ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Генетические особенности факторов воспаления и фиброза – возможный общий путь формирования предрасположенности к мерцательной аритмии и хронической обструктивной болезни легких

Волчкова Е.А., Затейщиков Д.А.

1ФГБУ ДПО Центральная государственная медицинская академия УД Президента РФ, Москва; 2ГБУЗ ГКБ №51 Департамента здравоохранения г. Москвы; 3ФГБУ Федеральный научно-клинический центр специализированных видов клинической помощи и медицинских технологий ФМБА России, Москва
Мерцательная аритмия (МА) и хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) имеют общие патогенетические звенья. Очевидно, что и наследственная предрасположенность в таком случае увеличивает риск обоих заболеваний. В связи с этим учет генетических факторов риска позволит в перспективе выявить группу наиболее высокого риска среди больных ХОБЛ и может явиться основой для разработки новых путей лечения этих заболеваний. В обзоре проанализированы данные, указывающие на возможную общую наследственную предрасположенность к развитию МА и ХОБЛ.

Ключевые слова

мерцательная аритмия
хроническая обструктивная болезнь легких
генетическая предрасположенность
воспаление
фиброз

Мерцательная аритмия (МА) — самое частое нарушение ритма сердца, требующее лечения. Ее появление может приводить к ускоренному развитию сердечной недостаточности и существенно увеличивает риск развития ишемического инсульта. В последнее время МА все чаще считают самостоятельным заболеванием. При этом ее генетическая природа ­у ряда больных не вызывает сомнения, в этом случае ее называют «первичной» МА [1, 2]. Описано значительное число генетических вариантов, лежащих в ее основе [3]. При этом бóльшая часть дефектов обнаруживается в генах, участвующих в электрофизиологических процессах.

Однако в большинстве случаев МА ассоциируется с различными сердечно-сосудистыми и некардиальными заболеваниями, такими как артериальная гипертензия, поражение клапанов сердца, кардиомиопатии, ишемическая болезнь сердца, нарушение функции щитовидной железы, сахарный диабет, ожирение, хроническая болезнь почек, апноэ во время сна и т.д. [4]. Хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) — заболевание, частота развития которого в последние десятилетия нарастает, несмотря на развитие медицины, также ассоциировано с МА [5]. Известно, что у больных ХОБЛ нарушения ритма встречаются в 89—92% случаев, из них на долю МА приходится от 10 до 84% [6]. ­

В то же время тот факт, что при одной и той же тяжести основного заболевания МА развивается не всегда, указывает на то, что для ее развития требуется наличие и других причин. Именно поэтому фокус исследований сместился ­в сторону изучения возможной генетической предрасположенности к формированию этого нарушения ритма.

Играющие значительную роль в развитии обоих заболеваний процессы воспаления [7, 8] и фиброза [9, 10] , ассоциация между ними могут иметь, в том числе, генетическую природу. Об этом свидетельствует изучение полиморфизмов генов различных цитокинов и поиски их взаимосвязи как для МА, так и для ХОБЛ (см. таблицу). Цель настоящего обзора — анализ данных, указывающих на возможную общую наследственную предрасположенность к развитию МА и ХОБЛ.

Фиброз и воспаление — патогенетическая основа развития МА и ХОБЛ. Фиброз характеризуется увеличением синтеза коллагена, фибриллина, фибронектина, фибромодуллина ­в экстрацеллюлярном матриксе при одновременном снижении активности матриксных металлопротеиназ [53, 54], в том числе вследствие воспаления, вызванного разнообразными причинами — инфекцией, аутоиммунной реакцией, воздействием радиации и химических факторов и т.п. Ключевой клеточный медиатор фиброза — фибробласт, который при активации выполняет функцию клетки, продуцирующей коллаген. Активация фибробластов регулируется различными цитокинами, продуцируемыми моноцитами, Т-лимфоцитами и другими клетками, ассоциированными ­с воспалением. Ряд исследований дал возможность предположить, что некоторые цитокины, такие как трансформирующий фактор роста β1 (TGF-β1), тромбоцитарный фактор роста (PDGF), эпидермальный фактор роста (EGF), фактор некроза опухоли α и β (TNF-α и -β), интерлейкин-1α и β ­(IL-1α и β), интерлейкин-4 (IL-4), интерлейкин-6 (IL-6), онкостатин М (OSM), регулируют пролиферацию фибробластов и отложение коллагена во внеклеточном матриксе [55].­

Вы­деляют несколько основных путей, участвующих­ в развитии фиброза: TGF-β1, ренин-ангиотензиновая система и воспаление.

TGF-β1. Это один из трех членов семейства TGF-β (TGF-β1,­ TGF-β2, TGF-β3), ген которого локализуется в длинном плече 19-й хромосомы (19q13.1). Обнаружено значительное количество полиморфных маркеров в этом гене, однако только 5 из них имеют функциональное значение. Полипептиды семейства синтезируются в качестве мономера с молекулярной массой примерно 55 кДа, так называемого пре-про-TGF-β, состоящего из 390 аминокислотных остатков; ­в последующем, через несколько стадий посттрансляционной модификации образуется активный цитокин, представляющий из себя димер [56]. Описано значительное число биологических и патофизиологических процессов, в которых принимает участие TGF-β1: регулирует образование рубцовой ткани после инфаркта миокарда, развитие гипертрофии миокарда, стабилизацию атеросклеротических бляшек. TGF-β1 — профибротический цитокин, который контролирует синтез и состав внеклеточного матрикса, ингибирует деградацию коллагена. Активация рецепторов TGF-β1 также приводит к экспрессии фактора роста соединительной ткани (CTGF), который высвобождается локально, что еще больше стимулирует белки внеклеточного матрикса и усиливает прогрессирование фиброза.

Считается, что TGF-β1 влияет на прогрессирование фиброза предсердий через сигнальную систему SMAD. Активация рецепторов TGF-β1 приводит к высвобождению CTGF, что усиливает прогрессирование фиброза [57]. В исследовании на трансгенных собаках (сверхэкспрессированных активным фактором TGF-β1) использовали препарат пирфенидон ­с целью­ контроля экспрессии TGF-β1. Были выявлены снижение экспрессии TGF-β1, уменьшение фиброза предсердий [58]. Повышение активности TGF-β1 способствовало развитию фиброза миокарда предсердий у трансгенных мышей, не вовлекая в этот процесс миокард желудочков. Такие результаты позволили предположить, что предсердные фибробласты и/или кардиомиоциты обладают повышенной чувствительностью к цитокину TGF-β1 [59].

В эксперименте показано, что увеличение уровня TGF-β1 усиливает пролиферацию гладких мышечных клеток бронхиальной стенки [10]. Кроме TGF-β1 другие цитокины, представленные в легких, вызывают активацию фибробластов.

У больных ХОБЛ изучены 4 функциональных полиморфизма гена TGF-β1 (rs2241712, rs1982073, rs6957, rs1800469), но только полиморфизм rs1800469 (C-509T) изучался и при МА.­

Однако данные об этом полиморфизме и его причастности ­к МА неоднозначны. В китайской популяции наличие генотипов CТ и TТ полиморфизма С-509Т гена TGF-β1 было ассоциировано с риском развития идиопатической МА и рецидивом МА после абляции [15]. Ранее в исследовании, также проведенном в китайской популяции, не было выявлено связи между данным полиморфизмом и МА [14], отличием является то, что в первом случае изучались пациенты только с идиопатической МА, а во втором – с идиопатической и пароксизмальной формами МА. Кроме того, противоречивы данные относительно концентрации TGF-β1 в сыворотке. ­

У пациентов с застойной сердечной недостаточностью низкий­ уровень биомаркера был связан с развитием МА [18]. Однако по другим данным, отмечена взаимосвязь МА с повышением концентрации TGF-β1 в сыворотке [19]. Для больных ХОБЛ ассоциация с полиморфизмом rs1800469 (C-509T) гена TGF-β1­ наряду с другими полиморфизмами этого гена (rs2241712, rs1982073, rs6957) осуществляется через восприимчивость ­ к действию сигаретного дыма. Для больных ХОБЛ характерно повышение уровня TGF-β1 в сыворотке [17].

Ренин-ангиотензиновая система. Ренин-ангиотензиновая система (РАС) — ключевой регулятор сосудистого тонуса, равновесия натрия и воды и ответа организма на повреждение тканей. Основной действующий компонент — ангиотензин II (АТII), представляющий собой октапептидный гормон, построенный из 359 аминокислот и образующийся под воздействием ангиотензинпревращающего фермента (АПФ) из ангиотензина I. АТII взаимодействует с двумя клеточными рецепторами АТII 1-го и 2-го типов (АТ1 и АТ2), кодируемых соответственно генами AGTR1 (локализация гена 3q24) и AGTR2 (локализация гена Xq23). Рецепторы определяются в клетках сердца, сосудов, надпочечников, почек, репродуктивных органов. АТII играет роль в развитие фиброза ­у больных гипертонической болезнью, заболеваниями почек и печени. Продукция АТII осуществляется локально активированными макрофагами и фибробластами, стимулирует выработку TGF-β1, что запускает синтез и пролиферацию фибробластов и их дифференцировку в коллаген-секретирующие миофибробласты [60, 61].

АТII способствует развитию фиброза предсердий [62, 63]. В экспериментальной модели продолжительное добавление АТII приводило к возрастанию отложения коллагена ­в миокарде [64]. В нескольких исследованиях на животных использование ингибиторов АПФ при сердечной недостаточности снижало частоту развития МА и уменьшало выраженность фиброза предсердий [65—69]. РАС также потенциально вовлечена в патогенез ХОБЛ через участие в индукции провоспалительных медиаторов в легких. АТII приводит к освобождению цитокинов: интерлейкина-6 (IL-6), TNF, MCP-1, а также оказывает иммуномодулирующий эффект через Т-клетки, которые опосредованно связаны с повреждением легочной ткани у больных ХОБЛ. Альвеолярные клетки 1-го типа продуцируют провоспалительные цитокины и компоненты РАС в рамках иммунного ответа на повреждение легких. Так, цитокиновый ответ, опосредованный АТII,­ ингибировался приемом лозартана. Следует отметить, что соотношение рецепторов АТ1 и АТ2 в разы возрастало ­в области с перибронхиальным фиброзом, что коррелировало с более низким объемом форсированного выдоха ­за 1-ю секунду (ОФВ1). Это подтверждает влияние АТII ­на бронхоконстрикцию через рецепторы АТ1. У больных ХОБЛ определялось наличие АПФ в смывах из бронхов [70].

Выявлена ассоциация нескольких полиморфных маркеров гена ангиотензиногена [М235Т, G(-6) A, G(-127)A, T174M, 20 C/C] с развитием МА [21, 71], генотипа D/D гена АПФ ­с наличием МА у пациентов с застойной сердечной недостаточностью [21]. В отношении ХОБЛ имеются данные об ассоциации полиморфного маркера I/D гена АПФ не с самим заболеванием, а с давлением в легочной артерии [20].

Воспаление и окислительный стресс. Фактор некроза опухоли (TNF). Это внеклеточный белок, многофункциональный провоспалительный цитокин, синтезирующийся в основном моноцитами и макрофагами. Ген картирован на хромосоме 6p21.3, имеет размер 2762 п.н. и содержит 4 экзона. Последний экзон более чем на 80% кодирует белок. Известно более 30 полиморфных вариантов гена, но только половина из них влияет на экспрессию TNF [72]. Синтезируется как мембранный белок молекулярной массой 26 кДа (233 аминокислоты). Под действием специфической металлопротеиназы образуется растворимый TNF молекулярной массой 17 кДа (157 аминокислот). Активная форма белка — гомо­тример — теряет активность при диссоциации субъединиц, так как только он способен связываться с рецептором и олигомеризовать его, что необходимо для запуска сигнального пути [73]. Выявлено два типа рецепторов TNF: рецепторы 1-го типа, через которые опосредуются воспалительные и цитотоксические эффекты TNF, рецепторы 2-го типа участвуют в реализации пролиферативных процессов. TNF влияет ­ на метаболизм липидов, коагуляцию, устойчивость к инсулину, функционирование эндотелия, стимулирует продукцию IL-1, IL-6 и IL-8, интерферона γ, активирует лейкоциты. При обычном течении воспаления участвует в развитии «хорошего» фиброза, обеспечивающего регенерацию тканей, однако при хроническом воспалительном процессе становится равноправным участником патологического фиброза как прямым действием, так и через активацию других цитокинов.

По данным небольшого исследования, уровень TNF (наряду с С-реактивным белком и IL-6) повышен в сыворотке ­у пациентов с пароксизмальной формой МА во время пароксизма и сохраняется повышенным через 2 нед после кардиоверсии [74]. При сравнении пациентов с идиопатической МА и «классической» МА (пароксизмальная, персистирующая или постоянная форма) в обеих группах отмечалось стойкое повышение уровня TNF [75]. У больных ХОБЛ отмечено повышение содержания TNF в смывах из бронхов по сравнению с таковым у здоровых и курильщиков, не страдающих ХОБЛ [76]. Отмечается повышение концентрации TNF ­в сыворотке и мокроте у больных ХОБЛ при сравнении ­с таковым у здоровых, а также повышение в большей степени TNF (IL-6, эозинофилов, концентрации оксида азота – NO в выдыхаемом воздухе) в мокроте у пациентов с отрицательным бронходилатационным тестом по сравнению с пациентами, страдающими ХОБЛ, но с положительным бронходилатационным тестом [77].

В нескольких работах определялась связь полиморфизма rs1800629 A(-308)G гена TNF с развитием эмфиземы легких у больных ХОБЛ (см. таблицу). В отношении МА данный полиморфизм не исследовался. В группе больных МА отмечалось повышение уровня TNF в сыворотке [29].

Эндотелиальная NO-синтаза (eNOS). Под действием фермента NO-синтазы (NOS) образуется NO, являющийся основным вазодилататором. NO предотвращает адгезию и агрегацию тромбоцитов, адгезию моноцитов, влияет ­на структуру сосуда, оказывает протективное действие ­на сосудистую стенку. Выделяют три основные изоформы: нейрональная NO-синтаза (nNOS или NOS I), эндотелиальная NO-синтаза (eNOS или NOS III) и NO-синтаза макрофагов или индуцибельная NO-синтаза (iNOS или NOSII). еNOS стабильно экспрессируется в эндотелиальных клетках, ингибирование приводит ко всем органическим последствиям тяжелой и продолжительной артериальной гипертензии, включая атеросклероз и сосудистые органные поражения. Ген eNOS локализован в 7-й хромосоме и кодирует белок, состоящий из 1203 аминокислот. Наиболее изучены два полиморфных участка: мини-сателлитный повтор в интроне 4­ (eNOS 4a/4b полиморфизм) и мутация в положении 298 белковой последовательности, ведущая к замене остатка глутаминовой кислоты на аспарагиновую (Glu298Asp) [78]. В модели на крысах продемонстрировано, что ингибирование NOS-синтазы приводит к увеличению чувствительности кардиомиоцитов к действию АТII и к ускорению развития фиброза [79].

Снижение активности eNOS приводит к более низкому содержание NO и ассоциируется с риском развития неклапанной МА [80]. У пациентов с МА независимо от формы ­не выявлено повышения экскреции F2-изопростана — чувствительного маркера окислительного стресса [75].

«Оксидантная» теория — одна из теорий патогенеза ХОБЛ —­ основывается на неравенстве между уровнем вредных оксидантов и защитных антиоксидантов, что приводит к окислительному стрессу, который влияет на действие антипротеаз и экспрессию провоспалительных медиаторов. Были проанализированы показатели антиоксидантного статуса и окислительного стресса в плазме и клетках крови у больных ХОБЛ. Выявлен системный характер нарушений в антиоксидантной системе у больных данной группы [81].

Генотип СС полиморфизма -786Т/С гена NOS3 имеет протективное свойство к развитию МА для европейской популяции [33]. В отношении ХОБЛ полиморфизм не связан непосредственно с развитием заболевания, однако наряду с другими полиморфизмами этого гена (-922A/G, 4B/4A), связан с более низким ОФВ1 и значительным повышением концентрации NO и малонового альдегида — маркера окислительного стресса [31].

Металлопротеиназы. Матриксные металлопротеиназы (MMP) — семейство внеклеточных цинкзависимых эндопептидаз, способных разрушать белки внеклеточного матрикса всех типов. Основные группы металлопротеиназ: коллагеназы, желатиназы и стромолизины. Коллагеназы разрушают интерстициальный коллаген (I, II, III типов), желатиназы — коллаген базальных мембран (IV типа) и желатин, стромолизины разрушают протеогликаны, ламинин, желатин и фибронектин. Протеолитическая активность ММР может быть ингибирована тканевыми ингибиторами металлопротеиназ (TIMP). ММР играют роль в ремоделировании тканей, ангиогенезе, пролиферации, миграции и дифференциации клеток, апоптозе, сдерживании роста опухолей. Задействованы ­в расщеплении мембранных рецепторов, выбросе апоптозных лигандов, а также в активации и деактивации хемокинов и цитокинов. Анализ промоутеров генов ММП показал, что они содержат общие элементы, отвечающие за механизмы регуляции экспрессии генов (глюкокортикоиды, эстроген, прогестерон и др.) На посттрансляционном уровне в физиологических условиях известны два основных пути регуляции активности ферментов: активация зимогенов MMP и взаимодействие с MMP эндогенными ингибиторами [82].­

Снижение активности ММР приводит к избыточному накоплению коллагена в интерстициальной ткани, что является одним из ключевых моментов в развитии фиброза.­

ММР9 играет роль в патогенезе проаритмогенного ремоделирования предсердий и может быть связана с развитием и персистенцией фибрилляции предсердий [83]. Повышение уровня ММР2 явилось независимым предиктором рецидива МА­ после катетерной деструкции [84]. Выявлено увеличение содержания меллопротеиназ разных групп в смывах из бронхов у больных эмфиземой легких [85]. У больных ХОБЛ ­ в мокроте определялось повышение концентрации MMP8 и MMP9 по сравнению с таковой у здоровых [86]. Увеличение активности металлопротеиназ играет важную роль в поддер­жании хронического воспалительного процесса у больных бронхиальной астмой и ХОБЛ [87].

У больных ХОБЛ полиморфизм С-1562Т гена ММР9 оценивался в двух популяциях — китайской и японской. В первом случае сопоставляли со степенью обструкции — связи не выявлено, однако отмечено изменение альвеолярного объема. Во втором случае выявлена связь с развитием эмфиземы легких, что подтверждалось и в более поздних исследованиях [88]. Полиморфизм С-1562Т гена ММР9 отвечает за концентрацию белка, повышение концентрации ММР9 может оказывать проаритмогенное действие. Так, аллель Т (СТ+ТТ) значительно увеличивал риск развития МА по сравнению с гомозиготами СС наряду с такими показателями, как возраст, объем левого предсердия, сопутствующая терапия ингибиторами АПФ или β-адреноблокаторами. Аллель Т­ ассоциирован с повышением в плазме уровня ММР9 ­ по сравнению с таковым у гомозиготов СС в обеих группах (с МА и контроль). Выявлена также связь данного полиморфизма с риском развития МА у больных гипертонической болезнью в китайской популяции [37].

Оценка связи полиморфизмов MMP2 -1306C>T, MMP2 -735C>T, TIMP-2 -418G>C с развитием МА выявила, что распределение и частота аллелей TIMP-2 418G>C значительно различается между группами с МА и без МА. Носители аллеля С­ (GC+CC) имели значительно больший риск развития МА­ по сравнению с гомозиготными носителями GG наряду ­с такими показателями, как возраст, объем левого предсердия, прием ингибиторов АПФ или β-адреноблокаторов. Аллель С ассоциирован со снижением в плазме уровня TIMP-2 по сравнению с таковым у гомозиготов GG в обеих группах (с МА и контроль). Для полиморфизмов MMP-2 -1306C>T и -735C>T связи с МА не выявлено. TIMP-2 -418G>C полиморфизм ассоциирован с возрастанием риска развития МА среди больных гипертонической болезнью ­в китайской популяции. Аллель C ассоциирован со снижением уровня TIMP-2 в плазме и может иметь более высокий риск развития МА [43].

Интерлейкины. Это группа цитокинов (насчитывается около 20 представителей), которые в основном синтезируются T-клетками, в некоторых случаях также мононуклеарными фагоцитами или другими тканевыми клетками. Интерлейкины — гормоноподобные белки, обладающие способностью стимулировать рост и дифференцировку клеток, при этом каждый из них действует на отдельную, ограниченную группу клеток, экспрессирующих специфичные для данного интерлейкина рецепторы, сильные иммунорегуляторы локального действия. В отношении МА и ХОБЛ больше всего изучались IL-1β, IL-2, IL-6 и IL-10.

IL-1β — медиатор острого и хронического воспаления. Синтезируется в виде предшественника и превращается ­в зрелый белок после отщепления пропептида. Имеет молекулярную массу около 18 кДа, структура включает 12—14 β-складок, образующих бочкообразный или цилиндрический белок [89]. Ген, кодирующий IL-1β, локализуется ­на коротком плече 2-й хромосомы (2q13—q21). Полиморфизмы C-511T и T-31C ассоциированы с повышенной выработкой IL-1β [90]. Функции: индуцирует хемотаксис полиморфноядерных лейкоцитов, хемотаксис макрофагов, пролиферацию эндотелиальных клеток и остеобластов, стимулирует дифференцировку и пролиферацию B-клеток, высвобождение факторов, связанных с ростом и дифференцировкой миелоидной и лимфоидной клеточных линий [91].­

В ряде исследований выявлено наличие IL-1β в тканях при хроническом воспалении, а также в тканях, подверженных фиброгенезу, с накоплением фибробластов и депозитов ­в матриксе [92]. В моделях на животных продемонстрировано, что ингибирование IL-1β уменьшает степень фиброза [93], что указывает на причинно-следственную связь между цитокином острой фазы воспаления IL-1β и хроническим воспалением, и его следствием — развитием фиброза.

IL-2 — медиатор воспаления и иммунитета, продуцируется Т-клетками. Синтезируется в виде предшественника, зрелый белок состоит из 133 аминокислот и имеет молекулярную массу примерно 15,4 кДа. Ген, кодирующий IL-2, локализуется на длинном плече 4-й хромосомы (4q26—q27). Необходим для пролиферации Т-клеток и других процессов, регулирующих иммунный ответ. Свое действие осуществляет через гетеротримерный комплекс рецептора IL-2: ­рецептор IL-2α (CD25), рецептор IL-2β (CD122) и ­рецептор IL-2γ (CD132). Вероятнее всего, участие IL-2 ­в фиброгенезе носит опосредованный характер через стимуляцию синтеза и секреции целого ряда других лимфокинов: IL-4, IL-6, интерферона γ, колониестимулирующих факторов (CSFs), TNF. Прямой связи между изменением концентрации в сыворотке, генетическими полиморфизмами и развитием фиброза не наблюдалось.

IL-6 — цитокин, дающий двойной эффект: про- и противовоспалительный. Продуцируется активированными моноцитами или макрофагами, эндотелиальными клетками, фибробластами, активированными T-клетками и клетками, не являющимися иммуноцитами. IL-6 состоит из 184 амино­кислотных остатков и имеет молекулярную массу 21 кДа. Действие IL-6 на клетки реализуется через взаимодействие с рецептором. Ген, кодирующий IL-6, локализуется на коротком плече 7-й хромосомы (7p15—21). Стимулирует синтез печенью белков острой фазы, пролиферацию и дифференцировку B- и T-клеток, лейкоцитопоэз [94]. Прямого влияния на фиброгенез не наблюдалось, механизм действия опосредованный.

IL-8 — хемокин, обеспечивает хемотаксис в зону воспаления различных типов клеток: нейтрофилов, моноцитов, эозинофилов, Т-клеток. Продуцируется макрофагами, лимфоцитами, эпителиальными клетками, фибробластами, клетками эпидермиса. Состоит из 72 аминокислот, молекулярная масса 8,8 кДа. Ген локализуется на длинном плече ­4-й хромосомы (4q12—q13). Отмечено повышение концентрации в сыворотке IL-8 у больных циррозом печени, в смыве из бронхов у больных саркоидозом и идиопатическим легочным фиброзом [95], IL-8 активно изучается у больных муковисцидозом в качестве мощного воспалительного агента.

IL-10 — цитокин антивоспалительного действия. Молекулярная масса 17—21 кДа. Ген, кодирующий IL-10, располагается на плече q 1-й хромосомы (1q31—q32). Продуцируется Т-клетками (Th2) и может рассматриваться как антагонист ряда других цитокинов. Подавляет продукцию всех провоспалительных цитокинов, интерферона, пролиферативный ответ Т-клеток. Способствует развитию гуморальной составляющей иммунного ответа, обусловливая антипаразитарную защиту и аллергическую реактивность организма.­

Роль IL-10 в фиброгенезе неизвестна, IL-10 подавляет синтез­ коллагена I типа. У больных хроническим вирусным гепатитом С на фоне лечения IL-10 уменьшается степень фиброза печени — антифибротическое действие. Косвенные признаки причастности IL-10 к фиброзу: у больных идиопатическим легочным фиброзом из 17 измеренных цитокинов в биоптате легочной ткани выявлено два — TGF-β1 и IL-10 [96].

Повышенный уровень IL-2 в сыворотке у больных после операции на сердце был ассоциирован с развитием МА [97]. В ряде работ выявлена связь повышения концентрации IL-6 в сыворотке и развития МА как у пациентов, перенесших хирургическое вмешательство на сердце, так и у неоперированных [7]. При сравнении пациентов с разными формами МА­ выявлено повышение в сыворотке концентрации IL-6, IL-8 и IL-10 во всех группах, каждый из маркеров был независимо связан с МА [75]. По другим данным, низкий уровень IL-10 был связан с риском развития идиопатической МА в китайской популяции [98]. У больных ХОБЛ концентрация IL-1β преобладает над концентрацией антагонистов к рецепторам IL-1β, уровень IL-1β также коррелирует с индексом массы тела и степенью бронхообструкции [99]. Отмечалось повышение ­в сыворотке уровня IL-6 у больных ХОБЛ в европейской популяции [100]. Содержание IL-1β, IL-6, IL-8 повышено в мокро­те и бронхоальвеолярных смывах у больных ХОБЛ [101].­

Обращало на себя внимание значительное снижение уровня IL-10 в мокроте у больных ХОБЛ и бронхиальной астмой ­по сравнению со здоровыми лицами [102].

Среди полиморфизмов генов интерлейкинов связь с МА имеют G-174C гена IL-6 [48] и А-592C гена IL-10 [98]; ассоциированными с ХОБЛ оказались полиморфизмы G(-597)A­ гена IL-6, -819 C/T гена IL-10; ассоциация с обоими заболеваниями описана для одного полиморфизма — IL-1RN ­ (см. таблицу). Данный полиморфизм наряду с полиморфизмами (-511) и (-31) гена IL-1β, был связан с риском развития ХОБЛ у представителей Восточной Азии [44]. По другим данным, полиморфизм IL-1RN являлся протективным для мужчин и фактором риска для женщин в развитии ХОБЛ [45].­

Наличие данного полиморфизма было связано с риском развития идиопатической МА [46].

Таким образом, анализ литературы подтверждает предположение о том, что наличие значительного числа больных МА среди имеющих ХОБЛ является следствием общих путей патогенеза данных заболеваний, прежде всего, воспаления и фиброза, а генетические особенности участвующих в этих процессах белков могут обеспечивать предрасположенность к обоим заболеваниям одновременно.

Список литературы

  1. Chung M.K., Martin D.O., Sprecher D., Wazni O., Kanderian A., Carnes C.A., Bauer J.A., Tchou P.J., Niebauer M.J., Natale A. C-reactive protein elevation in patients with atrial arrhythmias inflammatory mechanisms and persistence of atrial fibrillation. Circulation 2001, 104(24):2886–2891.
  2. Kopecky S.L., Gersh B.J., McGoon M.D., Whisnant J.P., Holmes D.R., Ilstrup D.M., Frye R.L. The natural-history of lone atrial-fibrillation -­ a population-based study over 3 decades. N Engl J Med 1987, 317(11):669–674.
  3. Mahida S. Genetic Discoveries In Atrial Fibrillation And Implications For Clinical Practice. Arrhythmia & Electrophysiology Review 2014, 3(2):69–75.
  4. Camm A.J., Lip G.Y., De Caterina R., Savelieva I., Atar D., Hohnloser S.H., Hindricks G., Kirchhof P., Bax J.J., Baumgartner H. 2012 focused update of the ESC Guidelines for the management of atrial fibrillation An update of the 2010 ESC Guidelines for the management ­of atrial fibrillationDeveloped with the special contribution of the European Heart Rhythm Association. Europace 2012, 14(10):1385–1413.
  5. Murray C.J.L., Lopez A.D. Evidence-based health policy lessons from the Global Burden of Disease study. Science 1996, 274:740–743.
  6. Kleiger R.E., Senior R.M. Longterm electrocardiographic monitoring of ambulatory patients with chronic airway-obstruction. Chest 1974, 65(5):483–487.
  7. Issac T.T., Dokainish H., Lakkis N.M. Role of inflammation in initiation and perpetuation of atrial fibrillation: a systematic review of the published data. J Am Coll Cardiol 2007, 50(21):2021–2028.
  8. Sevenoaks M.J., Stockley R.A. Chronic Obstructive Pulmonary Disease, inflammation and co-morbidity – a common inflammatory phenotype? Respiratory Research 2006, 7(1):70–70.
  9. Kostin S., Klein G., Szalay Z., Hein S., Bauer E.P., Schaper J. Structural correlate of atrial fibrillation in human patients. Cardiovascular research 2002, 54(2):361–379.
  10. Chen G., Khalil N. TGF-β1 increases proliferation of airway smooth muscle cells by phosphorylation of map kinases. Respiratory Research 2006, 7(1):2–2.
  11. Shah R., Hurley C.K., Posch P.E. A molecular mechanism ­for the differential regulation of TGF-beta1 expression due to the common SNP -509C-T (c. -1347C > T). Hum Genet 2006;120(4):461–469.
  12. Celedón J.C., Lange C., Raby B.A., Litonjua A.A., Palmer L.J., DeMeo D.L., Reilly J.J., Kwiatkowski D.J., Chapman H.A., Laird N.­ The transforming growth factor-β1 (TGFB1) gene is associated with chronic obstructive pulmonary disease (COPD). Human molecular genetics 2004, 13(15):1649–1656.
  13. Morris D.G., Huang X., Kaminski N., Wang Y., Shapiro S.D., ­Dolganov G., Glick A., Sheppard D. Loss of integrin
  14. Zheng W., Yan C., Wang X., Luo Z., Chen F., Yang Y., Liu D., Gai X., Hou J., Huang M. The TGFB1 Functional Polymorphism rs1800469 and Susceptibility to Atrial Fibrillation in Two Chinese Han Populations. PloS one 2013;8(12):e83033.doi:10.1371.
  15. Cao H., Zhou Q., Lan R., Roe O.D., Chen X., Chen Y., Wang D. ­A Functional Polymorphism C-509T in TGFbeta-1 Promoter Contributes to Susceptibility and Prognosis of Lone Atrial Fibrillation in Chinese Population. PloS one 2014;9(11):e112912.
  16. Smolonska J., Wijmenga C., Postma D.S., Boezen H.M. Meta-analyses ­on suspected chronic obstructive pulmonary disease genes: a summary of 20 years' research. American journal of respiratory and critical care medicine 2009; 180(7):618–631.
  17. Hodge S., Hodge G., Reynolds P., Scicchitano R., Holmes M. Increased production of TGF-β and apoptosis of T lymphocytes isolated from peripheral blood in COPD. American Journal of Physiology-Lung Cellular and Molecular Physiology 2003;285(2):L492–L499.
  18. Behnes M., Hoffmann U., Lang S., Weiss C., Ahmad-Nejad P., Neumaier M., Borggrefe M., Brueckmann M. Transforming growth factor beta 1 (TGF-beta 1) in atrial fibrillation and acute congestive heart failure. Clinical research in cardiology : official journal of the German Cardiac Society 2011;100(4):335–342.
  19. Li X., Ma C., Dong J., Liu X., Long D., Tian Y., Yu R. The fibrosis and atrial fibrillation: is the transforming growth factor-beta 1 a candidate etiology of atrial fibrillation. Medical hypotheses 2008;70(2):317–319.
  20. Tkacova R., Joppa P., Stancak B., Salagovic J., Misikova S., Kalina I. ­The link between angiotensin-converting enzyme genotype and pulmonary artery pressure in patients with COPD. Wiener klinische Wochenschrift 2005; 117(5-6):210–214.
  21. Bedi M., McNamara D., London B., Schwartzman D. Genetic susceptibility to atrial fibrillation in patients with congestive heart failure. Heart Rhythm 2006;3(7):808–812.
  22. Churg A., Wang R.D., Tai H., Wang X., Xie C., Wright J.L. Tumor necrosis factor-α drives 70% of cigarette smoke–induced emphysema ­in the mouse. American journal of respiratory and critical care medicine 2004;170(5):492–498.
  23. Sakao S., Tatsumi K., Igari H., Shino Y., Shirasawa H., Kuriyama T. Association of tumor necrosis factor α gene promoter polymorphism with the presence of chronic obstructive pulmonary disease. American journal of respiratory and critical care medicine 2001;163(2):420–422.
  24. Wilson A., De Vries N., Pociot F.d., Di Giovine F., Van der Putte L., Duff G. An allelic polymorphism within the human tumor necrosis factor alpha promoter region is strongly associated with HLA A1, B8, and DR3 alleles. The Journal of experimental medicine 1993;177(2):557–560.
  25. Okinaga S., Takahashi K., Takeda K., Yoshizawa M., Fujita H., Sasaki H.,­ Shibahara S. Regulation of human heme oxygenase-1 gene expression under thermal stress. Blood 1996;87(12):5074–5084.
  26. Wilson A.G., Symons J.A., McDowell T.L., McDevitt H.O., Duff G.W. Effects of a polymorphism in the human tumor necrosis factor alpha promoter on transcriptional activation. Proc Natl Acad Sci U S A 1997, 94(7):3195–3199.
  27. Huang S.-L., Su C.-H., Chang S.-C. Tumor Necrosis Factor- α Gene Polymorphism in Chronic Bronchitis. American journal of respiratory and critical care medicine 1997;156(5):1436–1439.
  28. Sakao S., Tatsumi K., Igari H., Watanabe R., Shino Y., Shirasawa H., Kuriyama T. Association of tumor necrosis factor-α gene promoter polymorphism with low attenuation areas on high-resolution ct in patients with COPD. CHEST Journal 2002;122(2):416–420.
  29. Boos C.J., Anderson R.A, Lip G.Y. Is atrial fibrillation an inflammatory disorder? European heart journal 2006;27(2):136–149.
  30. Yildiz P., Oflaz H., Cine N., Erginel-Unaltuna N., Erzengin F., Yilmaz V. Gene polymorphisms of endothelial nitric oxide synthase enzyme associated with pulmonary hypertension in patients with COPD. Respir Med 2003;97(12):1282–1288.
  31. Arif E., Ahsan A., Vibhuti A., Rajput C., Deepak D., Athar M., Singh B., Pasha M.A. Endothelial nitric oxide synthase gene variants contribute to oxidative stress in COPD. Biochem Biophys Res Commun 2007;361(1):182–188.
  32. Aminuddin F., Hackett T.L., Stefanowicz D., Saferali A., Pare P.D., Gulsvik A.,­ Bakke P., Cho M.H., Litonjua A., Lomas D.A. et al. Nitric­ oxide synthase polymorphisms, gene expression and lung function in chronic­ obstructive pulmonary disease. BMC pulmonary medicine 2013;13:64.
  33. Chen H., Chu H., Shi Y., Bhuyan S.S., Li J., Liu S.R., Yang J. Association between endothelial nitric oxide synthase polymorphisms and atrial fibrillation: a meta-analysis. Journal of cardiovascular translational research 2012;5(4):528–534.
  34. Zhang B., Henney A. Eriksson P., Hamsten A., Watkins H., Ye S. Genetic variation at the matrix metalloproteinase-9 locus on chromosome 20q12. 2–13.1. Human genetics 1999;105(5):418–423.
  35. Minematsu N., Nakamura H., Tateno H., Nakajima T., Yamaguchi K. Genetic polymorphism in matrix metalloproteinase-9 and pulmonary emphysema. Biochemical and biophysical research communications 2001;289(1):116–119.
  36. Ito I., Nagai S., Handa T., Muro S., Hirai T., Tsukino M., Mishima M. Matrix metalloproteinase-9 promoter polymorphism associated with upper lung dominant emphysema. American journal of respiratory and critical care medicine 2005;172(11):1378–1382.
  37. Gai X., Lan X., Luo Z., Wang F., Liang Y., Zhang H., Zhang W., Hou J., Huang M. Association of MMP-9 gene polymorphisms with atrial fibrillation in hypertensive heart disease patients. Clinica chimica acta 2009;408(1–2):105–109.
  38. D'Armiento J., Dalal S.S., Okada Y., Berg R.A., Chada K. Collagenase expression in the lungs of transgenic mice causes pulmonary emphysema. Cell 1992;71(6):955–961.
  39. Lombardi F., Belletti S., Battezzati P.M., Pacciolla R., Biondi M.L. MMP-1 and MMP-3 polymorphism and arrhythmia recurrence after electrical cardioversion in patients with persistent atrial fibrillation. Journal of Cardiovascular Medicine 2011;12(1):37–42.
  40. Joos L., He J.-Q., Shepherdson M.B., Connett J.E., Anthonisen N.R.,­ Paré P.D., Sandford A.J. The role of matrix metalloproteinase polymorphisms in the rate of decline in lung function. Human molecular genetics 2002;11(5):569–576.
  41. Ohnishi K., Takagi M., Kurokawa Y., Satomi S. Konttinen Y.T. Matrix metalloproteinase-mediated extracellular matrix protein degradation ­in human pulmonary emphysema. Lab Invest 1998;78(9):1077–1087.
  42. Hirano K., Sakamoto T., Uchida Y., Morishima Y., Masuyama K., Ishii Y., Nomura A., Ohtsuka M., Sekizawa K. Tissue inhibitor ­ of metalloproteinases-; 2 gene polymorphisms in chronic obstructive pulmonary disease. European Respiratory Journal 2001;18(5):748–752.
  43. Gai X., Zhang Z., Liang Y., Chen Z., Yang X., Hou J., Lan X., Zheng W.,­ Hou J., Huang M. MMP-2 and TIMP-2 gene polymorphisms and susceptibility to atrial fibrillation in Chinese Han patients with hypertensive heart disease. Clinica chimica acta 2010;411(9):719–724.
  44. Xie Z.-K., Huang Q.-P., Huang J., Xie Z.-F. Association between ­the IL1B, IL1RN polymorphisms and COPD risk: A meta-analysis. Scientific Reports 2014;4:6202.
  45. Shukla R.K., Kant S., Bhattacharya S., Mittal B. Association of Cytokine Gene Polymorphisms in Patients with Chronic Obstructive Pulmonary Disease. Oman Medical Journal 2012;27(4):285–290.
  46. Gungor B., Ekmekci A., Arman A., Ozcan K.S., Ucer E., Alper A.T., Calik N.,­ Yilmaz H., Tezel T., Coker A. et al. Assessment of interleukin-1 gene cluster polymorphisms in lone atrial fibrillation: new insight into the role of inflammation in atrial fibrillation. Pacing and clinical electrophysiology: PACE 2013;36(10):1220–1227.
  47. Cordoba-Lanus E., de-Torres J.P., Lopez-Aguilar C., Rodriguez-Perez M.C.,­ Maca-Meyer N., Montejo-de-Garcini A., Aguirre-Jaime A., Perez-Mendez L., Casanova C. Association of IL-6 gene polymorphisms and COPD in a Spanish population. Respir Med 2008;102(12):1805–1811.
  48. Gaudino M., Andreotti F., Zamparelli R., Di Castelnuovo A., Nasso G., Burzotta F., Iacoviello L., Donati M.B., Schiavello R., Maseri A. et al.­ The -174G/C interleukin-6 polymorphism influences postoperative interleukin-6 levels and postoperative atrial fibrillation. Is atrial fibrillation an inflammatory complication? Circulation 2003;108 Suppl 1:Ii195–199.
  49. Hu R.C., Xu Y.J., Zhang Z.X., Xie J.G. Polymorphism of interleukin-10 gene promoter and its association with susceptibility to chronic obstructive pulmonary disease in Chinese Han people. Zhonghua yi xue yi chuan xue za zhi = Zhonghua yixue yichuanxue zazhi = Chinese journal of medical genetics 2003;20(6):504–507.
  50. He J.Q., Shumansky K., Zhang X., Connett J.E., Anthonisen N.R., Sandford A.J. Polymorphisms of interleukin-10 and its receptor and lung function in COPD. The European respiratory journal 2007;29(6):1120–1126.
  51. Demeo D.L., Campbell E.J., Barker A.F., Brantly M.L., Eden E., McElvaney N.G.,­ Rennard S.I., Sandhaus R.A., Stocks J.M., ­Stoller J.K. et al.­ IL-10 polymorphisms are associated with airflow obstruction in severe alpha1-antitrypsin deficiency. Am J Respir Cell Mol Biol 2008;38(1):114–120.
  52. Zheng D.-D., Ji S.-N., Chen C., Deng X.-T., Su Y.-M., Pan H.-Y., Cai X.-X.,­ Li X.-F., Zhu J.-H., Pan M. Association of Interleukin-10 promotor polymorphisms with atrial fibrillation in Han Chinese. International Journal of Clinical and Experimental Medicine 2014;7(11):4199–4206.
  53. Pellman J., Lyon R.C., Sheikh F. Extracellular Matrix Remodeling in Atrial Fibrosis: Mechanisms and Implications in Atrial Fibrillation. Journal of molecular and cellular cardiology 2010;48(3):461–467.
  54. Wynn T.A. Cellular and molecular mechanisms of fibrosis. The Journal ­of pathology 2008;214(2):199–210.
  55. Ihn H. The role of TGF-beta signaling in the pathogenesis of fibrosis ­in scleroderma. Archivum Immunologiae Et Therapiae Experimentalis-English Edition- 2002;50(5):325–332.
  56. Poniatowski L.A., Wojdasiewicz P., Gasik R., Szukiewicz D. Transforming Growth Factor Beta Family: Insight into the Role of Growth Factors in Regulation of Fracture Healing Biology and Potential Clinical Applications. Mediators of inflammation 2014;Article:ID:137823:17p.
  57. Ihn H. Pathogenesis of fibrosis: role of TGF-β and CTGF. Current opinion in rheumatology 2002;14(6):681–685.
  58. Lee K.W., Everett T.H., Rahmutula D., Guerra J.M., Wilson E., Ding C., Olgin J.E. Pirfenidone prevents the development of a vulnerable substrate for atrial fibrillation in a canine model of heart failure. Circulation 2006;114(16):1703–1712.
  59. Nakajima H., Nakajima H.O., Salcher O., Dittiè A.S., Dembowsky K., Jing S., Field L.J. Atrial but not ventricular fibrosis in mice expressing ­a mutant transforming growth factor-β1 transgene in the heart. Circulation research 2000;86(5):571–579.
  60. Bataller R., Schwabe R.F., Choi Y.H., Yang L., Paik Y.H., Lindquist J., Qian T., Schoonhoven R., Hagedorn C.H., Lemasters J.J. NADPH oxidase signal transduces angiotensin II in hepatic stellate cells and is critical ­in hepatic fibrosis. Journal of Clinical Investigation 2003;112(9):1383.
  61. Rosenkranz S. TGF-β1 and angiotensin networking in cardiac remodeling. Cardiovascular research 2004;63(3):423–432.
  62. Tsai C.-T., Lin J.-L., Lai L.-P., Lin C.-S., Huang S.K.S. Membrane translocation of small GTPase Rac1 and activation of STAT1 and STAT3 in pacinginduced sustained atrial fibrillation. Heart Rhythm 2008;5(9):1285–1293.
  63. Tsai C.-T., Lai L.-P., Kuo K.-T., Hwang J.-J., Hsieh C.-S., Hsu K.-L., Tseng C.-D., Tseng Y.-Z., Chiang F.-T., Lin J.-L. Angiotensin II Activates­ Signal Transducer and Activators of Transcription 3 via Rac1 in Atrial Myocytes and Fibroblasts Implication for the Therapeutic Effect of Statin in Atrial Structural Remodeling. Circulation 2008;117(3):344–355.
  64. Haudek S.B., Cheng J., Du J., Wang Y., Hermosillo-Rodriguez J., Trial J., Taffet G.E., Entman M.L. Monocytic fibroblast precursors mediate fibrosis in angiotensin-II-induced cardiac hypertrophy. Journal ­of molecular and cellular cardiology 2010;49(3):499–507.
  65. Boldt A., Scholl A., Garbade J., Resetar M.E., Mohr F.W., Gummert J.F. ACE-inhibitor treatment attenuates atrial structural remodeling ­in patients with­ lone chronic atrial fibrillation. Basic research in cardiology 2006;101(3):261-–267.
  66. Mansour M., Mandapati R., Berenfeld O., Chen J., Samie F.H., Jalife J. Left-to-right gradient of atrial frequencies during acute atrial fibrillation ­in the isolated sheep heart. Circulation 2001;103(21):2631–2636.
  67. Sakabe M., Fujiki A., Nishida K., Sugao M. Nagasawa H., Tsuneda T.,­ Mizumaki K., Inoue H. Enalapril prevents perpetuation of atrial fibrillation by suppressing atrial fibrosis and over-expression of connexin43 in a canine model of atrial pacing-induced left ventricular dysfunction. Journal ­of cardiovascular pharmacology 2004;43(6):851–859.
  68. Shi Y., Li D., Tardif J.-C., Nattel S. Enalapril effects on atrial remodeling and atrial fibrillation in experimental congestive heart failure. Cardiovascular research 2002;54(2):456–461.
  69. Healey J.S., Baranchuk A., Crystal E., Morillo C.A., Garfinkle M., Yusuf S.,­ Connolly S.J. Prevention of Atrial Fibrillation With Angiotensin-Converting­ Enzyme Inhibitors and Angiotensin Receptor Blockers: A Meta-Analysis. Journal of the American College of Cardiology 2005;45(11):1832–1839.
  70. Shrikrishna D., Astin R., Kemp P.R., Hopkinson N.S. Renin-angiotensin system blockade: a novel therapeutic approach in chronic obstructive pulmonary disease. Clin Sci (Lond) 2012;123(8):487–498.
  71. Tsai C.-T., Hwang J.-J., Chiang F.-T., Wang Y.-C., Tseng C.-D., Tseng Y.-Z., Lin J.-L. Renin-angiotensin system gene polymorphisms and atrial fibrillation: a regression approach for the detection of gene-gene interactions in a large hospitalized population. Cardiology 2007;111(1):1–7.
  72. Nedwin G.E., Naylor S.L., Sakaguchi A.Y., Smith D., Jarrett-Nedwin J.,­ Pennica D., Goeddel D.V., Gray P.W. Human lymphotoxin and tumor necrosis factor genes: structure, homology and chromosomal localization. Nucleic acids research 1985;13(17):6361–6373.
  73. Slebioda T.J., Kmiec Z. Tumour Necrosis Factor Superfamily Members in the Pathogenesis of Inflammatory Bowel Disease. Mediators ­ of inflammation 2014;2014:325129.
  74. Sata N., Hamada N., Horinouchi T., Amitani S., Yamashita T., Moriyama Y.,­ Miyahara K. C-reactive Protein and Atrial Fibrillation Is inflammation a consequence or a cause of atrial fibrillation? Japanese heart journal 2004;45(3):441–445.
  75. Li J., Solus J., Chen Q., Rho Y.H., Milne G., Stein C.M., Darbar D. Role of inflammation and oxidative stress in atrial fibrillation. Heart Rhythm 2010;7(4):438–444.
  76. Profita M., Chiappara G., Mirabella F., Di Giorgi R., Chimenti L., Costanzo G., Riccobono L., Bellia V., Bousquet J., Vignola A. Effect ­of cilomilast (Ariflo) on TNF-α, IL-8, and GM-CSF release by airway cells of patients with COPD. Thorax 2003;58(7):573–579.
  77. Foschino B.M., Carpagnano G., Spanevello A., Cagnazzo M., Barnes P.­ Inflammation, oxidative stress and systemic effects in mild chronic obstructive pulmonary disease. International journal of immunopathology and pharmacology 2006;20(4):753–763.
  78. Hingorani A.D. Endothelial nitric oxide synthase polymorphisms and hypertension. Current hypertension reports 2003;5(1):19–25.
  79. Hou J., Kato H., Cohen R.A., Chobanian A.V., Brecher P. Angiotensin II-induced cardiac fibrosis in the rat is increased by chronic inhibition ­of nitric oxide synthase. Journal of Clinical Investigation 1995;96(5):2469.
  80. Fatini C., Sticchi E., Genuardi M., Sofi F., Gensini F., Gori A.M., Lenti M., Michelucci A. Abbate R., Gensini G.F. Analysis of minK and eNOS genes as candidate loci for predisposition to non-valvular atrial fibrillation. European heart journal 2006;27(14):1712–1718.
  81. Nadeem A., Raj H.G., Chhabra S.K. Increased oxidative stress and altered levels­ of antioxidants in chronic obstructive pulmonary disease. Inflammation 2005;29(1):23–32.
  82. Malemud C.J. Matrix metalloproteinases (MMPs) in health and disease: an overview. Frontiers in bioscience: a journal and virtual library 2005;11:1696–1701.
  83. Nakano Y., Niida S., Dote K., Takenaka S., Hirao H., Miura F., Ishida M.,­ Shingu T., Sueda T., Yoshizumi M. Matrix metalloproteinase-9 contributes to human atrial remodeling during atrial fibrillation. Journal ­of the American College of Cardiology 2004;43(5):818–825.
  84. Okumura Y., Watanabe I., Nakai T., Ohkubo K., Kofune T., Kofune M., Nagashima K., Mano H., Sonoda K., Kasamaki Y. Impact of biomarkers of inflammation and extracellular matrix turnover on the outcome ­of atrial fibrillation ablation: importance of matrix metalloproteinase‐2 as a predictor of atrial fibrillation recurrence. Journal of cardiovascular electrophysiology 2011;22(9):987–993.
  85. Finlay G.A., Russell K.J., McMahon K.J., D'arcy E.M., Masterson J.B., FitzGerald M.X., O'Connor C.M. Elevated levels of matrix metalloproteinases in bronchoalveolar lavage fluid of emphysematous patients. Thorax 1997;52(6):502–506.
  86. Vernooy J.H., Lindeman J.H., Jacobs J.A, Hanemaaijer R., Wouters E.F. Increased activity of matrix meta.lloproteinase-8 and matrix metalloproteinase-9 in induced sputum from patients with COPD. Chest 2004;126(6):1802–1810.
  87. Demedts I.K., Brusselle G.G., Bracke K.R., Vermaelen K.Y., Pauwels R.A.­ Matrix metalloproteinases in asthma and COPD. Current opinion­ in pharmacology 2005;5(3):257–263.
  88. Wood A.M., Stockley R.A. The genetics of chronic obstructive pulmonary disease. Respir Res 2006;7(1):130.
  89. Hogquist K.A., Nett M.A., Unanue E.R., Chaplin D.D. Interleukin 1 is processed and released during apoptosis. Proceedings of the National Academy of Sciences 1991;88(19):8485–8489.
  90. Hall S.K., Perregaux D.G., Gabel C.A., Woodworth T., Durham L.K., Huizinga T., Breedveld F., Seymour A.B. Correlation of polymorphic variation in the promoter region of the interleukin‐1β gene with secretion of interleukin‐1β protein. Arthritis & Rheumatism 2004;50(6):1976–1983.
  91. Schmidt J., Tocci M. Interleukin-1. In: Peptide growth factors and their receptors I. Springer; 1991;473–521.
  92. Piguet P.F., Vesin C., Grau G.E., Thompson R.C. Interleukin 1 receptor antagonist (IL-1ra) prevents or cures pulmonary fibrosis elicited in mice by bleomycin or silica. Cytokine 1993, 5(1):57–61.
  93. Phan S.H., Kunkel S.L. Lung cytokine production in bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Experimental lung research 1992, 18(1):29–43.
  94. Kishimoto T. Interleukin-6: from basic science to medicine-40 years ­in immunology. Annu Rev Immunol 2005, 23:1–21.
  95. Car B.D., Meloni F., Luisetti M., Semenzato G., Gialdroni-Grassi G.,­ Walz A. Elevated IL-8 and MCP-1 in the bronchoalveolar lavage fluid of patients with idiopathic pulmonary fibrosis and pulmonary sarcoidosis. American journal of respiratory and critical care medicine 1994;149(3):655–659.
  96. Bergeron A., Soler P., Kambouchner M., Loiseau P., Milleron B., Valeyre D., Hance A., Tazi A. Cytokine profiles in idiopathic pulmonary fibrosis suggest an important role for TGF‐β and IL-10. European Respiratory Journal 2003;22(1):69–76.
  97. Hak L., Mysliwska J., Wi ckiewicz J., Szyndler K., Siebert J., Rogowski J. Interleukin-2 as a predictor of early postoperative atrial fibrillation after cardiopulmonary bypass graft (CABG). Journal of Interferon and Cytokine Research 2009;29(6):327–332.
  98. Kato K., Oguri M., Hibino T., Yajima K., Matsuo H., Segawa T., Watanabe S.,­ Yoshida H., Satoh K., Nozawa Y. Genetic factors for lone atrial fibrillation. International journal of molecular medicine 2007;19(6):933–939.
  99. Sapey E., Ahmad A., Bayley D., Newbold P., Snell N., Rugman P., Stockley R.A. Imbalances between interleukin-1 and tumor necrosis factor agonists and antagonists in stable COPD. Journal of clinical immunology 2009;29(4):508–516.
  100. Yanbaeva D.G., Dentener M.A., Spruit M.A., Houwing-Duistermaat J.J.,­ Kotz D., Passos V.L., Wouters E.F. IL6 and CRP haplotypes are associated with101. Chung K: Cytokines in chronic obstructive pulmonary disease. European Respiratory Journal 2001;18(34 suppl):50s–59s.
  101. Takanashi S., Hasegawa Y., Kanehira Y., Yamamoto K., Fujimoto K., ­ Satoh K., Okamura K. Interleukin‐10 level in sputum is reduced ­ in bronchial asthma, COPD and in smokers. European Respiratory Journal 1999;14(2):309–314.

Об авторах / Для корреспонденции

Сведения об авторах:
Волчкова Е.А. - аспирант кафедры терапии, кардиологии и функциональной диагностики с курсом нефрологии ФГБУ ДПО Центральная государственная медицинская академия УД Президента РФ, Москва; врач 2-го терапевтического отделения ГБУЗ ГКБ №51 Департамента здравоохранения г. Москвы.
Затейщиков Д.А. - д.м.н., проф., руков. первичного сосудистого отделения ГБУЗ ГКБ №51 Департамента здравоохранения г. Москвы; проф. кафедры терапии, кардиологии и функциональной диагностики с курсом нефрологии ФГБУ ДПО Центральная государственная медицинская академия УД Президента РФ, Москва; вед.н.с. лаборатории генетики ФГБУ Федеральный научно-клинический центр специализированных видов клинической помощи и медицинских технологий ФМБА России, Москва.
E-mail: volchkovakaty@mail.ru

Также по теме