06538.x.

  45. Arakawa T., Higuchi K., Fujiwara Y. et al. 15th anniversary of rebamipide: looking ahead to the new mechanisms and new applications. Dig Dis Sci. 2005; 50 Suppl 1: S3–S11. doi: 10.1007/s10620-005-2800-9.

  46. Matysiak-Budnik T., Heyman M., Megraud F. Review article: rebamipide and the digestive epithelial barrier. Aliment Pharmacol Ther. 2003; 18 Suppl 1: 55–62. doi: 10.1046/j.1365–2036.18.s1.6.x.

  47. Fujiwara Y., Higuchi K., Tominaga K. et al. [Quality of ulcer healing and rebamipide]. Nihon Rinsho. 2005; 63 Suppl 11:3 97–400.

  48. Naito Y., Yoshikawa T. Rebamipide: a gastrointestinal protective drug with pleiotropic activities. Expert Rev Gastroenterol Hepatol. 2010; 4(3): 261–70. doi: 10.1586/ egh.10.25.

  49. Zhang S., Qing Q., Bai Y. et al. Rebamipide helps defend against nonsteroidal anti–inflammatory drugs induced gastroenteropathy: a systematic review and meta-analysis. Dig Dis Sci. 2013; 58(7): 1991–2000. doi: 10.1007/s10620-013-2606-0.

  50. Kleine A., Kluge S., Peskar B.M. Stimulation of prostaglandin biosynthesis mediates gastroprotective effect of rebamipide in rats. Dig Dis Sci. 1993; 38(8): 1441–49. doi: 10.1007/bf01308601.

  51. Sun W.H., Tsuji S., Tsujii M. et al. Induction of cyclooxygenase-2 in rat gastric mucosa by rebamipide, a mucoprotective agent. J Pharmacol Exp Ther. 2000; 295(2): 447–52.

  52. Suetsugu H., Ishihara S., Moriyama N. et al. Effect of rebamipide on prostaglandin EP4 receptor gene expression in rat gastric mucosa. J Lab Clin Med. 2000; 136(1): 50–57. doi: 10.1067/mlc.2000.107303.

  53. Tarnawski A.S., Jones M.K. The role of epidermal growth factor (EGF) and its receptor in mucosal protection, adaptation to injury, and ulcer healing: involvement of EGF-R signal transduction pathways. J Clin Gastroenterol. 1998; 27 Suppl 1: S12–20. doi: 10.1097/00004836–199800001–00004.

  54. Tarnawski A.S., Chai J., Pai R., Chiou S.K. Rebamipide activates genes encoding angiogenic growth factors and Cox2 and stimulates angiogenesis: a key to its ulcer healing action? Dig Dis Sci. 2004; 49(2): 202–09. doi: 10.1023/b:ddas.0000017439.60943.5c.

  55. Udagawa A., Shiota G., Ichiba M., Murawaki Y. Effect of rebamipide on acetic acid–induced gastric ulcer in rats: involvement of hepatocyte growth factor. Scand J Gastroenterol. 2003; 38(2): 141–46. doi: 10.1080/00365520310000609.

  56. Watanabe S., Wang X.E., Hirose M. et al. Effects of rebamipide on bile acid-induced inhibition of gastric epithelial repair in a rabbit cell culture model. Aliment Pharmacol Ther. 1996; 10(6): 927–32. doi: 10.1046/j.1365–2036.1996.105276000.x.

  57. Hahm K.B., Park I.S., Kim Y.S. et al. Role of rebamipide on induction of heat-shock proteins and protection against reactive oxygen metabolite–mediated cell damage in cultured gastric mucosal cells. Free Radic Biol Med. 1997; 22(4): 711–16. doi: 10.1016/s0891-5849(96)00406-6.

  58. Fujioka T., Arakawa T., Shimoyama T. et al. Effects of rebamipide, a gastro–protective drug on the Helicobacter pylori status and inflammation in the gastric mucosa of patients with gastric ulcer: a randomized double–blind placebo–controlled multicentre trial. Aliment Pharmacol Ther. 2003; 18 Suppl 1: 146–52. doi: 10.1046/j.1365-2036.18.s1.20.x.

  59. Yoshida N., Yoshikawa T., Iinuma S. et al. Rebamipide protects against activation of neutrophils by Helicobacter pylori. Dig Dis Sci. 1996; 41(6): 1139–44. doi: 10.1007/bf02088229.

  60. Du Y., Li Z., Zhan X. et al. Anti-inflammatory effects of rebamipide according to Helicobacter pylori status in patients with chronic erosive gastritis: a randomized sucralfate-controlled multicenter trial in China-STARS study. Dig Dis Sci. 2008; 53(11): 2886–95. doi: 10.1007/s10620-007-0180-z.

  61. Masamune A., Yoshida M., Sakai Y., Shimosegawa T. Rebamipide inhibits ceramide-induced interleukin-8 production in Kato III human gastric cancer cells. J Pharmacol Exp Ther. 2001; 298(2): 485–92.

  62. Sugimoto M., Uotani T., Furuta T. Does rebamipide prevent gastric mucosal injury in patients taking aspirin and clopidogrel? Dig Dis Sci. 2014; 59(8): 1671–73. doi: 10.1007/s10620-014-3145-z.

  63. Suzuki H., Mori M., Kai A. et al. Effect of rebamipide on H. pylori-associated gastric mucosal injury in Mongolian gerbils. Dig Dis Sci. 1998; 43(9 Suppl): 181S–187S.

  64. Hayashi S., Sugiyama T., Amano K. et al. Effect of rebamipide, a novel antiulcer agent, on Helicobacter pylori adhesion to gastric epithelial cells. Antimicrob Agents Chemother. 1998; 42(8): 1895–99.

  65. Tanigawa T., Watanabe T., Otani K. et al. Rebamipide inhibits indomethacin-induced small intestinal injury: possible involvement of intestinal microbiota modulation by upregulation of α-defensin 5. Eur J Pharmacol. 2013; 704(1–3): 64–69. doi: 10.1016/j.ejphar.2013.02.010.

  66. Yamada S., Naito Y., Takagi T. et al. Rebamipide ameliorates indomethacin–induced small intestinal injury in rats via the inhibition of matrix metalloproteinases activity. J Gastroenterol Hepatol. 2012; 27(12): 1816–24. doi: 10.1111/j.1440-1746.2012.07275.x.

  67. Hasegawa M., Horiki N., Tanaka K. et al. The efficacy of rebamipide add-on therapy in arthritic patients with COX-2 selective inhibitor-related gastrointestinal events: a prospective, randomized, open–label blinded–endpoint pilot study by the GLORIA study group. Mod Rheumatol. 2013; 23(6): 1172–78. doi: 10.1007/s10165-012-0819-2.

  68. Kim J.H., Park S.H., Cho C.S. et al. Preventive efficacy and safety of rebamipide in nonsteroidal anti–inflammatory drug-induced mucosal toxicity. Gut Liver. 2014; 8(4): 371–79. doi: 10.5009/gnl.2014.8.4.371.

  69. Tozawa K., Oshima T., Okugawa T. et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled study of rebamipide for gastric mucosal injury taking aspirin with or without clopidogrel. Dig Dis Sci. 2014; 59(8): 1885–90. doi: 10.1007/s10620-014-3108-4.

  70. Watanabe T., Takeuchi T., Handa O. et al. A multicenter, randomized, double-blind, placebo-controlled trial of high–dose rebamipide treatment for low-dose aspirin induced moderate-to-severe small intestinal damage. PLoS One. 2015; 10(4): e0122330. doi: 10.1371/journal.pone.0122330.

  71. Niwa Y., Nakamura M., Ohmiya N. et al. Efficacy of rebamipide for diclofenac–induced small–intestinal mucosal injuries in healthy subjects: a prospective, randomized, double-blinded, placebo-controlled, cross-over study. J Gastroenterol. 2008; 43(4): 270–76. doi: 10.1007/s00535-007-2155-4.

  72. Fujimori S., Takahashi Y., Gudis K. et al. Rebamipide has the potential to reduce the intensity of NSAID-induced small intestinal injury: a double-blind, randomized, controlled trial evaluated by capsule endoscopy. J Gastroenterol. 2011; 46(1): 57–64. doi: 10.1007/s00535-010-0332-3.

  73. Mizukami K., Murakami K., Abe T. et al. Aspirin-induced small bowel injuries and the preventive effect of rebamipide. World J Gastroenterol. 2011; 17(46): 5117–22. doi: 10.3748/wjg.v17.i46.5117.

  74. Kurokawa S., Katsuki S., Fujita T. et al. A randomized, double-blinded, placebo-controlled, multicenter trial, healing effect of rebamipide in patients with low-dose aspirin and/or non-steroidal anti-inflammatory drug induced small bowel injury. J Gastroenterol. 2014; 49(2): 239–44. doi: 10.1007/s00535-013-0805-2.

  75. Genta R.M. Review article: the role of rebamipide in the management of inflammatory disease of the gastrointestinal tract. Aliment Pharmacol Ther. 2003; 18(Suppl 1): 8–13. doi: 10.1046/j.1365-2036.18.s1.5.x.

  76. Мороз Е.В., Каратеев А.Е. Ребамипид: эффективная медикаментозная профилактика НПВП-энтеропатии возможна. Современная ревматология. 2016; 4: 97–105. [Moroz E.V., Karateev A.E. Rebamipide: effective drug prevention of NSAID enteropathy is possible. Sovremennaya revmatologiya. 2016; 4: 97–105 (In Russ.)]. doi: http://dx.doi.org/10.14412/1996-7012-2016-4-97-105.

  77. Симаненков В.И., Лутаенко Е.А., Никогосян А.А. Клинико-фармакологические особенности применения ребамипида при заболеваниях желудочно-кишечного тракта. Литературный обзор. Медицинский совет. 2016; 19: 88–95. [Simanenkov V.I., Lutaenko E.A., Nikoghosyan A.A. Clinical and pharmacological features of the use of rebamipide in diseases of the gastrointestinal tract. Literature review. Meditsinskiy sovet. 2016; 19: 88–95 (In Russ.)]. doi: 10.21518/2079-701X-2016-19-88-95.

  78. Чорбинская С.А., Кудрявцева Н.А., Степанова И.И. с соавт. НПВП-индуцированное поражение желудочно-кишечного тракта. Новые возможности гастро- и энтеропротекции. Кремлевская медицина. Клинический вестник. 2019; 4: 98–104. [Chorbinskaya S.A., Kudryavceva N.A., Stepanova I.I. et al. NSAID-induced lesions of the gastrointestinal tract. New possibilities of gastro- and enteroprotection. Kremlevskaya medicina. Klinicheskiy vestnik. 2019; 4: 98–104 (In Russ.)]. doi: 10.26269/brbt-1q23.

  79. Каратеев А.Е., Мороз Е.В., Крюков Е.В. Поражение тонкой кишки, ассоциированное с приемом нестероидных противовоспалительных препаратов. Альманах клинической медицины. 2019; 6: 559–567. [Karateev A.E., Frost E.V., Kryukov E.V. Damage to the small intestine associated with non–steroidal anti–inflammatory drugs. Almanakh klinicheskoy meditsiny. 2019; 6: 559–567 (In Russ.)]. doi: 10.18786/2072-0505-2019-47-048.

  80. Ishihara K., Komuro Y., Nishiyama N. et al. Effect of rebamipide on mucus secretion by endogenous prostaglandin-independent mechanism in rat gastric mucosa. Arzneimittelforschung. 1992; 42(12): 1462–66.

  81. Iijima К., Ichikawa T., Okada S. et al. Rebamipide, a cytoprotective drug, increases gastric mucus secretion in human: evaluations with endoscopic gastrin test. Dig Dis Sci. 2009; 54(7): 1500–07. doi: 10.1007/s10620-008-0507-4.

  82. Nagano Y., Matsui H., Muramatsu M. et al. Rebamipide significantly inhibits indomethacin–induced mitochondrial damage, lipid peroxidation, and apoptosis in gastric epithelial RGM-1 cells. Dig Dis Sci. 2005; 50(Suppl. 1): 76–83. doi: 10.1007/s10620-005-2810-7.

  83. Lai Y., Zhong W., Yu T. et al. Rebamipide promotes the regeneration of aspirin-induced small-intestine mucosal injury through accumulation of β-catenin. PLoS One. 2015; 10(7): e0132031. doi: 10.1371/journal.pone.0132031.

  84. Haruma K., Ito M. Review article: clinical significance of mucosal–protective agents: acid, inflammation, carcinogenesis and rebamipide. Aliment Pharmacol Ther. 2003; 18(Suppl. 1): 153–59. doi: 10.1046/j.1365–2036.18.s1.17.x.

  85. Pittayanon R., Piyachaturawat P., Rerknimitr R. et al. Cytoprotective agent for peptic ulcer prevention in patients taking dual antiplatelet agents: A randomized, double-blind placebo-controlled trial. J Gastroenterol Hepatol. 2019; 34(9): 1517–22. doi: 10.1111/jgh.14671.

  86. Koretsune Y., Yamashita T., Yasaka M. et al. Comparative effectiveness and safety of warfarin and dabigatran in patients with non–valvular atrial fibrillation in Japan: A claims database analysis. J Cardiol. 2019; 73(3): 204–09. doi: 10.1016/j.jjcc.2018.09.004.

  87. Оганов Р.Г., Симаненков В.И., Бакулин И.Г. с соавт. Коморбидная патология в клинической практике. Алгоритмы диагностики и лечения. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2019; 18(1): 5–66. [Oganov R.G., Simanenkov V.I., Bakulin I.G. et. al. Comorbidities in clinical practice. Algorithms for diagnostics and treatment. Kardiovaskulyarnaya terapiya i profilaktika. 2019; 18(1): 5–66 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.15829/1728-8800-2019-1-5-66.

  88. Akagi S., Fujiwara T., Nishida M. et al. The effectiveness of rebamipide mouthwash therapy for radiotherapy and chemoradiotherapy-induced oral mucositis in patients with head and neck cancer: a systematic review and meta-analysis. J Pharm Health Care Sci. 2019; 5: 16. doi: 10.1186/s40780-019-0146-2.

  89. Watanabe H. Medical treatment for dry eye in Japan. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2018; 59(14): DES116–DES120. doi: 10.1167/iovs.18-24130.

  90. Гриневич В.Б., Губонина И.В., Дощицин В.Л. с соавт. Особенности ведения коморбидных пациентов в период пандемии новой коронавирусной инфекции (COVID-19). Национальный консенсус – 2020. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020; 4: 135–172. [Grinevich V.B., Gubonina I.V., Doshchitsin V.L. et. al. Management of patients with comorbidity during novel coronavirus (COVID–19) pandemic. National Consensus Statement – 2020. Kardiovaskulyarnaya terapiya i profilaktika. 2020; 4: 135–172 (In Russ.)]. doi: 10.15829/1728-8800-2020-2630.

  91. Гриневич В.Б., Кравчук Ю.А., Ткаченко Е.И. с соавт. Особенности ведения больных с гастроэнтерологической патологией в условиях пандемии COVID-19. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2020; 4: 3–18. [Grinevich V.B., Kravchuk Yu.A., Tkachenko E.I. et al. Features of management of patients with gastroenterological pathology in the conditions of the COVID-19 pandemic. Eksperimental'naya i klinicheskaya gastroenterologiya. 2020; 4: 3–18 (In Russ.)]. doi: 10.31146/1682-8658-ecg-176-4-3-18.

  92. Ткачева О.Н., Котовская Ю.В., Алексанян Л.А. с соавт. Новая коронавирусная инфекция SARS-CoV-2 (COVID-19) у пациентов пожилого и старческого возраста: особенности профилактики, диагностики и лечения. Согласованная позиция экспертов Российской ассоциации геронтологов и гериатров. Кардиоваскулярная терапия и профилактика. 2020; 3: 127–150. [Tkacheva O.N., Kotovskaya Yu.V., Aleksanyan L.A. et al. Novel coronavirus infection SARS-CoV-2 in elderly and senile patients: prevention, diagnosis and treatment. Expert position paper of the Russian Association of Gerontology and Geriatrics. Kardiovaskulyarnaya terapiya i profilaktika. 2020; 3: 127–150 (In Russ.)]. doi: 10.15829/1728-8800-2020-2601.

  93. Wen X., Chen X., Zhou X. Rebamipide inhibited expression of TLR4 and TNF-alpha release in pulmonary epithelial cell line A549 induced by lipopolysaccharide. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2009; 34(5): 457–60.

  94. Yasuda T., Chiba H., Satomi T. et al. Preventive effect of rebamipide gargle on chemoradiotherpy-induced oral mucositis in patients with oral cancer: a pilot study. J Oral Maxillofac Res. 2012; 2(4): e3. doi:10.5037/jomr.2011.2403.

  95. Akagi S., Fujiwara T., Nishida M. et al. The effectiveness of rebamipide mouthwash therapy for radiotherapy and chemoradiotherapy-induced oral mucositis in patients with head and neck cancer: a systematic review and meta-analysis. J Pharm Health Care Sci. 2019; 5: 16. doi:10.1186/s40780-019-0146-2.

  96. Urita Y., Watanabe T., Maeda T. et al. Rebamipide and mosapride enhance pilocarpine-induced salivation. N Am J Med Sci. 2009; 1(3): 121–24.

  97. Коробейникова Е.Р., Шкатова Е.Ю. Применение ребамипида в комплексной терапии эрозивных поражений гастродуоденальной зоны лиц молодого возраста. Медицинский альманах. 2018; 1: 26–30. [Korobeinikova E.R., Shkatova E.Yu. Application of rebamipide in the complex therapy of erosive lesions of the gastroduodenal zone in young patients. Medicinskiy al’manakh. 2018; 1: 26–30 (In Russ.)].

  98. Дичева Д.Т., Андреев Д.Н., Парцваниа-Виноградова Е.В., Маев И.В. Оценка эффективности и безопасности применения ребамипида в схеме тройной эрадикационной терапии инфекции Helicobacter pylori. Медицинский совет. 2018; 3: 86–89. [Dicheva D.T., Andreev D.N., Partsvania-Vinogradova I.V., Maev I.V. Evaluation of efficacy and safety of rebamipide use in the triple therapy for Helicobacter pylori eradication: a pilot study. Meditsinskiy sovet. 2018; 3: 86–89 (In Russ.)]. doi: 10.21518/2079-701X-2018-3-86-89.

  99. Андреев Д.Н., Маев И.В., Дичева Д.Т. с соавт. Эффективность и безопасность применения ребамипида в схеме тройной эрадикационной терапии инфекции Helicobacter pylori: проспективное рандомизированное сравнительное исследование. Терапевтический архив. 2018; 8: 27–32. [Andreev D.N., Maev I.V., Dicheva D.T. et al. Efficacy and safety of the use of rebamipide in the scheme of triple eradication therapy of Helicobacter pylori infection: a prospective randomized comparative study. Therapevtichesky arkhiv. 2018; 8: 27–32 (In Russ.)]. doi: 10.26442/terarkh201890827-32.

  100. Парфенов А.И., Белостоцкий Н.И., Дбар С.Р. соавт. Энтеропатия с нарушением мембранного пищеварения. Эффективная фармакотерапия. 2018; 16; 20–27. [Parfyonov A.I., Belostotsky N.I., Dbar S.R. et al. Enteropathy with disorder of membrane digestion. Effektivnaya farmakoterapiya. 2018; 16; 20–27 (In Russ.)].

  101. Сагынбаева В.Э., Лазебник Л.Б. Ребамипид – современный гастроцитопротектор при эрозивно-язвенных поражениях верхних отделов желудочно-кишечного тракта: результаты исследования. Терапия. 2019; 8: 173–183. [Sagynbaeva V.E., Lazebnik L.B. Rebamipide is a modern gastrocytoprotector under erosive and ulcerative injuries of upper gastrointestinal tract: results of the research. Therapy. 2019; 8: 173–183 (In Russ.)]. doi: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2019.8.173-183.

  102. Мещерякова Г.М., Копылова Д.В., Ватутина В.С. Опыт применения ребамипида в лечении постлучевого колита. Колопроктология. 2019; S3: 87. [Meshcheryakova G.M., Kopylova D.V., Vatutina V.S. Experience of using rebamipide in the treatment of post-radiation colitis. 2019; S3: 87 (In Russ.)].

  103. Викторова И.А., Трухан Д.И., Иванова Д.С. Современные возможности лечения и профилактики НПВП индуцированных энтеропатий. Медицинский совет. 2020; 5: 30–40. [Viktorova I.A., Trukhan D.I., Ivanova D.S. Modern opportunities for treatment and prevention of NSAID–induced enteropathies. Meditsinskiy sovet. 2020; 5: 30–40 (In Russ.)]. doi: 10.21518/2079-701X-2020-5-30-40.


About the Autors


Dmitry I. Trukhan, MD, associate professor of the Department of polyclinic therapy and internal diseases of Omsk state medical university of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 644043, Omsk, 12 Lenin Str. Теl.: +7 (381) 295-72-77. E-mail: dmitry_trukhan@mail.ru. ORCID: 0000-0002-1597-1876
Natalia A. Chusova, clinical resident of the Department of clinical functional diagnostics of A.I. Evdokimov Moscow State University of Medicine and Dentistry of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 107014, Moscow, 7/11 Stromynka Str. E-mail: natchusova2@list.ru. ORCID: 0000-0003-3401-3267


Similar Articles


Бионика Медиа