Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy: new nosological form of dementia


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2021.8.164-171

Katunina E.A.

1) N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, Moscow; 2) Federal Center for Brain and Neurotechnologies of FMBA of Russia, Moscow
Abstract. An increase in life expectancy is one of the reasons for the increase in the prevalence of cognitive disorders, primarily associated with neurodegenerative diseases. The development of methods of structural and functional neuroimaging, technologies of histochemical studies made it possible to identify new forms of dementia caused by the accumulation of toxic protein products. These dementias include limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy (LATE), the diagnostic criteria for which were published in 2019. Distinctive features of LATE are late onset (in persons aged 80 years and older), the predominance of amnestic syndrome in the absence of speech and behavioral disorders, as well as a frequent combination with hippocampal sclerosis. This review is devoted to the pathogenetic and clinical features of this new form of dementia.

ВВЕДЕНИЕ

В последние десятилетия проблема когнитивных расстройств привлекает все большее внимание здравоохранения. Прогрессивно увеличивается количество пациентов, появляются новые вопросы о патогенетической терапии различных нозологических форм, сопровождающихся такими расстройствами, о социальной защите больных и многие другие.

Этиология деменции крайне разнообразна: она включает ряд нейродегенеративных заболеваний, прежде всего болезнь Альцгеймера, лобно-височную дегенерацию, болезнь диффузных телец Леви, болезнь Паркинсона, а также сосудистую посттравматическую патологию головного мозга. В 2019 г. рабочей группой была предложена новая нозологическая форма, сопровождающаяся развитием деменции, – Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy (преимущественно лимбическая возрастная ТДП-43 энцефалопатия) и опубликованы ее диагностические критерии [1]. Для простоты восприятия этого англоязычного термина далее в статье будет использоваться термин «поздняя лимбическая энцефалопатия» (ПЛЭ).

РАСПРОСТРАНЕННОСТЬ И ГЕНЕЗ ПОЗДНЕЙ ЛИМБИЧЕСКОЙ ТДП-43 ЭНЦЕФАЛОПАТИИ

Как показали проведенные в последние годы патоморфологические исследования, ПЛЭ является распространенной патологией среди людей пожилого и старческого возраста. При аутопсии у 25% пациентов с когнитивными нарушениями выявлялись морфологические признаки ПЛЭ [1]. ПЛЭ развивается у 20–50% людей старше 80 лет и связана с накоплением патологических форм ДНК-связывающего белка-43 (TDP-43), преимущественно в лимбических отделах головного мозга. TDP-43 представляет собой повсеместно экспрессируемый белок, принадлежащий к семейству ядерных белков hnRNP [2, 3]. Впервые цитоплазматические включения фосфорилированного TDP-43 были обнаружены в 2006 г. у больных с боковым амиотрофическим склерозом (БАС) и у большинства пациентов с лобно-височной дегенерацией (ЛВД) [4, 5]. Аберрантная агрегация этого белка и накопление его в цитоплазме клеток в виде включений рассматривается как основной морфологический признак ПЛЭ [6]. Кроме того, TDP-43 протеинопатия ассоциируется с болезнью Альцгеймера (БА) и болезнью диффузных телец Леви (БДТЛ) [1]. Растущая популяция людей старше 80 лет во всем мире приведет к тому, что число больных ПЛЭ будет прогрессивно возрастать.

Предложенный рабочей группой термин «преимущественно лимбическая возрастная ТДП- 43 энцефалопатия» заменяет несколько ранее использовавшихся обозначений, связанных с протеинопатией TDP-43 и когнитивным снижением: гиппокампальный склероз, возрастной склероз гиппокампа, деменция при склерозе гиппокампа, церебральный возраст-зависимый TDP-43 склероз, TDP-43 патология пожилых [7–11]. Эти термины отражают ведущую роль гиппокампального склероза в развитии спектра когнитивных расстройств при ПЛЭ. Гиппокампальный склероз выявляют у 90% больных с ПЛЭ [1, 9, 12]. В 1994 г. Dickson D.W. et al. впервые опубликовали результаты морфологического исследования мозга 13 пожилых людей (старше 80 лет), страдавших деменцией, похожей по клиническим признакам на болезнь Альцгеймера (БА), у которых наблюдался гиппокампальный склероз, тогда специфичных для БА изменений не было [13].

Позже появились данные и других патоморфологических исследований пациентов с деменцией и склерозом гиппокампа [14–20]. Гиппокампальный склероз при ПЛЭ может быть как односторонним, так и двусторонним, при этом он имеет тенденцию к прогрессированию в рострально-каудальном направлении [21–23]. Несмотря на то что гиппокампальный склероз – очень часто встречающаяся особенность у больных с ПЛЭ, он не является обязательным ее признаком, что отражено в предложенных рабочей группой диагностических критериях 2019 г. [1, 12, 21, 24]. Кроме того, гиппокампальный склероз встречается при целом ряде других заболеваний, в том числе эпилепсии, гипоксии, гипогликемии, некоторых инфекциях и множестве нейродегенеративных заболеваний [25–32]. Наличие выраженного гиппокампального склероза – важный признак дифференциальной диагностики с БА.

В развитии ПЛЭ к настоящему времени установлено влияние полиморфизма как минимум 5 генов: гранулина (GRN) на 17 хромосоме; трансмембранного протеина 106В (TMEM106B) на 7 хромосоме; АТФ-связующего 9 подсемейства кассет (ABCC9) на 12p хромосоме; подсемейства M-калиевых каналов (KCNMB2) на 3q хромосоме и аполипопротеина Е (APOE) на 19q хромосоме [33–41]. Показано, что варианты генов в GRN и TMEM106B наиболее часто ассоциируются со склерозом гиппокампа и TDP-43 протеинопатией [42–45] и соответственно с риском развития ПЛЭ. Гены GRN и TMEM106B также вовлечены в патогенез ЛВД, что является объединяющим фактором этих двух нейродегенеративных заболеваний [46–48]. Важным недавним открытием, сделанным различными группами исследователей, стал тот факт, что аллель APOE 4, которая является фактором риска развития БА и БДТЛ, также связана с повышенным риском TDP-43 протеинопатии у пожилых людей [41, 49, 50]. Само по себе наличие или отсутствие перечисленных аллелей риска (TMEM106B, GRN и APOE) или их сочетания не позволяет уверенно прогнозировать риск ПЛЭ; для этого должны иметь место и другие факторы, влияющие на фенотип заболевания. Есть исследования, свидетельствующие о роли в развитии ПЛЭ дисфункции гормонов щитовидной железы [6, 51]. В популяционном исследовании было показано, что высокий уровень тиреотропина был связан с уменьшением объема гиппокампа [52].

Как уже отмечалось выше, важнейшим иммуногистохимическим признаком заболевания служит TDP-43 протеинопатия. Белок TDP-43, состоит из 414 аминокислот, кодируется геном TARDBP [53], связывается с РНК и ДНК и выполняет множество функций в регуляции экспрессии генов на уровнях как транскрипции, так и трансляции [2, 3]. Экспрессируемый в большинстве тканей и типов клеток человека TDP-43 преимущественно не фосфорилирован и локализован в основном в ядрах клеток; в цитоплазме при этом находится не более 5–20% белка [54]. При патологических состояниях TDP-43 фосфорилируется, накапливается в ядрах и перемещается в цитоплазму нейронов [4]. Фосфорилированные формы TDP- 43 также наблюдаются в дендритах, олигодендроглии, астроцитах. Молекулярный механизм, лежащий в основе распространения TDP-43, все еще не ясен. Возможно, что агрегаты TDP-43 передаются от нейрона к нейрону через экзосомы и/или туннельные нанотрубки или путем транссинаптической передачи (транспорт от пресинаптических к постсинаптическим терминалам). Более того, глиальные клетки (олигодендроциты, астроциты и микроглия) могут поглощать агрегаты TDP-43 посредством фагоцитоза, после чего агрегаты TDP-43 высвобождаются из глиальных клеток и передаются нейронам и/или соседним глиальным клеткам. Распространение TDP-43 глиальными клетками может играть важную роль в прогрессировании нейродегенеративных заболеваний [55]. Накопление фосфорилированного белка сопряжено с нарушением синаптической функции, нейрональной гибелью и нарушением функций, связанных с определенными областями головного мозга [56]. Для ПЛЭ характерен особый паттерн распространения патологического TDP-43. Рабочей группой в 2019 г. были выделены III стадии прогрессирования заболевания: I – амигдала, II – вовлечение гиппокампа, III – переход процесса на среднюю лобную долю [57]. В дополнение к лимбическим структурам протеинопатия TDP-43 при ПЛЭ также была описана в обонятельной луковице, неокортексе, базальных ганглиях и реже в стволе головного мозга [58–61].

Причинно-следственная связь между TDP-43 протеопатией, гиппокампальным склерозом и развитием когнитивных расстройств остается неясной. Power M.C. et al. в 2018 г. выдвинули 3 гипотезы развития патологического процесса:

1) TDP-43 протеопатия вызывает и/или ускоряет развитие гиппокампального склероза, который сопровождается развитием амнестического синдрома;

2) TDP-43 протеинопатия, независимо от гиппокампального склероза, вызывает развитие деменции;

3) развитие деменции определяется наложением TDP-43 протеинопатии на альцгеймеровские изменения [62].

КЛИНИЧЕСКИЕ ПРОЯВЛЕНИЯ И ДИАГНОСТИКА

Главным клиническим проявлением ПЛЭ выступает амнестический синдром, напоминающий БА. При ПЛЭ преимущественно нарушается эпизодическая память. При присоединении гиппокампального склероза добавляются изменения семантической памяти [63]. Важное отличие нейропсихологического профиля при ПЛЭ от БА – сохранность беглости речи (зависящей от коры головного мозга) при наличии глубокого дефицита отложенного запоминания списка слов (зависящего от гиппокампа) [57, 63–65]. Прогрессирование когнитивного дефицита при ПЛЭ происходит более медленно, чем при БА. Вместе с тем TDP-43 протеопатия часто сочетается с альцгеймеровскими изменениями. В этих случаях отмечается быстрое прогрессирование когнитивных расстройств [66, 67].

Связь БА и ПЛЭ не однозначна. Возможно, что TDP-43 протеинопатия снижает порог развития деменции [67, 68]. Включения TDP-43 белка находят в нейронах с нейрофибриллярными клубочками. Предполагают, что TDP-43 способен стимулировать формирование нейрофибриллярных клубочков [12]. C другой стороны, было показано, что отложения бета-амилоида могут ускорять фосфорилирование TDP-43 и его переход в цитоплазму [69]. Распространенность протеинопатии TDP-43, гиппокампального склероза и связанного с ним амнестической деменции увеличиваются с возрастом, в то время как распространенность БА снижается после 90–95 лет [9, 21, 70, 71].

TDP-43 протеинопатия характерна и для ЛВД. Несмотря на то что мутации, ассоциированные с TDP-43 белком, встречаются в небольшом проценте случаев, TDP-43 позитивные цитоплазматические включения наблюдаются в 50% случаев больных с ЛВД [72–74]. От ЛВД ПЛЭ отличается более ограниченным регионом распространения (амигдала, гиппокамп, средняя лобная доля), возрастом дебюта заболевания (ЛВД относятся к наиболее частым вариантам пресенильных деменций, ПЛЭ развивается в возрасте старше 80 лет), отсутствием речевых и поведенческих расстройств [75]. Для ПЛЭ не характерны и такие нейропсихиатрические симптомы, как апатия, ажитация, депрессия, психозы, что отличает ПЛЭ от БА [76].

В развитии ПЛЭ обсуждается и сосудистый компонент. Недавно был опубликован анализ трех продольных клинико-патологических исследований с включением 749 пациентов c морфологически подтвержденной ПЛЭ. У 54,6% из них отмечалась микрососудистая патология умеренной и тяжелой степени тяжести с локализацией в области базальных ганглиев (47,6%), области кровоснабжения передней мозговой артерии (35,2%) и области задней мозговой артерии (41,5%). У 36,6% были выявлены микроинфаркты [77]. Ранее роль сосудистой патологии в развитии TDP-43 была подтверждена и в других исследованиях [78, 79].

Несмотря на разработанные критерии, прижизненный диагноз ПЛЭ является проблематичным. Фактически диагноз может быть подтвержден при посмертном иммуногистохимическом исследовании, поскольку клиническая картина, данные магнитно-резонансной томографии (МРТ) не имеют строго специфичных признаков. Другой вариант подтверждения диагноза – проведение ПЭТ с лигандами к амилоидному белку и тау-протеину (в России эти лиганды не сертифицированы). Отсутствие изменений на ПЭТ с этими лигандами и одновременно выявление специфических атрофических изменений на МРТ позволяет предположить ПЛЭ с высокой степенью достоверности.

Разработка прижизненных биомаркеров (в ликворе, ПЭТ-маркеров) этого заболевания остается весьма сложной проблемой. Во-первых, маркеры к TDP-43 белку не специфичны только для ПЛЭ, во-вторых, внутриклеточное расположение включений TDP-43 создает препятствие для его выявления с помощью радионуклеидных лигандов. Эта же проблема – важнейшее препятствие для создания таргетной антибелковой терапии [1, 80].

ВОЗМОЖНОСТИ ТЕРАПИИ ПОЗДНЕЙ ЛИМБИЧЕСКОЙ ТДП-43 ЭНЦЕФАЛОПАТИИ

В настоящее время наиболее убедительной доказательной базой в лечении нейродегенеративных, сосудистой и смешанных деменций обладают нейротрансмиттерные препараты: ингибиторы глутаматных NMDA-рецепторов (мемантин) и ингибиторы ацетилхолинэстеразы (донепезил, ривастигмин, галантамин).

К ценным особенностям мемантина (Акатинола Мемантина) относится большой диапазон применения – от умеренных когнитивных нарушений до тяжелой деменции. Механизм действия Акатинола Мемантина связан с селективной блокадой NMDA-рецепторов, что уменьшает повреждающее действие глутамата на холинергические нейроны и способствует их большей выживаемости [81]. Кроме того, в эксперименте было показано, что мемантин способен подавлять экспрессию цитокинов [82], ингибировать активность микроглии и уменьшать выраженность нейронального воспаления. Снижение эксайтотоксичности, подавление нейровоспалительных механизмов, стимуляция выработки нейротрофического фактора BDNF [83] обеспечивает многоплановый патогенетический эффект препарата. Кроме того, Акатинол Мемантин способствует оптимизации синаптической передачи в глутаматергических синапсах, что лежит в основе его симптоматического эффекта в отношении когнитивных функций, прежде всего памяти, внимания, речевых функций [81].

Эффективность Акатинола Мемантина доказана в большом количестве рандомизированных двойных слепых плацебо-контролируемых исследований [84, 85]. В последнем метаанализе, включившем 35 исследований [86], подтверждена высокая эффективность мемантина (p <0,001) при лечении БА. Помимо влияния на когнитивные функции, препарат повышал возможности повседневного функционирования, выполнения простейших навыков, снижал нагрузку на ухаживающих лиц [87, 88]. Следует подчеркнуть доказанную эффективность Акатинола Мемантина в лечении речевых расстройств при БА, а также постинсультной афазии [89, 90]. У пациентов, принимающих этот препарат, реже развиваются поведенческие нарушения (ажитация, агрессия, бредовые расстройства) или снижается их выраженность [91].

Важным преимуществом акатинола по сравнению с ингибиторами ацетилхолинэстеразы является его хорошая переносимость, отсутствие негативных лекарственных взаимодействий. Акатинол Мемантин можно применять у пациентов с нарушениями сердечного ритма, заболеваниями печени и почек [92]. Рекомендованная начальная доза препарата составляет 5 мг/сут с увеличением ее на 5 мг/сут еженедельно до достижения дозировки 20 мг/сут [81]. При прогрессировании заболевания возможно достижение максимальной суточной дозы 30 мг [93]. В целях улучшения приверженности терапии и максимального упрощения приема препарата разработана форма упаковки Акатинола Мемантина, в которую входит набор таблеток с разными дозировками на каждую неделю периода титрования дозы с переходом на последующий прием препарата в дозе 20 мг 1 раз/ сут. Отметим, что в рандомизированных контролируемых исследованиях была подтверждена эквивалентность режимов дозирования Акатинола Мемантина 20 мг 1 раз/ сут и 10 мг 2 раза/сут [81, 94].


Literature



  1. Nelson P.T., Dennis W., Dickson D.W. et al. Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy (LATE): Consensus working group report. Brain. 2019; 142(6): 1503-1527. doi: 10.1093/brain/awz099.

  2. Cohen T.J., Lee V.M., Trojanowski J.Q. TDP-43 functions and pathogenic mechanisms implicated in TDP-43 proteinopathies. Trends Mol Med. 2011; 17(11): 659–67. doi: 10.1016/j.molmed.2011.06.004

  3. Guo L., Shorter J. Biology and pathobiology of TDP-43 and emergent therapeutic strategies. Cold Spring Harb Perspect Med. 2017; 7(9): a024554. doi: 10.1101/cshperspect.a024554.

  4. Neumann M., Sampathu D.M., Kwong L.K. et al. Ubiquitinated TDP-43 in frontotemporal lobar degeneration and amyotrophic lateral sclerosis. Science. 2006; 314(5796): 130–33. doi: 10.1126/science.1134108.

  5. Cairns N.J., Bigio E.H., Mackenzie I.R. et al. Neuropathologic diagnostic and nosologic criteria for frontotemporal lobar degeneration: consensus of the Consortium for Frontotemporal Lobar Degeneration. Acta Neuropathol. 2007; 114(1): 5–22. doi: 10.1007/s00401-007-0237-2.

  6. Nelson P.T., Gal Z., Wang W.X. et al. TDP-43 proteinopathy in aging: associations with risk-associated gene variants and with brain parenchymal thyroid hormone levels. Neurobiol Dis. 2019; 125: 67–76. doi: 10.1016/j.nbd.2019.01.013.

  7. Kuslansky G., Verghese J., Dickson D. et al. Hippocampal sclerosis: cognitive consequences and contribution to dementia. Neurology. 2004; 62: A128–29.

  8. Lippa C.F., Dickson D.W. Hippocampal sclerosis dementia: expanding the phenotypes of frontotemporal dementias? Neurology. 2004; 63(3): 414–15. doi: 10.1212/01.wnl.0000136241.71716.72.

  9. Nelson P.T., Smith C.D., Abner E.L. et al. Hippocampal sclerosis of aging, a prevalent and high-morbidity brain disease. Acta Neuropathol. 2013; 126(2): 161–77. doi: 10.1007/s00401-013-1154-1.

  10. Nelson P.T., Trojanowski J.Q., Abner E.L. et al. «New old pathologies»: AD, PART, and cerebral age-related TDP-43 with sclerosis (CARTS). J Neuropathol Exp Neurol. 2016; 75(6): 482–98. doi: 10.1093/jnen/nlw033

  11. Dutra J.R., Cortes E.P., Vonsattel J.P. Update on hippocampal sclerosis. Curr Neurol Neurosci Rep. 2015; 15(10): 67. doi: 10.1007/s11910-015-0592-7.

  12. Amador-Ortiz C., Lin W.L., Ahmed Z. et al. TDP-43 immunoreactivity in hippocampal sclerosis and Alzheimer’s disease. Ann Neurol. 2007; 61(5): 435–45. doi: 10.1002/ana.21154.

  13. Dickson D.W., Davies P., Bevona C. et al. Hippocampal sclerosis: A common pathological feature of dementia in very old (> or =80 years of age) humans. Acta Neuropathol. 1994; 88(3): 212–21. doi: 10.1007/BF00293396.

  14. Crystal H.A., Dickson D., Davies P. et al. The relative frequency of «dementia of unknown etiology» increases with age and is nearly 50% in nonagenarians. Arch Neurol. 2000; 57(5): 713–19. doi: 10.1001/archneur.57.5.713.

  15. Barker W.W., Luis C.A., Kashuba A. et al. Relative frequencies of Alzheimer disease, Lewy body, vascular and frontotemporal dementia, and hippocampal sclerosis in the State of Florida Brain Bank. Alzheimer Dis Assoc Disord. 2002; 16(4): 203–12. doi: 10.1097/00002093-200210000-00001.

  16. Leverenz J.B., Agustin C.M., Tsuang D. et al. Clinical and neuropathological characteristics of hippocampal sclerosis: A community-based study. Arch Neurol. 2002; 59(7): 1099–106. doi: 10.1001/archneur.59.7.1099.

  17. White L., Petrovitch H., Hardman J. et al. Cerebrovascular pathology and dementia in autopsied Honolulu-Asia Aging Study participants. Ann N Y Acad Sci. 2002; 977: 9–23. doi: 10.1111/j.1749-6632.2002.tb04794.x.

  18. Zarow C., Vinters H.V., Ellis W.G. et al. Correlates of hippocampal neuron number in Alzheimer’s disease and ischemic vascular dementia. Ann Neurol. 2005; 57(6): 896–903. doi: 10.1002/ana.20503.

  19. Attems J., Jellinger K.A. Hippocampal sclerosis in Alzheimer disease and other dementias. Neurology. 2006; 66(5): 775. doi: 10.1212/01.wnl.0000200959.50898.26.

  20. Brayne C., Richardson K., Matthews F.E. et al. Neuropathological correlates of dementia in over-80-year-old brain donors from the population-based Cambridge city over-75 s cohort (CC75C) study. J Alzheimers Dis. 2009; 18(3): 645–58. doi: 10.3233/JAD-2009-1182.

  21. Nelson P.T., Schmitt F.A., Lin Y. et al. Hippocampal sclerosis in advanced age: Clinical and pathological features. Brain. 2011; 134(Pt 5): 1506–18. doi: 10.1093/brain/awr053.

  22. Zarow C., Weiner M.W., Ellis W.G. et al. Prevalence, laterality, and comorbidity of hippocampal sclerosis in an autopsy sample. Brain Behav. 2012; 2(4): 435–42. doi: 10.1002/brb3.66.

  23. Kero M., Raunio A., Polvikoski T. et al. Hippocampal sclerosis in the oldest old: a Finnish population-based study. J Alzheimers Dis. 2018; 63(1): 263–72. doi: 10.3233/JAD-171068.

  24. Lee E.B., Lee V.M., Trojanowski J.Q. et al. TDP-43 immunoreactivity in anoxic, ischemic and neoplastic lesions of the central nervous system. Acta Neuropathol. 2008; 115(3): 305–11. doi: 10.1007/s00401-007-0331-5.

  25. Josephs K.A., Ahmed Z., Katsuse O. et al. Neuropathologic features of frontotemporal lobar degeneration with ubiquitin-positive inclusions with progranulin gene (PGRN) mutations. J Neuropathol Exp Neurol. 2007; 66(2): 142–51. doi: 10.1097/nen.0b013e31803020cf.

  26. Thom M., Eriksson S., Martinian L. et al. Temporal lobe sclerosis associated with hippocampal sclerosis in temporal lobe epilepsy: Neuropathological features. J Neuropathol Exp Neurol. 2009; 68(8): 928–38. doi: 10.1097/NEN.0b013e3181b05d67.

  27. Yokota O., Davidson Y., Bigio E.H. et al. Phosphorylated TDP-43 pathology and hippocampal sclerosis in progressive supranuclear palsy. Acta Neuropathol. 2010; 120(1): 55–66. doi: 10.1007/s00401-010-0702-1.

  28. Malek-Ahmadi M., Kahlon V., Adler C.H. et al. Prevalence of hippocampal sclerosis in a clinicopathologically characterized cohort. Clin Exp Med Sci. 2013; 1(7): 317–27. doi: 10.12988/cems.2013.13026.

  29. Murray M.E., Bieniek K.F., Banks G.M. et al. Progressive amnestic dementia, hippocampal sclerosis, and mutation in C9ORF72. Acta Neuropathol. 2013; 126(4): 545–54. doi: 10.1007/s00401-013-1161-2.

  30. Ling H., Morris H.R., Neal J.W. et al. Mixed pathologies including chronic traumatic encephalopathy account for dementia in retired association football (soccer) players. Acta Neuropathol. 2017; 133(3): 337–52. doi: 10.1007/s00401-017-1680-3.

  31. Popkirov S., Ismail F.S., Gronheit W. et al. Progressive hippocampal sclerosis after viral encephalitis: potential role of NMDA receptor antibodies. Seizure. 2017; 51: 6–8. doi: 10.1016/j.seizure.2017.07.006.

  32. Sen A., Dugan P., Perucca P. et al. The phenotype of bilateral hippocampal sclerosis and its management in «real life» clinical settings. Epilepsia. 2018; 59(7): 1410–20. doi: 10.1111/epi.14436.

  33. Dickson D.W., Baker M., Rademakers R. Common variant in GRN is a genetic risk factor for hippocampal sclerosis in the elderly. Neurodegener Dis. 2010; 7(1–3): 170–74. doi: 10.1159/000289231.

  34. Pao W.C., Dickson D.W., Crook J.E. et al. Hippocampal sclerosis in the elderly: Genetic and pathologic findings, some mimicking Alzheimer disease clinically. Alzheimer Dis Assoc Disord. 2011; 25(4): 364–68. doi: 10.1097/WAD.0b013e31820f8f50.

  35. Beecham G.W., Hamilton K., Naj A.C. et al. Genome-wide association meta-analysis of neuropathologic features of Alzheimer’s disease and related dementias. PLoS Genet. 2014; 10(9): e1004606. doi: 10.1371/journal.pgen.1004606.

  36. Murray M.E., Cannon A., Graff-Radford N.R. et al. Differential clinicopathologic and genetic features of late-onset amnestic dementias. Acta Neuropathol. 2014; 128(3): 411–21. doi: 10.1007/s00401-014-1302-2.

  37. Nelson P.T., Estus S., Abner E.L. et al. ABCC9 gene polymorphism is associated with hippocampal sclerosis of aging pathology. Acta Neuropathol. 2014; 127(6): 825–43. doi: 10.1007/s00401-014-1282-2.

  38. Nelson P.T., Wang W.X., Partch A.B. et al. Reassessment of risk genotypes (GRN, TMEM106B, and ABCC9 variants) associated with hippocampal sclerosis of aging pathology. J Neuropathol Exp Neurol. 2015; 74(1): 75–84. doi: 10.1097/NEN.0000000000000151.

  39. Aoki N., Murray M.E., Ogaki K. et al. Hippocampal sclerosis in Lewy body disease is a TDP-43 proteinopathy similar to FTLD-TDP type A. Acta Neuropathol. 2015; 129: 53–64. doi: 10.1007/s00401-014-1358-z

  40. Katsumata Y., Nelson P.T., Ellingson S.R. et al. Gene-based association study of genes linked to hippocampal sclerosis of aging neuropathology: GRN, TMEM106B, ABCC9, and KCNMB2. Neurobiol Aging. 2017; 53: 193.e17–193.e25. doi: 10.1016/j.neurobiolaging.2017.01.003.

  41. Yang H.S., Yu L., White C.C. et al. Evaluation of TDP-43 proteinopathy and hippocampal sclerosis in relation to APOE epsilon4 haplotype status: a community-based cohort study. Lancet Neurol. 2018; 17(9): 773–81. doi: 10.1016/S1474-4422(18)30251-5.

  42. Baker M., Mackenzie I.R., Pickering-Brown S.M. et al. Mutations in progranulin cause tau-negative frontotemporal dementia linked to chromosome 17. Nature. 2006; 442(7105): 916–19. doi: 10.1038/nature05016.

  43. Boeve B.F., Baker M., Dickson D.W. et al. Frontotemporal dementia and parkinsonism associated with the IVS1+1G->A mutation in progranulin: a clinicopathologic study. Brain. 2006; 129(Pt 11): 3103–14. doi: 10.1093/brain/awl268.

  44. Cruts M., Gijselinck I., van der Zee J. et al. Null mutations in progranulin cause ubiquitin-positive frontotemporal dementia linked to chromosome 17q21. Nature. 2006; 442(7105): 920–24. doi: 10.1038/nature05017.

  45. Van Deerlin V.M., Sleiman P.M., Martinez-Lage M. et al. Common variants at 7p21 are associated with frontotemporal lobar degeneration with TDP-43 inclusions. Nat Genet. 2010; 42(3): 234–39. doi: 10.1038/ng.536.

  46. Nicholson A.M., Rademakers R. What we know about TMEM106B in neurodegeneration. Acta Neuropathol. 2016; 132(5): 639–51. doi: 10.1007/s00401-016-1610-9.

  47. Klein Z.A., Takahashi H., Ma M. et al. Loss of TMEM106B ameliorates lysosomal and frontotemporal dementia-related phenotypes in progranulin-deficient mice. Neuron. 2017; 95(2): 281–96.e6. doi: 10.1016/j.neuron.2017.06.026.

  48. Zhou X., Sun L., Brady O.A. et al. Elevated TMEM106B levels exaggerate lipofuscin accumulation and lysosomal dysfunction in aged mice with progranulin deficiency. Acta Neuropathol Commun. 2017; 5(1): 9. doi: 10.1186/s40478-017-0412-1.

  49. Robinson J.L., Lee E.B., Xie S.X. et al. Neurodegenerative disease concomitant proteinopathies are prevalent, age-related and APOE4-associated. Brain. 2018; 141(7): 2181–93. doi: 10.1093/brain/awy146.

  50. Wennberg A.M., Tosakulwong N., Lesnick T.G. et al. Association of apolipoprotein E epsilon4 with transactive response DNA-binding protein 43. JAMA Neurol. 2018; 75(11): 1347–54. doi: 10.1001/jamaneurol.2018.3139.

  51. Trieu T., Sajjadi S.A., Kawas C.H. et al. Risk factors of hippocampal sclerosis in the oldest old: the 90+ study. Neurology. 2018; 91(19): e1788–98. doi: 10.1212/WNL.0000000000006455.

  52. Ittermann T., Wittfeld K., Nauck M. et al. High thyrotropin is associated with reduced hippocampal volume in a population-based study from Germany. Thyroid. 2018; 28(11): 1434–42. doi: 10.1089/thy.2017.0561.

  53. Ou S.H., Wu F., Harrich D. et al. Cloning and characterization of a novel cellular protein, TDP-43, that binds to human immunodeficiency virus type 1 TAR DNA sequence motifs. J Virol. 1995; 69(6): 3584–96. doi: 10.1128/JVI.69.6.3584-3596.1995.

  54. Woo J.A., Liu T., Trotter C. et al. Loss of function CHCHD10 mutations in cytoplasmic TDP-43 accumulation and synaptic integrity. Nat Commun. 2017; 8: 15558. doi: 10.1038/ncomms15558.

  55. Jo M., Lee S., Jeon Y.M. et al. The role of TDP-43 propagation in neurodegenerative diseases: integrating insights from clinical and experimental studies. Exp Mol Med. 2020; 52(10): 1652–62. doi: 10.1038/s12276-020-00513-7.

  56. Diaper D.C., Adachi Y., Sutcliffe B. et al. Loss and gain of Drosophila TDP-43 impair synaptic efficacy and motor control leading to age-related neurodegeneration by loss-of-function phenotypes. Hum Mol. 2013; 22(8): 1539–57. doi: 10.1093/hmg/ddt005.

  57. Nag S., Yu L., Boyle P.A. et al. TDP-43 pathology in anterior temporal pole cortex in aging and Alzheimer’s disease. Acta Neuropathol Commun. 2018; 6(1): 33. doi: 10.1186/s40478-018-0531-3.

  58. Josephs K.A., Whitwell J.L., Knopman D.S. et al. Abnormal TDP-43 immunoreactivity in AD modifies clinicopathologic and radiologic phenotype. Neurology. 2008; 70(19 Pt 2): 1850–57. doi: 10.1212/01.wnl.0000304041.09418.b1.

  59. Geser F., Robinson J.L., Malunda J.A. et al. Pathological 43-kDa transactivation response DNA-binding protein in older adults with and without severe mental illness. Arch Neurol. 2010; 67(10): 1238–50. doi: 10.1001/archneurol.2010.254.

  60. Josephs K.A., Dickson D.W. TDP-43 in the olfactory bulb in Alzheimer’s disease. Neuropathol Appl Neurobiol. 2016; 42(4): 390–93. doi: 10.1111/nan.12309.

  61. Nelson P.T., Abner E.L., Patel E. et al. The amygdala as a locus of pathologic misfolding in neurodegenerative diseases. J Neuropathol Exp Neurol. 2018; 77(1): 2–20. doi: 10.1093/jnen/nlx099.

  62. Power M.C., Mormino E., Soldan A. et al. Combined neuropathological pathways account for age-related risk of dementia. Ann Neurol. 2018; 84(1): 10–22. doi: 10.1002/ana.25246.

  63. Nag S., Yu L., Capuano A.W. et al. Hippocampal sclerosis and TDP-43 pathology in aging and Alzheimer disease. Ann Neurol. 2015; 77(6): 942–52. doi: 10.1002/ana.24388.

  64. Nag S., Yu L., Wilson R.S. et al. TDP-43 pathology and memory impairment in elders without pathologic diagnoses of AD or FTLD. Neurology. 2017; 88(7): 653–60. doi: 10.1212/WNL.0000000000003610.

  65. Wilson R.S., Yang J., Yu L. et al. Postmortem neurodegenerative markers and trajectories of decline in cognitive systems. Neurology. 2019; 92(8): e831–e840. doi: 10.1212/WNL.0000000000006949.

  66. Josephs K.A., Murray M.E., Whitwell J.L. et al. Staging TDP-43 pathology in Alzheimer’s disease. Acta Neuropathol. 2014; 127(3): 441–50. doi: 10.1007/s00401-013-1211-9.

  67. Josephs K.A., Whitwell J.L., Tosakulwong N. et al. TAR DNA-binding protein 43 and pathological subtype of Alzheimer’s disease impact clinical features. Ann Neurol. 2015; 78(5): 697–709. doi: 10.1002/ana.24493.

  68. Josephs K.A., Whitwell J.L., Weigand S.D. et al. TDP-43 is a key player in the clinical features associated with Alzheimer’s disease. Acta Neuropathol. 2014; 127(6): 811–24. doi: 10.1007/s00401-014-1269-z.

  69. Herman A.M., Khandelwal P.J., Stanczyk B.B. et al. β-amyloid triggers ALS-associated TDP-43 pathology in AD models. Brain Res. 2011; 1386: 191–99. doi: 10.1016/j.brainres.2011.02.052.

  70. Nelson P.T., Head E., Schmitt F.A. et al. Alzheimer’s disease is not «brain aging»: Neuropathological, genetic, and epidemiological human studies. Acta Neuropathol. 2011; 121(5): 571–87. doi: 10.1007/s00401-011-0826-y.

  71. Brenowitz W.D., Monsell S.E., Schmitt F.A. et al. Hippocampal sclerosis of aging is a key Alzheimer’s disease mimic: clinical-pathologic correlations and comparisons with both alzheimer’s disease and non-tauopathic frontotemporal lobar degeneration. J Alzheimers Dis. 2014; 39(3): 691–702. doi: 10.3233/JAD-131880.

  72. Hasegawa M., Arai T., Nonaka T. et al. Phosphorylated TDP-43 in frontotemporal lobar degeneration and amyotrophic lateral sclerosis. Ann Neurol. 2008; 64(1): 60–70. doi: 10.1002/ana.21425.

  73. Cairns N.J., Neumann M., Bigio E.H. et al. TDP-43 in familial and sporadic frontotemporal lobar degeneration with ubiquitin inclusions. Am J Pathol. 2007; 171(1): 227–40. doi: 10.2353/ajpath.2007.070182.

  74. Weihl C.C., Temiz P., Miller S.E. et al. TDP-43 accumulation in inclusion body myopathy muscle suggests a common pathogenic mechanism with frontotemporal dementia. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 2008; 79(10): 1186–89. doi: 10.1136/jnnp.2007.131334.

  75. Robinson J.L., Porta S., Garrett F.G. et al. Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy differs from frontotemporal lobar degeneration. Brain. 2020; 143(9): 2844–57. doi: 10.1093/brain/awaa219.

  76. Ighodaro E.T., Jicha G.A., Schmitt F.A. et al. Hippocampal sclerosis of aging can be segmental: two cases and review of the literature. J Neuropathol Exp Neurol. 2015; 74(7): 642–52. doi: 10.1097/NEN.0000000000000204.

  77. Agrawal S., Yu L., Kapasi A. et al. Limbic-predominant age-related TDP-43 encephalopathy neuropathologic change and microvascular pathologies in community-dwelling older persons. Brain Pathol. 2021; 31(3): e12939. doi: 10.1111/bpa.12939.

  78. Katsumata Y., Fardo D.W., Kukull W.A. et al. Dichotomous scoring of TDP-43 proteinopathy from specific brain regions in 27 academic research centers: associations with Alzheimer’s disease and cerebrovascular disease pathologies. Acta Neuropathol Commun. 2018; 6(1): 142. doi: 10.1186/s40478-018-0641-y.

  79. Thammisetty S.S., Pedragosa J., Weng Y.C. et al. Age-related deregulation of TDP-43 after stroke enhances NF-kappaB-mediated inflammation and neuronal damage. J Neuroinflammation. 2018; 15(1): 312. doi: 10.1186/s12974-018-1350-y.

  80. Budini M., Baralle F.E., Buratti E. Targeting TDP-43 in neurodegenerative diseases. Expert Opin Ther Targets. 2014; 18(6): 617–32. doi: 10.1517/14728222.2014.896905.

  81. Клинические рекомендации. Когнитивные расстройства у людей пожилого и старческого возраста. Общественная организация «Российское общество психиатров», Общероссийская общественная организация «Российская ассоциация геронтологов и гериатров». 2020. Рубрикатор клинических рекомендаций Минздрава России. Доступ: https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/617_1 (дата обращения – 01.10.2021). [Clinical guidelines. Cognitive disorders in elderly and senile people. Russian Society of Psychiatrists, Russian Association of Gerontologists and Geriatricians. 2020. Rubricator of clinical guidelines of the Ministry of Healthcare of Russia. Available at: https://cr.minzdrav.gov.ru/schema/617_1 (date of access – 01.10.2021) (In Russ.)].

  82. Cheng Q., Fang L., Feng D. et al. Memantine ameliorates pulmonary inflammation in a mice model of COPD induced by cigarette smoke combined with LPS. Biomed Pharmacother. 2019; 109: 2005–13. doi: 10.1016/j.biopha.2018.11.002.

  83. Caumont A.S., Octave J.N., Hermans E. Amantadine and memantine induce the expression of the glial cell line-derived neurotrophic factor in C6 glioma cells. Neurosci Lett. 2006; 394(3): 196–201. doi: 10.1016/j.neulet.2005.10.027.

  84. Reisberg B., Doody R., Stoffler A. et al.; Memantine Study Group. Memantine in moderate-to-severe Alzheimer’s disease. N Engl J Med. 2003; 348(14): 1333–41. doi: 10.1056/NEJMoa013128.

  85. Liang J., Li J., Jia R. et al. Identification of the optimal cognitive drugs among Alzheimer’s disease: a Bayesian meta-analytic review. Clin Interv Aging. 2018; 13: 2061–73. doi: 10.2147/CIA.S184968.

  86. Van Dyck C.H., Schmitt F.A., Olin J.T. Memantine MEM-MD-02 Study Group. A responder analysis of memantine treatment in patients with Alzheimer disease maintained on donepezil. Am J Geriatr Psychiatry. 2006; 14(5): 428–37. doi: 10.1097/01.JGP.0000203151.17311.38.

  87. Grossberg G.T., Pejović V., Miller M.L. et al. Memantine therapy of behavioral symptoms in community-dwelling patients with moderate to severe Alzheimer’s disease. Dement Geriatr Cogn Disord. 2009; 27(2): 164–72. doi: 10.1159/000200013.

  88. Ferris S., Ihl R., Robert P. et al. Treatment effects of Memantine on language in moderate to severe Alzheimer’s disease patients. Alzheimers Dement. 2009; 5(5): 369–74. doi: 10.1016/j.jalz.2009.05.604.

  89. Jin B.R., Liu H.Y. Comparative efficacy and safety of cognitive enhancers for treating vascular cognitive impairment: systematic review and Bayesian network meta-analysis. Neural Regen Res. 2019; 14(5): 805–16. doi: 10.4103/1673-5374.249228.

  90. Gauthier S., Loft H., Cummings J. Improvement in behavioural symptoms in patients with moderate to severe Alzheimer’s disease by memantine: a pooled data analysis. Int J Geriatr Psychiatry. 2008; 23(5): 537–45. doi: 10.1002/gps.1949.

  91. Shi X., Lin X., Hu R. et al. Toxicological differences between NMDA receptor antagonists and cholinesterase inhibitors. Am J Alzheimers Dis Other Demen. 2016; 31(5): 405–12. doi: 10.1177/1533317515622283.

  92. Bond M., Rogers G., Peters J. et al. The effectiveness and cost-effectiveness of donepezil, galantamine, rivastigmine and memantine for the treatment of Alzheimer’s disease (review of Technology Appraisal No. 111): A systematic review and economic model. Health Technol Assess. 2012; 16(21): 1–470. doi: 10.3310/hta16210.

  93. Jones R.W., Bayer A., Inglis F. et al. Safety and tolerability of once-daily versus twice-daily memantine: a randomised, double-blind study in moderate to severe Alzheimer’s disease. Int J Geriatr Psychiatry. 2007; 22(3): 258–62. doi: 10.1002/gps.1752.


About the Autors


Elena A. Katunina, MD, professor, professor of the Department of neurology, neurosurgery and medical genetics of the Faculty of medicine, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, head of the Department of neurodegenerative diseases, Federal Center for Brain and Neurotechnologies of FMBA of Russia. Адрес: 119415, Moscow, 1/10 Ostrovityaninova Str. E-mail: elkatunina@mail.ru


Similar Articles


Бионика Медиа