Association of some polymorphisms with QT interval duration in men


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/therapy.2021.9.38-44

Nesterets A.M., Kuznetsov A.A., Ivanova A.A., Gurazheva A.A., Maliutina S.K., Denisova D.V., Maksimov V.N.

Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Novosibirsk
Abstract. The study of predictors of life-threatening cardiac arrhythmias and sudden cardiac death development is still of considerable interest.
The aim of the research was to study the association of some molecular genetic markers with QT interval duration in male patients.
Material and methods. The study included 25–69 years old male patients (samples formed from 2003 to 2017 within the framework of the international HAPIEE project and screening of young people 25–44 years old). They were divided into groups with the shortest, average and longest QT interval. The following single nucleotide polymorphisms (SNPs) were selected for genotyping: rs1805124, rs11720524, rs11756438, rs12576239.
Results. There were revealed no statistically significant differences between the groups in the frequencies of the SNP genotypes rs1805124, rs12576239. In carriers of the CC and GG genotypes rs11720524 in the model CG vs. CC+GG, higher QT values were recorded comparatively to carriers of the CG genotype (p=0,025). The AA genotype SNP rs11756438 of the CEP85L gene in the group of men with an average QT interval was found in 31,6% of men and in 21,5% of patients with a short QT interval (OR=0,59; 95% CI: 0,366–0,956; p=0,031).
Conclusion. Rs11720524 of the SCN5A gene and rs11756438 of the CEP85L gene are associated with QT interval duration. The association of SNP rs1805124 of the SCN5A gene, rs12576239 of the KCNQ1 gene has not been confirmed.

ВВЕДЕНИЕ

Изучение предикторов развития жизнеугрожающих нарушений ритма сердца и внезапной сердечной смерти (ВСС) до настоящего времени представляет значительный интерес. Как известно, к наиболее частым нарушениям ритма сердца, приводящим к ВСС, относят желудочковую тахикардию и фибрилляцию желудочков, субстратом которых служит электрическая нестабильность миокарда [1]. Несмотря на то что достигнуты значительные успехи в верификации предикторов риска ВСС, особое внимание уделяют изменениям длительности интервала QT, отражающим процессы деполяризации и реполяризации желудочков.

Синдром удлиненного интервала QT (LQTS) остается наиболее распространенной наследственной каналопатией и составляет до 20–25% всех случаев ВСС [2]. LQTS представляет собой гетерогенное семейство сердечных электрофизиологических нарушений, характеризующихся удлинением интервала QT и отклонениями зубца T на электрокардиограмме [3]. В основу диагностических критериев данного синдрома входят оценка риска по шкале Шварца, обнаружение патогенной мутации в одном из генов, длительность корригированного интервал QT, а также отсутствие кардиальных причин пролонгации интервала [4]. Выделяют 17 подтипов LQTS, связанных с моногенными мутациями 15 аутосомно-доминантных генов, а именно генов KCNQ1, KCNH2, SCN5A, ANKB, KCNE1, KCNE2, KCNJ2, CACN1C, CAV3, SCN4B, AKAP9, SNTA1, KCNJ5, CALM1, CALM2 [5]. Мутации и полиморфизмы вышеперечисленных генов приводят к изменению важных патогенетических механизмов, влияя на работу ионных каналов кардиомиоцитов и длительность интервала QT, способствуя развитию желудочковых нарушений ритма сердца.

Синдром укороченного интервала QT (SQTS) также может приводить к развитию злокачественных желудочковых и предсердных аритмий. Однако обнаружить причинную мутацию в данном случае удается значительно реже. Основными генами, мутации в которых могут привести к развитию SQTS, являются KCNH2, KCNQ1, KCNJ2, CACNA1C, CACNB2B и CACNA2D [6].

Помимо генетических аспектов, доказано влияние иных факторов, предрасполагающих к увеличению дисперсии интервала QT и росту частоты случаев ВСС: это возраст старше 45 лет, курение, избыточная масса тела, ишемическая болезнь сердца, артериальная гипертензия, дислипидемия, гипергликемия и др. [7–9].

Цель настоящего исследования – изучить ассоциацию некоторых молекулярно-генетических маркеров с длительностью интервала QT у мужчин в Сибирском регионе и сравнить полученные результаты с данными в других этнических группах.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Базой для набора изучаемых групп служили популяционные репрезентативные выборки, сформированные в период с 2003 по 2017 г. в НИИ терапии и профилактической медицины – филиале Федерального исследовательского центра Институт цитологии и генетики Сибирского отделения РАН (г. Новосибирск) в рамках международного проекта HAPIEE (Health, Alcohol and Psychosocial factors In Eastern Europe) и скрининга молодых людей (возраст 25–44 лет).

В исследование вошли мужчины в возрасте 25–69 лет, проживающие в Новосибирске (n=1353). Из нескольких возрастных когорт (25– 29, 30–34, 35–39, 40–44 лет и т.д.) были сформированы следующие группы: с самым коротким (n=185), средним (n=178) и самым длинным интервалом QT (n=179). Распространенность сердечно-сосудистых заболеваний в представленных группах статистически значимо не различается.

В программу обследования исходных выборок были также включены социально-демографические и клинико-анамнестические данные:

  • наличие вредных привычек (курение);
  • результаты объективного осмотра (рост, вес, индекс массы тела, окружность талии, окружность бедер, систолическое, диастолическое, пульсовое артериальное давление, частота сердечных сокращений);
  • биохимические показатели (общий холестерин, липопротеиды низкой и высокой плотности, триглицериды, глюкоза сыворотки крови);
  • электрокардиографические данные – интервал QT корригированный (QTc), рассчитанный по формуле Базетта: QTc = QT/√RR.

Выделение ДНК из 10 мл венозной крови выполнялось методом фенол-хлороформной экстракции.

Выбор возможных молекулярно-генетических маркеров осуществлялся на основании имеющихся литературных данных об их взаимосвязи с длительностью интервала QT. Были выбраны следующие однонуклеотидные полиморфизмы (ОНП): rs1805124, rs11720524 гена SCN5A, rs11756438 гена CEP85L(PLN), rs12576239 гена KCNQ1. Генотипирование изучаемых полиморфизмов проводилось с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) с последующим анализом длин рестрикционных фрагментов.

Для генотипирования rs1805124 гена SCN5A использовали праймеры 5’-CCAGG­GCA­CCAGCAGTGATGCG-3’(F) и 5’-AAGCCACGTTCCAAGCCGCGG-3’(R).

Амплификацию проводили в следующем температурном режиме: 33 цикла, включающих денатурацию 95 ˚С 30 с, отжиг праймеров 67 ˚С 30 с и элонгацию 72 ˚С 30 с. Рестрикцию выполняли с 10 ед. активности рестриктазы BstHH I («СибЭнзим», Новосибирск) при 50 ˚С в течение 16 ч. Размер продукта амплификации 135 п.н. Детекцию продуктов амплификации и рестрикции осуществляли методом электрофореза в 4% полиакриламидном геле с последующим окрашиванием бромистым этидием.

После проведения рестрикции при генотипе AA детектировался продукт 135 п.н., при генотипе GG – продукты 116 и 19 п.н., при гетерозиготном генотипе – все перечисленные продукты (135, 116, 19 п.н.).

Для генотипирования rs11756438 гена CEP85L(PLN) использовали праймеры 5’-GTG­CTA­GCTGTTATGGACG-3’(F) и 5’-AAGTC­TCACCATGTTGCCC-3’(R).

Амплификацию проводили в следующем температурном режиме: 33 цикла, включающих денатурацию 95 ˚С 30 с, отжиг праймеров 60 ˚С 30 с и элонгацию 72 ˚С 30 с. Рестрикцию проводили с 10 ед. активности рестриктазы Hinf I («СибЭнзим», Новосибирск) при 37 ˚С в течение 16 ч. Детекцию продуктов амплификации и рестрикции осуществляли методом электрофореза в 4% полиакриламидном геле с последующим окрашиванием бромистым этидием. Размер продукта амплификации 177 п.н.

После проведения рестрикции при генотипе AA детектировался продукт 177 п.н., при генотипе CC – продукты 128 и 49 п.н., при гетерозиготном генотипе – все перечисленные продукты.

Для генотипирования rs12576239 гена KCNQ1 использовали праймеры 5’-TTG­GA­TTTCACTCATAGCCT-3’(F) и 5’-CGTTCT­CTGATTAACATTTCTGAAC-3’(R).

Амплификацию проводили в следующем температурном режиме: 35 циклов, включающих денатурацию 95 ˚С 30 с, отжиг праймеров 54 ˚С 30 с и элонгацию 72 ˚С 30 с. Рестрикцию проводили с 10 ед. активности рестриктазы Taq I («СибЭнзим», Новосибирск) при 37 ˚С в течение 16 ч. Детекцию продуктов амплификации и рестрикции производили методом электрофореза в 4% полиакриламидном геле с последующим окрашиванием бромистым этидием. Размер продукта амплификации – 177 п.н.

После проведения рестрикции при генотипе TT детектировался продукт 189 п.н., при генотипе CC – продукты 179 и 20 п.н., при гетерозиготном генотипе – все перечисленные продукты.

Генотипирование полиморфизмов rs11720524 гена SСN5A выполнялось с помощью ПЦР в режиме реального времени в соответствии с протоколом фирмы-производителя (зонды TaqMan, Applied Biosystems, США) на приборе StepOnePlus (Applied Biosystems, США).

Статистическую обработку полученных результатов делали с использованием пакета программ SPSS (версия 23.0), а именно с применением таблиц сопряженности для определения частот генотипов и аллелей в исследуемых группах, критерия χ2 для оценки соответствия частот равновесию Харди–Вайнберга, критерия χ2 Пирсона, точного двустороннего критерия Фишера с поправкой Йетса на непрерывность для таблицы 2×2/четырехпольной таблицы. В качестве уровня значимости использовали p <0,05.

Относительный риск по каждому генотипу был рассмотрен как отношение шансов (ОШ). Подчинение распределения признаков нормальному закону проверялось посредством критериев Колмогорова–Смирнова и Шапиро–Уилка. Если признак соответствовал критериям нормального закона распределения, то в дальнейшем применялся однофакторный дисперсионный анализ (one-way ANOVA). При отсутствии нормального распределения использовался тест Крускала–Уоллиса.

Исследование было выполнено с разрешения Локального этического комитета НИИ терапии и профилактической медицины – филиала Федерального исследовательского центра Институт цитологии и генетики Сибирского отделения РАН.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Частоты генотипов rs1805124, rs11720524 гена SCN5A, rs11756438 гена CEP85L(PLN), rs12576239 гена KCNQ1 находятся в равновесии Харди–Вайнберга (табл. 1).

Ассоциации однонуклеотидных полиморфизмов rs1805124 гена SCN5A, rs12576239 гена KCNQ1 с длительностью интервала QT нами не обнаружено, в том числе при разделении групп по возрасту (p >0,05).

41-1.jpg (92 KB)

По частотам генотипов rs11720524 гена SCN5A выявлены статистически значимые различия при использовании модели СG vs. CC+GG (табл. 2).

Для носителей генотипов CC и GG характерны большие значения интервала QT по сравнению с носителями гетерозиготных генотипов CG (p=0,025). При разделении групп по возрасту (до 50 лет, 50 лет и старше) выявленные различия сохраняются у мужчин в возрасте до 50 лет (ОШ=1,86; 95% ДИ: 1,12–3,09; р=0,016). Частота гетерозиготного генотипа СG в группе короткого интервала QT составила 55,9%, в то время как в группах со средним и длинным интервалом QT – 40,6%.

Не обнаружено статистически значимых различий между группами по частотам генотипов и полиморфизмов rs11756438 гена CEP85L. Однако установлено, что гомозиготный генотип AA полиморфизма rs11756438 гена CEP85L в модели AA vs. CA+CC в группе мужчин со средним интервалом QT встречался достоверно чаще относительно группы с коротким интервалом QT – 31,6 против 21,5% соответственно (ОШ=0,59; 95%ДИ: 0,366–0,956; р=0,031; табл. 3). Это свидетельствует о протективном эффекте данного генотипа в отношении укорочения интервала QT.

42-1.jpg (25 KB)

Согласно U-критерию Крускала–Уоллиса среди прочих факторов следует отметить влияние на принадлежность к той или иной группе QT частоты сердечных сокращений (ЧСС), систолического, диастолического и пульсового АД, индекса массы тела, соотношения «окружность талии/окружность бедер», триглицеридов (p <0,05). В дополнение к этому в рамках общей линейной модели c включением в модель возраста среди статистически значимых факторов, влияющих на длительность интервала QT, оказались ЧСС, вес и рост (p <0,05).

С помощью таблиц сопряженности не удалось подтвердить влияние курения на принадлежность обследуемых к той или иной группе QT. Вместе с тем в модели «не курит vs курит» и «QT длинный vs QT короткий + средний» в группе длинного QT было достоверно меньше некурящих мужчин в возрасте до 50 лет, чем в группах короткого и среднего QT – 43,4 и 56,8% соответственно (ОШ=0,582; 95% ДИ: 0,354–0,957; p=0,033). Влияние уровней общего холестерина, липопротеидов высокой и низкой плотности на группу QT обнаружить не удалось.

ОБСУЖДЕНИЕ

Ген SCN5A, расположенный в позиции 3p21-24, кодирует порообразующую α-субъединицу натриевого канала Na v 1,5 и играет важную роль в инициировании деполяризующих токов натрия, влияя на длительность потенциала действия кардиомиоцитов, возбудимость миокарда. На электрокардио­грамме это проявляется изменениями дисперсии интервала QT. Известно, что мутации с усилением функции ведут к увеличению входящего тока натрия в кардиомиоциты, удлинению интервала QT, являясь этиопатогенетическим звеном LQT3. Мутации с потерей функции SCN5A характеризуются обратными изменениями, развитием синдрома Бругада. Кроме того, известны мутации, которые могут приводить к развитию дилатационной кардиомиопатии, вызывать изолированные дефекты проводимости сердца [10].

В ряде публикаций, в том числе в работах Gouas L. et al. (2007), Qureshi S.F. et al. (2015) и др., ОНП rs1805124 гена SCN5A (c.1673 A> G) упоминался в качестве полиморфизма, в котором генотип AA и частота аллеля A встречались чаще у пациентов с удлиненным интервалом QT; это предполагает его этиологическую роль в LQTS [11, 12]. Дополнительно генотип AG полиморфизма rs1805124 относят к генетическим предикторам идиопатических нарушений атриовентрикулярной и внутрижелудочковой проводимости [13]. В нашем исследовании при сравнении групп с разной длительностью интервала QT не выявлено статистически значимых различий по частотам генотипов полиморфизма rs1805124 гена SCN5A.

ОНП rs11720524 (с.-52-562 C> G) гена SCN5A в датском исследовании GEVAMI был связан с ВСС, ассоциирован с фибрилляцией желудочков (ФЖ), вызванной острым инфарктом миокарда с подъемом интервала QT. Аллель C rs11720524 присутствовал в 64% случаев, а гомозиготный генотип CC был достоверно связан с ФЖ (ОШ 1,87; 95% ДИ: 1,12–3,12; р=0,017). После учета клинических различий между основной и контрольной группами (таких как возраст, пол, семейный анамнез ВСС, потребление алкоголя, предшествующая фибрилляция предсердий, прием статинов, стенокардия, критическая артерия и тромболизис при инфаркте миокарда) генотип СС rs11720524 все еще был значимо связан с ФЖ (ОШ 1,9; 95% ДИ: 1,05–3,43; р=0,032). Учитывая функциональные значения гена SCN5A, развитие жизнеугрожающих нарушений ритма и аритмогенной ВСС связывали с изменением длительности интервала QT. Однако в исследовании Jabbari R. et al. (2017) данную ассоциацию подтвердить не удалось [14]. В полученных нами результатах у носителей генотипов CC и GG регистрировались большие значения QT по сравнению с носителями гетерозиготного генотипа СG, что подтверждает ассоциацию ОНП с длиной интервала QT.

В рамках консорциума QTGEN минорный аллель ОНП rs11756438 (С>A), расположенный на хромосоме 6q22.31 в интронной области вблизи генов SCL35F1 и CEP85L(PLN), был ассоциирован с более длинным интервалом QT на 0,09 SD. Ген PLN кодирует фосфоламбан, ингибитор Са2+-АТФазы сердечного саркоплазматического ретикулума, играя роль в передаче сигналов кальция в кардиомиоцитах [15]. Согласно нашим результатам, генотип AA встречался в группе мужчин со средним интервалом QT чаще, чем в группе с коротким интервалом, что частично подтверждает уже известные данные.

Ген KCNQ1, расположенный в локусе 11p15.5, кодирует α-субъединицу калиевого канала K V 7.1; ее функциональная активность проявляется совместно с β-субъединицами KCNE1, генерируя калиевый ток задержанного выпрямления. Потеря подобной функции приводит к удлинению интервала QT и развитию аритмий. Анализ генетических модификаторов тяжести заболевания у пациентов с LQTS в работе Kolder I.C.R.M. et al. (2015) установил взаимосвязь ОНП rs12576239 (С>T) гена KCNQ1 с LQTS, где аллелем риска выступал аллель Т [16]. Подтвердить эту ассоциацию нам не удалось, как и исследователям Peter A. et al. (2011), которые в своей работе выявили ассоциацию rs12576239 только с ВСС [17].

Межэтническое исследование Avery C.L. et al., которое было проведено в 2016 г. на афро- и латиноамериканской популяции с целью идентификации ранее известных и новых ОНП, связанных с удлинением интервала QT, включало некоторые вышеперечисленные ОНП – rs12576239 гена KCNQ1, rs1805124 гена SCN5A, а также rs11756438 гена CEP85L. По результатам этого исследования ассоциация ОНП rs12576239 гена KCNQ1 и rs11756438 гена CEP85L с удлинением интервала QT подтверждена не была. В свою очередь, rs1805124 гена SCN5A показал себя как новый вероятный популяционно-специфический сигнал, влияющий на длительность интервала QT, что частично согласуется с полученными нами результатами [18].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

С длительностью интервала QT ассоциированы ОНП rs11720524 гена SCN5A и rs11756438 гена CEP85L. Не подтверждена ассоциация с длительностью интервала QT полиморфизма rs1805124 гена SCN5A, rs12576239 гена KCNQ1.

Авторы выражают глубокую признательность статистикам Л.В. Щербаковой и Е.Г. Веревкину за подготовку баз данных.


Literature



  1. Lerma C., Glass L. Predicting the risk of sudden cardiac death. J Physiol. 2016; 594(9): 2445–58. doi: 10.1113/JP270535.

  2. Steinberg C. Diagnosis and clinical management of long-QT syndrome. Review Curr Opin Cardiol. 2018; 33(1): 31–41. doi: 10.1097/HCO.0000000000000465.

  3. Shah S.R., Park K., Alweis R. Long QT syndrome: A comprehensive review of the literature and current evidence. Curr Probl Cardiol. 2019; 44(3): 92–106. doi: 10.1016/j.cpcardiol.2018.04.002.

  4. Priori S.G., Blomstrom-Lundqvist C., Mazzanti A. et al. ESC Scientific Document Group. 2015 ESC Guidelines for the management of patients with ventricular arrhythmias and the prevention of sudden cardiac death. Eur Heart J. 2015; 36(41): 2793–867. doi: 10.1093/eurheartj/ehv316.

  5. Wallace E., Howard L., Liu M. et al. Long QT syndrome: Genetics and future perspective. Pediatr. Cardiol. 2019; 40(7): 1419–30. doi: 10.1007/s00246-019-02151-x.

  6. Campuzano O., Fernandez-Falgueras A., Lemus X. et al. Short QT syndrome: A comprehensive genetic interpretation and clinical translation of rare variants. J Clin Med. 2019; 8(7): 1035. doi: 10.3390/jcm8071035.

  7. Adabag A.S., Luepker R.V., Roger V.L., Gersh B.J. Sudden cardiac death: epidemiology and risk factors. Nat Rev Cardiol. 2010; 7(4): 216–25. doi: 10.1038/nrcardio.2010.3.

  8. Kuriachan V.P., Sumner G.L., Mitchell L.B. Sudden cardiac death. Curr Probl Cardiol. 2015; 40(4): 133–200. doi: 10.1016/j.cpcardiol.2015.01.002.

  9. Akbarzadeh M.A., Yazdani S., Ghaidari M.E. et al. Acute effects of smoking on QT dispersion in healthy males. ARYA Atheroscler. 2014; 10(2): 89–93.

  10. Wilde A.A.M., Amin A.S. Clinical spectrum of SCN5A mutations: Long QT syndrome, Brugada syndrome, and cardiomyopathy. JACC Clin Electrophysiol. 2018; 4(5): 569–79. doi: 10.1016/j.jacep.2018.03.006.

  11. Gouas L., Nicaud V., Chaouch S. et al. Confirmation of associations between ion channel gene SNPs and QTc interval duration in healthy subjects. Eur J Hum Genet. 2007; 15(9): 974–79. doi: 10.1038/sj.ejhg.5201866.

  12. Qureshi S.F., Ali A., John P. et al. Mutational analysis of SCN5A gene in long QT syndrome. Meta Gene. 2015; 6: 26–35. doi: 10.1016/j.mgene.2015.07.010.

  13. Nikulina S.Y., Chernova A.A., Shulman V.A. et al. An investigation of the association of the H558R polymorphism of the SCN5A gene with idiopathic cardiac conduction disorders. Genet Test Mol Biomarkers. 2015; 19(6): 288–94. doi: 10.1089/gtmb.2015.0012.

  14. Jabbari R., Glinge C., Jabbari J. et al. A common variant in SCN5A and the risk of ventricular fibrillation caused by first ST-segment elevation myocardial infarction. PLoS One. 2017; 12(1): e0170193. doi: 10.1371/journal.pone.0170193.

  15. Newton-Cheh C., Eijgelsheim M., Rice K.M. et al. Common variants at ten loci influence QT interval duration in the QTGEN Study. Nat Genet. 2009; 41(4): 399–406. doi: 10.1038/ng.364.

  16. Kolder I.C.R.M., Tanck M.W.T., Postema P.G. et al. Analysis for genetic modifiers of disease severity in patients with long-QT syndrome type 2. Circ Cardiovasc Genet. 2015; 8(3): 447–56. doi: 10.1161/CIRCGENETICS.114.000785.

  17. Noseworthy P.A., Havulinna A.S., Porthan K. et al. Common genetic variants, QT interval and sudden cardiac death in a Finnish population-based study. Circ Cardiovasc Genet. 2011; 4(3): 305–11. doi: 10.1161/CIRCGENETICS.110.959049.

  18. Avery C.L., Wassel C.L., Richard M.A. et al. Fine mapping of QT interval regions in global populations refines previously identified QT interval loci and identifies signals unique to African and Hispanic descent populations. Heart Rhythm. 2017; 14(4): 572–80. doi: 10.1016/j.hrthm.2016.12.021.


About the Autors


Alina M. Nesterets, postgraduate student of Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (953) 869-34-34. E-mail: alinvaleeva1994@gmail.com. ORCID: 0000-0002-1432-0473
Alexander A. Kuznetsov, MD, leading researcher of the Laboratory for molecular genetic research of therapeutic diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-10-78. E-mail: kuznetsoviimed@gmail.com. ORCID: 0000-0003-3502-7599
Anastasia A. Ivanova, PhD, senior researcher of the Laboratory for molecular genetic research of therapeutic diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-10-64. E-mail: ivanova_a_a@mail.ru. ORCID: 0000-0002-9460-6294
Anna A. Gurazheva, junior researcher of the Laboratory for molecular genetic research of therapeutic diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-10-64. E-mail: AnnaPalna1@mail.ru. ORCID: 0000-0003-1547-624X
Sofia K. Malyutina, MD, professor, head of the Laboratory of etiopathogenesis and clinic of internal diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 363-49-63. E-mail: smalyutina@hotmail.com. ORCID: 0000-0001-6539-0466
Diana V. Denisova, MD, chief researcher of the Laboratory of preventive medicine, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-10-74. E-mail: denisovadiana@gmail.com. ORCID: 0000-0002-2470-2133
Vladimir N. Maksimov, MD, professor, head of the laboratory of molecular genetic studies of therapeutic diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a Branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-10-74. E-mail: Medik11@mail.ru. ORCID: 0000-0002-7165-4496


Similar Articles


Бионика Медиа